Name: Collecte de parasites de poissons isopodes gnathiidés marins avec des pièges lumineux (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-09-25T14:35:00.000+00:00
Duration: 6 min 43 s
Description: Découvrez une méthode efficace de piégeage lumineux pour collecter les isopodes gnathiides parasites des poissons dans les récifs coralliens. Cette technique permet d'étudier la dynamique écologique de ces organismes nocturnes.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Le financement a été fourni par la National Science Foundation des États-Unis (NSF OCE 2023420 et DEB 2231250, P. Sikkel PI). Nous remercions la municipalité de Dumaguete City, Negros Oriental, Philippines, pour l’autorisation de mener cette étude. Nous remercions également les nombreux bénévoles pour leur aide sur le terrain ainsi que le personnel et nos collègues de l’Institut des sciences environnementales et marines de l’Université Silliman pour leur soutien.

Le prélèvement d’échantillons a été autorisé par le Bureau des pêches et des ressources aquatiques du Département de l’agriculture (0154-18 DA-BFAR) conformément aux lois et règlements philippins (RA 9147; FAO 233) et approuvé par le comité d’éthique animale de l’Université Silliman (SU).
1. Pièges lumineux
<ol><li>Construction<ol><li>Construire des pièges lumineux à partir de tubes commerciaux en polychlorure de vinyle (PVC) conçus à l’origine pour la plomberie. Utilisez du PVC coupé de 10 à 15 cm de diamètre à 30 à 40 cm de longueur (figure 1).</li>
		<li>Aux deux extrémités des tubes, ajouter des « bouchons » en PVC avec un entonnoir en acrylique transparent inséré au centre de l’ouverture et coller en place avec de la colle époxy transparente (Figure 1). Laissez sécher.</li>
		<li>Assurez-vous qu’une extrémité du tube est munie d’un couvercle vissé ou amovible et que les deux extrémités sont étanches lorsque le piège est « fermé » (p. ex., avec l’ajout d’un joint torique).</li>
	</ol></li>
	<li>Source lumineuse<ol><li>Avant le déploiement, allumez une lumière/torche sous-marine (voir Tableau des matériaux) et placez-la dans le tube, face à l’un des entonnoirs transparents, de sorte que la lumière de la torche sous-marine éclaire la zone devant un côté du tube. Si nécessaire, des bâtons lumineux chimiques peuvent être utilisés à la place des torches sous-marines, bien que leur intensité lumineuse soit plus faible. NOTE: La lumière attire une variété de petits organismes nocturnes31, y compris les gnathiidés, et les pousse à nager dans le tube à travers l’entonnoir transparent. Une fois entrés dans le tube, ils sont incapables de s’échapper en raison de la géométrie du piège lumineux (petite ouverture d’entonnoir) et de la présence continue d’une source lumineuse.</li>
	</ol></li>
	<li>Placement<ol><li>Lorsque vous êtes dans l’eau sur le site de déploiement, remplissez les pièges lumineux, avec la lumière allumée, avec de l’eau de mer, et fixez les deux extrémités. Pour vous assurer que la torche n’est pas en dessous ou ne bloque pas la pointe de l’entonnoir, inclinez l’avant du tube vers le haut pour permettre à la torche de glisser loin de l’entonnoir.</li>
		<li>Placez des pièges sur le fond marin, dans le sable ou les décombres, à côté des têtes de corail ou d’autres structures complexes connues pour attirer les poissons. Concentrez le cône lumineux « vers l’intérieur », vers les zones où les poissons se regroupent. REMARQUE: En eau peu profonde, les pièges peuvent être placés en plongeant à bout de souffle. Un déploiement plus approfondi nécessite une plongée sous-marine.</li>
	</ol></li>
	<li>Récupération<ol><li>Immédiatement avant de récupérer le piège, scellez les ouvertures des deux entonnoirs (à chaque extrémité du tube) avec un morceau de pâte à modeler ou de bouchon en caoutchouc, en gardant toute l’eau de mer et les organismes contenus à l’intérieur. REMARQUE: Les organismes resteront dans le piège une fois que les piles des lumières auront expiré et que la lumière ne sera plus allumée. Cela offre une flexibilité lorsque les pièges sont récupérés (« temps de trempage »). Les facteurs à prendre en compte pour décider du temps de trempage sont présentés ci-dessous (voir la discussion).</li>
	</ol></li>
	<li>Transport<ol><li>Une fois que les pièges ont été récupérés du fond, transportez-les jusqu’à un bateau ou nagez à terre.</li>
		<li>Maintenir les pièges près de la température ambiante de l’eau de mer une fois retirés de l’océan.</li>
		<li>Transportez-les au laboratoire pour traitement dès que possible, car aucun échange de gaz ou d’eau n’aura lieu une fois retiré de l’océan.</li>
	</ol></li>
</ol>2 Traitement en laboratoire
<ol><li>Stockage et filtrage des échantillons<ol><li>Une fois les pièges lumineux retirés de l’océan et ramenés au laboratoire, videz leur contenu dans des seaux avec de l’eau de mer fraîche.</li>
		<li>Ajouter l’aération pour garder les organismes en vie jusqu’à la filtration.</li>
		<li>Filtrer le contenu du seau en versant dans un entonnoir tapissé de mailles planctoniques de 50 à 100 μm, puis vider le contenu dans un récipient de 100 ml d’eau de mer fraîche.</li>
		<li>Utilisez une pipette pour prélever dans ce récipient plus petit afin de placer les aliquotes de l’échantillon dans une boîte de Petri pour la microscopie. Répétez l’opération jusqu’à ce que l’échantillon entier ait été traité.</li>
	</ol></li>
	<li>Identification et élevage des isopodes gnathiidés<ol><li>Étant donné que les échantillons de pièges lumineux attirent plusieurs espèces de petits invertébrés, examinez soigneusement les échantillons pour identifier et éliminer les isopodes gnathiidés. Un grossissement de 10 à 20x est le meilleur pour cette tâche (Figure 2). REMARQUE : L’identification des gnathiidés au niveau de la famille ne nécessite pas de spécimens vivants. Cependant, les gnathiidés adultes, qui sont rarement capturés dans des pièges légers, sont nécessaires pour l’identification morphologique des espèces et la reproduction (voir référence 1,3,9 pour une méthodologie pour la reproduction et l’élevage des gnathiidés en captivité).</li>
		<li>Dans les cas où les gnathiidés doivent être maintenus en vie pour l’élevage, retirez-les délicatement avec une pipette et placez-les dans de petits récipients en plastique d’eau de mer fraîche.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Sikkel, P. C., Welicky, R. L. The ecological significance of parasitic crustaceans. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSikkel%2C+PC+%22Parasitic+Crustacea%22">Parasitic Crustacea</a>. 17 (17), Springer. Cham. 421-477 (2019).</li>
<li>Svavarsson, J., Bruce, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+gnathiid+isopod+crustaceans+%28Cymothoida%29+from+Heron+Island+and+Wistari+Reef%2C+southern+Great+Barrier+Reef%5BTitle%5D)+AND+%22Zootaxa%22%5BJournal%5D)">New gnathiid isopod crustaceans (Cymothoida) from Heron Island and Wistari Reef, southern Great Barrier Reef.</a> Zootaxa. 4609 (1), 4609(2019).</li>
<li>Shodipo, M. O., Sikkel, P. C., Smit, N. J., Hadfield, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+record+and+molecular+characterisation+of+two+Gnathia+species+%28Crustacea%2C+Isopoda%2C+Gnathiidae%29+from+Philippine+coral+reefs%2C+including+a+summary+of+all+Central-Indo+Pacific+Gnathia+species%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%3A+Parasites+and+Wildlife%22%5BJournal%5D)">First record and molecular characterisation of two Gnathia species (Crustacea, Isopoda, Gnathiidae) from Philippine coral reefs, including a summary of all Central-Indo Pacific Gnathia species.</a> International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 14, 355-367 (2021).</li>
<li>Losey, G. S. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleaning+symbiosis+in+Puerto+Rico+with+comparison+to+the+tropical+Pacific%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Cleaning symbiosis in Puerto Rico with comparison to the tropical Pacific.</a> 4 (4), 960-970 (1974).</li>
<li>Grutter, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasite+infestation+increases+on+coral+reefs+without+cleaner+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Parasite infestation increases on coral reefs without cleaner fish.</a> Coral Reefs. 37, 15-24 (2018).</li>
<li>Smit, N. J., Davies, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+curious+life-style+of+the+parasitic+stages+of+gnathiid+isopods%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology.+58%22%5BJournal%5D)">The curious life-style of the parasitic stages of gnathiid isopods.</a> Advances in Parasitology. 58. , 289-391 (2004).</li>
<li>Tanaka, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+history+of+gnathiid+isopods-current+knowledge+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Plankton+and+Benthos+Research%22%5BJournal%5D)">Life history of gnathiid isopods-current knowledge and future directions.</a> Plankton and Benthos Research. 2 (1), 1-11 (2007).</li>
<li>Sikkel, P. C., Schaumburg, C. S., Mathenia, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diel+infestation+dynamics+of+gnathiid+isopod+larvae+parasitic+on+Caribbean+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Diel infestation dynamics of gnathiid isopod larvae parasitic on Caribbean reef fish.</a> Coral Reefs. 25, 683-689 (2006).</li>
<li>Santos, T. R. N., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Habitat+associations+of+fish-parasitic+gnathiid+isopods+in+a+shallow+reef+system+in+the+central+Philippines%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biodiversity%22%5BJournal%5D)">Habitat associations of fish-parasitic gnathiid isopods in a shallow reef system in the central Philippines.</a> Marine Biodiversity. 4, 83-96 (2019).</li>
<li>Nagel, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+vision+in+host-finding+behaviour+of+the+ectoparasite+Gnathia+falcipenis+%28Crustacea%29%5BTitle%5D)+AND+%22Isopoda%29.+Marine+and+Freshwater+Behaviour+and+Physiology%22%5BJournal%5D)">The role of vision in host-finding behaviour of the ectoparasite Gnathia falcipenis (Crustacea).</a> Isopoda). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 42 (1), 31-42 (2009).</li>
<li>Sikkel, P. C., Sears, W. T., Weldon, B., Tuttle, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+experimental+field+test+of+host-finding+mechanisms+in+a+Caribbean+gnathiid+isopod%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">An experimental field test of host-finding mechanisms in a Caribbean gnathiid isopod.</a> Marine Biology. 158, 1075-1083 (2011).</li>
<li>Vondriska, C., Dixson, D. L., Packard, A. J., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentially+susceptible+host+fishes+exhibit+similar+chemo-attractiveness+to+a+common+coral+reef+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22Symbiosis%22%5BJournal%5D)">Differentially susceptible host fishes exhibit similar chemo-attractiveness to a common coral reef ectoparasite.</a> Symbiosis. 81 (3), 247-253 (2020).</li>
<li>Grutter, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasite+infection+rather+than+tactile+stimulation+is+the+proximate+cause+of+cleaning+behaviour+in+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+of+London.+Series+B%3A+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Parasite infection rather than tactile stimulation is the proximate cause of cleaning behaviour in reef fish.</a> Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. 268 (1474), 1361-1365 (2001).</li>
<li>Sikkel, P. C., Cheney, K. L., Côté, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+evidence+for+ectoparasites+as+a+proximate+cause+of+cleaning+interactions+in+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Behaviour%22%5BJournal%5D)">In situ evidence for ectoparasites as a proximate cause of cleaning interactions in reef fish.</a> Animal Behaviour. 68 (2), 241-247 (2004).</li>
<li>Sikkel, P. C., Herzlieb, S. E., Kramer, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compensatory+cleaner-seeking+behavior+following+spawning+in+female+yellowtail+damselfish%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Ecology+Progress+Series%22%5BJournal%5D)">Compensatory cleaner-seeking behavior following spawning in female yellowtail damselfish.</a> Marine Ecology Progress Series. , 1-11 (2005).</li>
<li>Triki, Z., Grutter, A. S., Bshary, R., Ros, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+short-term+exposure+to+ectoparasites+on+fish+cortisol+and+hematocrit+levels%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">Effects of short-term exposure to ectoparasites on fish cortisol and hematocrit levels.</a> Marine Biology. 163, 1-6 (2016).</li>
<li>Hayes, P. M., Smit, N. J., Grutter, A. S., Davies, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unexpected+response+of+a+captive+blackeye+thicklip%2C+Hemigymnus+melapterus+%28Bloch%29%2C+from+Lizard+Island%2C+Australia%2C+exposed+to+juvenile+isopods+Gnathia+aureamaculosa+Ferreira+%26+Smit%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Fish+Diseases%22%5BJournal%5D)">Unexpected response of a captive blackeye thicklip, Hemigymnus melapterus (Bloch), from Lizard Island, Australia, exposed to juvenile isopods Gnathia aureamaculosa Ferreira & Smit.</a> Journal of Fish Diseases. 34 (7), 563-566 (2011).</li>
<li>Grutter, A. S., Pickering, J. L., McCallum, H., McCormick, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+micropredatory+gnathiid+isopods+on+young+coral+reef+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Impact of micropredatory gnathiid isopods on young coral reef fishes.</a> Coral Reefs. 27 (3), 655-661 (2008).</li>
<li>Artim, J. M., Sellers, J. C., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropredation+by+gnathiid+isopods+on+settlement-stage+reef+fish+in+the+eastern+Caribbean+Sea%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+Marine+Science%22%5BJournal%5D)">Micropredation by gnathiid isopods on settlement-stage reef fish in the eastern Caribbean Sea.</a> Bulletin of Marine Science. 91 (4), 479-487 (2015).</li>
<li>Sellers, J. C., Holstein, D. M., Botha, T. L., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lethal+and+sublethal+impacts+of+a+micropredator+on+post-settlement+Caribbean+reef+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">Lethal and sublethal impacts of a micropredator on post-settlement Caribbean reef fishes.</a> Oecologia. 189, 293-305 (2019).</li>
<li>Allan, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasite+infection+directly+impacts+escape+response+and+stress+levels+in+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Parasite infection directly impacts escape response and stress levels in fish.</a> Journal of Experimental Biology. 223 (16), (2020).</li>
<li>Spitzer, C. A., Anderson, T. W., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Habitat+associations+and+impacts+on+a+juvenile+fish+host+by+a+temperate+gnathiid+isopod%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%3A+Parasites+and+Wildlife%22%5BJournal%5D)">Habitat associations and impacts on a juvenile fish host by a temperate gnathiid isopod.</a> International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 17, 65-73 (2022).</li>
<li>Sikkel, P. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nocturnal+migration+reduces+exposure+to+micropredation+in+a+coral+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+Marine+Science%22%5BJournal%5D)">Nocturnal migration reduces exposure to micropredation in a coral reef fish.</a> Bulletin of Marine Science. 93 (2), 475-489 (2017).</li>
<li>Artim, J. M., Hook, A., Grippo, R. S., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predation+on+parasitic+gnathiid+isopods+on+coral+reefs%3A+a+comparison+of+Caribbean+cleaning+gobies+with+non-cleaning+microcarnivores%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Predation on parasitic gnathiid isopods on coral reefs: a comparison of Caribbean cleaning gobies with non-cleaning microcarnivores.</a> Coral Reefs. 36, 1213-1223 (2017).</li>
<li>Artim, J. M., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+coral+repels+a+common+reef+fish+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Live coral repels a common reef fish ectoparasite.</a> Coral Reefs. 32, 487-494 (2013).</li>
<li>Paula, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+corals+on+the+abundance+of+a+fish+ectoparasite+in+the+Great+Barrier+Reef%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">The role of corals on the abundance of a fish ectoparasite in the Great Barrier Reef.</a> Coral Reefs. 40, 535-542 (2021).</li>
<li>Sikkel, P. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+abundance+of+fish-parasitic+gnathiid+isopods+associated+with+warm-water+bleaching+events+on+the+northern+Great+Barrier+Reef%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Changes in abundance of fish-parasitic gnathiid isopods associated with warm-water bleaching events on the northern Great Barrier Reef.</a> Coral Reefs. 38 (4), 721-730 (2019).</li>
<li>Shodipo, M. O., Duong, B., Graba-Landry, A., Grutter, A. S., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+acute+seawater+temperature+increase+on+the+survival+of+a+fish+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22In+Oceans%22%5BJournal%5D)">Effect of acute seawater temperature increase on the survival of a fish ectoparasite.</a> In Oceans. 1 (4), (2020).</li>
<li>Artim, J. M., Nicholson, M. D., Hendrick, G. C., Brandt, M., Smith, T. B., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abundance+of+a+cryptic+generalist+parasite+reflects+degradation+of+an+ecosystem%5BTitle%5D)+AND+%22Ecosphere%22%5BJournal%5D)">Abundance of a cryptic generalist parasite reflects degradation of an ecosystem.</a> Ecosphere. 11 (10), (2020).</li>
<li>Richardson, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+continuous+plankton+recorder+data%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Oceanography%22%5BJournal%5D)">Using continuous plankton recorder data.</a> Progress in Oceanography. 68 (1), 27-74 (2006).</li>
<li>McLeod, L. E., Costello, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+traps+for+sampling+marine+biodiversity%5BTitle%5D)+AND+%22Helgoland+Marine+Research%22%5BJournal%5D)">Light traps for sampling marine biodiversity.</a> Helgoland Marine Research. 71 (1), 1-8 (2017).</li>
<li>Artim, J. M., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+sampling+methodologies+and+estimation+of+population+parameters+for+a+temporary+fish+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%3A+Parasites+and+Wildlife%22%5BJournal%5D)">Comparison of sampling methodologies and estimation of population parameters for a temporary fish ectoparasite.</a> International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 5 (2), 145-157 (2016).</li>
<li>Pagán, J. A., Veríssimo, A., Sikkel, P. C., Xavier, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hurricane-induced+disturbance+increases+genetic+diversity+and+population+admixture+of+the+direct-brooding+isopod%2C+Gnathia+marleyi%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+reports%22%5BJournal%5D)">Hurricane-induced disturbance increases genetic diversity and population admixture of the direct-brooding isopod, Gnathia marleyi.</a> Scientific reports. 10 (1), (2020).</li>
<li>Doherty, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-traps%3A+selective+but+useful+devices+for+quantifying+the+distributions+and+abundances+of+larval+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+Marine+Science%22%5BJournal%5D)">Light-traps: selective but useful devices for quantifying the distributions and abundances of larval fishes.</a> Bulletin of Marine Science. 41, 423-431 (1987).</li>
<li>Jones, C. M., Nagel, L., Hughes, G. L., Cribb, T. H., Grutter, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+specificity+of+two+species+of+Gnathia+%28Isopoda%29+determined+by+DNA+sequencing+blood+meals%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Host specificity of two species of Gnathia (Isopoda) determined by DNA sequencing blood meals.</a> International Journal for Parasitology. 37 (8-9), 927-935 (2007).</li>
<li>Hendrick, G. C., Dolan, M. C., McKay, T., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+DNA+integrity+within+blood+meals+of+hematophagous+larval+gnathiid+isopods+%28Crustacea%29%5BTitle%5D)+AND+%22Isopoda%2C+Gnathiidae%29.+Parasites+%26+Vectors%22%5BJournal%5D)">Host DNA integrity within blood meals of hematophagous larval gnathiid isopods (Crustacea).</a> Isopoda, Gnathiidae). Parasites & Vectors. 12 (1), 1-9 (2019).</li>
</ol>

Les auteurs ne déclarent aucune divulgation à faire.

Les pièges lumineux traditionnels, tels que ceux utilisés pour la collecte des larves de poissons, sont grands et sont suspendus dans la colonne d’eau34. En revanche, les pièges lumineux décrits ici sont petits et déployés sur le fond marin. Ces pièges peuvent être facilement transportés et rapidement déployés. Ils peuvent être placés en plongée libre dans des sites peu profonds (comme dans cette étude) ou en plongée sous-marine dans des sites plus profonds, et attirent à la fois nourris et non no...

Les crustacés parasites sont importants dans l’écologie et le cycle biologique des poissons de récif. La biomasse et l’énergie qu’ils retirent de leurs hôtes sont considérables et influencent le comportement, la physiologie et la survie1. Les crustacés isopodes gnathiidés représentent le groupe le plus important de parasites des poissons dans les systèmes récifaux tropicaux et subtropicaux, où ils sont à la fois abondants et diversifiés2,3 et constituent le principal aliment des poissons nettoyeurs 4,5. Les gnathiidés mesurent généralement de 1 à 3 mm. Ils ont des histoires de vie inhabituelles dans lesquelles seuls les trois stades juvéniles se nourrissent du sang et des fluides corporels des poissons 6,7. Ils sont plus actifs la nuit8,9, et bien que la vision semble jouer un certain rôle, la recherche d’hôtes 10 repose fortement sur des indices olfactifs pour trouver des hôtes11,12. Chacun des trois stades d’alimentation juvénile se nourrit d’un seul poisson hôte, chaque aliment étant séparé par une phase de mue. Après l’alimentation finale, les larves du troisième stade se métamorphosent en adultes qui ne se nourrissent pas, qui se reproduisent puis meurent. Étant donné que l’alimentation ne nécessite qu’une brève association avec l’hôte, alors que chaque intervalle d’alimentation inter-alimentation dure des jours, les gnathiidés passent la majeure partie de leur vie libre dans le benthos.
Les gnathiidés ont un impact multiple sur les hôtes1. Outre leur rôle de moteurs d’interactions entre les poissons nettoyeurs et les clients 13,14,15, les gnathiidés peuvent augmenter les niveaux de cortisol et diminuer l’hématocrite chez les poissons hôtes adultes16 et en grand nombre, peuvent même causer la mort 17. Pour les poissons juvéniles, même un seul gnathiidé peut être fatal18,19,20, et même si le poisson survit, sa capacité à rivaliser pour l’espace et à échapper aux prédateurs est compromise20,21,22. Éviter les gnathiidés peut même constituer l’un des avantages de la migration nocturne chez certains poissons de récif23.
En plus des poissons plus propres, les populations de gnathiidés peuvent être affectées par d’autres poissons micro carnivores24, ainsi que par des coraux25,26. Le réchauffement des océans et la perte associée de coraux vivants semblent avoir des impacts opposés sur les gnathiidés27,28,29.
Compte tenu de leur importance écologique évidente et de l’influence probable des changements environnementaux anthropiques sur leurs populations, il existe des raisons impérieuses de les inclure dans les études écologiques des récifs coralliens. Cependant, leur cycle biologique unique et le petit nombre de chercheurs qui les étudient créent un obstacle à l’élaboration, à la mise en œuvre et à la diffusion de méthodes d’échantillonnage fiables et reproductibles pour les recueillir à des fins de recherche.
Les pièges lumineux ont longtemps été utilisés pour collecter de petits organismes marins la nuit30,31. Ils profitent et sont basés sur le fait que de nombreux organismes actifs la nuit, y compris les arthropodes, sont attirés par la lumière. Traditionnellement, ils ont été utilisés pour collecter des organismes planctoniques dans la colonne d’eau30. Cependant, les principes de base peuvent être appliqués à la collecte d’organismes nageant librement qui sont actifs près du benthos. Nous présentons ici une méthode de piégeage de la lumière adaptée à la collecte de stades de vie libre d’isopodes gnathiidés près du fond de l’océan dans des environnements de récifs coralliens éloignés tels que les Philippines. Pour la collecte dans des régions éloignées, ces pièges lumineux (figure 1) offrent certains avantages par rapport aux autres méthodes développées pour collecter ces organismes32. Ils sont très portables et durables, ne nécessitant que trois pièces, qui sont faciles à obtenir et peu coûteuses. Ils sont également à flottabilité négative, car lorsqu’ils sont déployés, ils sont complètement remplis d’eau de mer. Parce qu’ils dépendent de la lumière pour l’attraction, ils ne sont efficaces que la nuit pour collecter des espèces actives la nuit. Ils attirent également plus que les espèces cibles, ce qui nécessite un tri des échantillons sous une portée de dissection pour obtenir les organismes cibles. Jusqu’à présent, trois méthodes ont été utilisées par notre équipe et nos collaborateurs pour collecter des gnathiidés dans les systèmes de récifs coralliens à travers le monde32. Il s’agit notamment des pièges d’émergence, des pièges appâtés par des poissons vivants et des pièges légers, chacun présentant des avantages et des limites.

<table><tbody><tr><td>Godets, petits récipients</td><td></td> d’échantillons <td>quincaillerie</td><td></td></tr><tr><td>Entonnoirs</td><td>Fournisseur n° 2209-03</td><td>Entonnoirs : AMERICAN SCIENTIFIC LLC SE&nbsp ;-&nbsp ; 75 mm (3")&nbsp ;</td><td>https://us.vwr.com/store/product/8884369/plastic-funnels</td></tr><tr><td>Corps principal des pièges à lumière (fabriqués à partir de tuyaux sanitaires en PVC disponibles dans le commerce)</td><td>(SKU 145640)&nbsp ;</td><td>Alasco Sanitary uPVC Pipes Series 1000 107mm/4'&nbsp ;</td><td>https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-pipe-series-1000/.&nbsp ; Cette marque se trouve aux Philippines. D’autres marques similaires peuvent également être utilisées</td></tr><tr><td>Pâte à modeler&nbsp ;</td><td></td><td>Peut être trouvé dans les magasins d’art, de suppliy et de jouets pour enfants</td><td>Pour sceller l’entonnoir après la récupération</td></tr> du <tr><td>maillage de plancton (50-100 & micro ; m)</td><td></td><td>toute marque et source réputées</td><td>https://www.adkinstruments.in/products/plankton-nets-in-various-mesh-size-1633936883</td></tr><tr><td>Couvercles à visser pour le piège</td><td></td> lumineux <td>Alasco&nbsp ; Sanitaires &nbsp ; Nettoyage&nbsp ; 4"</td><td>https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-clean-out/. Cette marque se trouve aux Philippines. D’autres marques similaires peuvent également être utilisées</td></tr><tr>Équipement <td></td> de<td>plongée / tuba</td><td>toute marque et source</td><td></td>réputées</tr><tr><td>Stéréomicroscopes</td><td></td><td>Fournisseurs</td><td></td>scientifiques</tr><tr>Touches <td></td><td>sous-marines</td><td>Princeton Tec Ecoflare ou&nbsp ; Fantasea Nanospotter 6023</td><td></td></tr></tbody></table>

collecte de parasites de poissons isopodes gnathiidés marins avec des pièges lumineux

Collecting Marine Gnathiid Isopod Fish Parasites with Light Traps

Une méthode de collecte des parasites des poissons isopodes gnathiidés marins à l’aide de pièges lumineux est présentée. Les isopodes gnathiidés sont un groupe important de parasites de poissons marins qui se nourrissent du sang et des liquides des poissons hôtes, principalement la nuit. Comme les tiques et les moustiques sur terre, ils ne s’associent que temporairement avec leur hôte et passent la majeure partie de leur vie libre dans le benthos. Compte tenu de leur grande mobilité et de leur association transitoire et principalement nocturne avec les hôtes, ils ne peuvent pas être facilement collectés en capturant des hôtes libres. Cependant, ils sont facilement attirés par les sources lumineuses sous-marines, créant ainsi la possibilité de les collecter dans des pièges lumineux. La conception et les différentes étapes du déploiement et du traitement de pièges lumineux spécialement adaptés pour la collecte des stades de vie libre des isopodes gnathiidés sont décrites ici. Les résultats des échantillons et les modifications possibles du protocole de base pour une variété de besoins d’échantillonnage différents sont présentés et discutés.

Pour l’échantillonnage dans le centre des Philippines, la conception de piège décrite (figure 1) a été utilisée. Lorsque 36 pièges ont été posés pendant la nuit (dans un site), 1 à 1343 gnathiidés par piège (275 ± 54) ont été collectés. Ceux-ci comprenaient à la fois les stades juvéniles nourris et non nourris (figure 2; Tableau 1 et 2). Ces résultats démontrent l’efficacité des pièges lumineux pour collecter les isopodes gnathiidés dans les con...

Nous présentons une méthode pour collecter les parasites des poissons isopodes gnathiidés marins à l’aide de pièges lumineux placés sur le terrain via la plongée à souffle ou la plongée sous-marine.

Collecte de parasites de poissons isopodes gnathiidés marins avec des pièges lumineux

A method to collect marine gnathiid isopod fish parasites with the use of light traps is presented. Gnathiid isopods are a major group of marine fish ...

Les crustacés parasites sont des facteurs importants dans l’écologie et le cycle biologique des poissons de récif. La biomasse et l’énergie qu’ils ont retirées de leurs hôtes étant considérables et influençant le comportement, la physiologie et la survie. Les crustacés isopodes gnathiidés représentent le groupe le plus important de parasites de poissons dans les systèmes récifaux tropicaux et subtropicaux, où ils sont à la fois abondants et diversifiés et constituent le principal aliment des poissons nettoyeurs.Les gnathiidés ont des histoires de vie inhabituelles dans lesquelles seuls les trois stades juvéniles se nourrissent de sang et de liquides corporels de poissons, tandis qu’au stade adulte, ils ne se nourrissent plus. Étant donné que l’alimentation ne nécessite qu’une brève association avec l’hôte, alors que chaque intervalle d’alimentation dure des jours, les Gnathiidés passent la majeure partie de leur vie libre dans le benthos. Compte tenu des nombreuses façons dont les Gnathiidés ont un impact sur leurs hôtes, il existe des raisons impérieuses de les inclure dans les études écologiques des récifs coralliens.Cependant, leur cycle biologique unique et le petit nombre de chercheurs qui les étudient créent un obstacle à l’élaboration, à la mise en œuvre et à la diffusion de méthodes d’échantillonnage fiables et reproductibles pour les recueillir à des fins de recherche. Les pièges lumineux ont longtemps été utilisés pour collecter de petits organismes marins la nuit. Ils profitent et sont basés sur le fait que de nombreux organismes actifs la nuit, y compris les arthropodes, sont attirés par la lumière.Traditionnellement, ils ont été utilisés pour collecter des organismes planctoniques dans la colonne d’eau. Cependant, les principes de base peuvent être appliqués à la collecte d’organismes nageurs libres actifs près du benthos. Nous présentons ici une méthode de piégeage de la lumière adaptée à la collecte de stades de vie libres d’isopodes gnathiidés près du fond de l’océan dans des environnements de récifs coralliens éloignés tels que les Philippines.Dans les régions éloignées, ces pièges offrent certains avantages par rapport à d’autres méthodes qui ont été développées pour collecter ces organismes. Ils sont très portables et durables et ne nécessitent que trois pièces, qui sont faciles à obtenir et peu coûteuses. Ils sont également négativement dynamiques.Parce qu’ils dépendent de la lumière pour l’attraction, ils ne sont efficaces que la nuit pour collecter des espèces actives la nuit. Ils attirent également plus que les espèces cibles, ce qui nécessite le tri des échantillons au microscope à dissection pour obtenir les organismes cibles. Pièges lumineux. Construction.Les pièges lumineux sont mieux construits à partir de tubes en PVC commerciaux conçus à l’origine à des fins de plomberie. Utilisez du PVC de 20 à 25 centimètres de diamètre coupé à 30 à 40 centimètres de longueur. Aux deux extrémités du tube, ajoutez des bouchons en PVC avec des entonnoirs en acrylique transparent insérés au centre de l’ouverture et collez en place avec de la colle époxy transparente.Assurez-vous qu’une extrémité du tube est munie d’une vis sur un couvercle autrement amovible et que les deux extrémités sont étanches lorsque le piège est fermé. Source lumineuse. Avant le déploiement, une torche sous-marine, telle qu’un Fantasea nano spotter 6023, doit être allumée et placée dans le tube faisant face à l’entonnoir transparent de sorte que la lumière de la torche sous-marine éclaire l’extérieur devant un côté du tube.La lumière attire une variété de petits organismes nocturnes, y compris les Gnathiids, et les pousse à nager dans le tube avec l’entonnoir transparent. Une fois entrés dans le tube, ils sont incapables de s’échapper en raison de la géométrie du piège lumineux et de la présence continue d’une source lumineuse. Placement. Remplissez les pièges lumineux avec la lumière allumée et avec de l’eau de mer et fixez les deux extrémités.Placez des pièges sur le fond marin dans le sable ou les gravats à côté des têtes de corail ou d’autres structures complexes connues pour attirer les poissons. Concentrez le cône de lumière vers l’intérieur vers les zones où les poissons se regroupent. En eau peu profonde, les pièges peuvent être placés par plongée à respiration.Un déploiement plus approfondi nécessite une plongée sous-marine. Récupération. Les organismes resteront dans le piège une fois que les piles des lumières auront expiré et que la lumière ne sera plus allumée. Cela offre une flexibilité dans le temps dans lequel les pièges sont récupérés.Immédiatement avant de récupérer le piège, scellez les ouvertures des deux entonnoirs à chaque extrémité du tube avec un morceau d’argile ou de caoutchouc scellé, en gardant toute l’eau de mer et les organismes contenus à l’intérieur. Transport. Une fois que les pièges ont été récupérés du fond, ils peuvent être transportés par des plongeurs jusqu’à un bateau ou nager à terre. Cependant, il est préférable de maintenir les pièges aussi près que possible de la température ambiante de l’eau de mer une fois qu’ils ont été retirés de l’océan.Transportez-les au laboratoire pour traitement dès que possible, car aucun échange de gaz ou d’eau n’aura lieu une fois retiré de l’océan. Traitement en laboratoire. Stockage et filtrage des échantillons.Une fois qu’un piège lumineux est retiré de l’océan et ramené au laboratoire, videz leur contenu dans des seaux avec de l’eau de mer fraîche. Ajouter l’aération pour garder les organismes en vie jusqu’à la filtration. Filtrer le contenu du seau en versant à travers un entonnoir tapissé de mailles planctoniques de 50 à 100 UM.Ensuite, videz le contenu dans un récipient de cent millilitres d’eau de mer fraîche. Utilisez une pipette pour prélever dans ce petit récipient afin de placer des aliquotes de l’échantillon dans une boîte de Petri pour la microscopie. Répétez l’opération jusqu’à ce que l’échantillon entier ait été traité.Identification et élevage des isopodes des gnathiides. Étant donné que les échantillons de pièges lumineux attireront plusieurs espèces de petits invertébrés, les échantillons doivent être soigneusement examinés pour identifier et éliminer les isopodes des Gnathiides. Un grossissement de 10 à 20 fois est préférable pour cette tâche.L’identification des Gnathiidés au niveau de la famille ne nécessite pas de spécimens vivants. Cependant, les Gnathiidés adultes, qui sont rarement capturés dans des pièges légers, sont nécessaires pour l’identification morphologique des espèces et pour la reproduction. Ainsi, dans les cas où les Gnathiidés ont besoin d’être maintenus en vie après avoir été élevés, retirez-les délicatement avec une pipette et placez-les dans de petits récipients en plastique d’eau de mer fraîche.Résultats représentatifs. L’échantillonnage dans le centre des Philippines, la conception des pièges à contour a été utilisée lorsque les pièges ont été installés pendant la nuit. Un à 1 343 Gnathiidés par piège ont été collectés.Ceux-ci comprenaient à la fois les stades juvéniles nourris et non nourris. Ces résultats démontrent clairement l’efficacité des pièges lumineux pour la collecte d’isopodes gnathiidés dans les conditions de l’étude. Cette méthode de collecte de gnathiidés est efficace et suffisamment souple pour une variété de sites de terrain et de questions scientifiques.Par exemple, dans une étude réalisée par Artim et al en 2020 dans les Caraïbes, où ils ont utilisé des pièges lumineux pour quantifier la couverture corallienne et la biomasse des poissons sur l’abondance des Gnathiidae. Conclusion. Alors que d’autres techniques ont été développées et utilisées pour collecter les Gnathiids, cette technique est particulièrement efficace. Bien que les pièges lumineux décrits ici attirent un large éventail de petits invertébrés mobiles, la composition de ces prises accessoires est très variable.Cependant, lorsqu’ils sont installés dans un habitat qui comprend des gravats et des poissons, les Gnathiidés sont capturés régulièrement. Bien que cette étude de démonstration se soit concentrée sur des sites aux Philippines, des pièges de conception similaire ont également été utilisés avec succès pour des études sur des sites de la région des Caraïbes et de la Grande Barrière de Corail.

collecting-marine-gnathiid-isopod-fish-parasites-with-light-traps

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Les tests comportementaux fournissent des outils puissants pour comprendre la fonction neuronale. Nous présentons ici plusieurs protocoles pour quantifier le comportement alimentaire prédateur trouvé chez le nématode modèle Pristionchus pacificus et ses parents. De plus, nous fournissons des méthodes pour analyser les adaptations alimentaires des prédateurs, y compris les structures buccales et les dents.

Dosage Comportements Alimentation prédatrices dans<em&gt; Pristionchus</em&gt; Et d&#39;autres nematodes

Plancton et les particules en suspension jouent un rôle majeur dans les cycles biogéochimiques dans l’océan. Ici, nous fournissons une méthode ultra propre, faible contrainte pour la collecte de différentes tailles de particules et de planctons en mer avec la capacité de traiter des volumes importants d’eau de mer.

Un appareil ultra propre multicouche pour la collecte de plancton marin taille fractionné et particules en suspension

L’approche de marqueur trophique acide gras, c'est-à-dire l’assimilation des acides gras comme molécule entière et le transfert dans les tissus de consommateurs mineures ou sans aucune modification, est entravée par les lacunes dans les connaissances dans le métabolisme des acides gras des invertébrés du sol petite. Profilage de Isotopologue est fourni comme un outil précieux pour démêler les interactions trophiques.

Profilage de l’acide gras 13C Isotopologue donne un aperçu de transfert trophique de carbone et le métabolisme des lipides des consommateurs d’invertébrés

La balane Balanus (Amphibalanus) improvisus est un modèle pour étudier l’osmorégulation et antifouling. Cependant, la reproduction saisonnière naturelle donne un approvisionnement imprévisible de la larve cypris. Ici, un protocole pour la cultiver tout au long de l’année des b. improvisus est décrite, y compris la production de larves. L’utilisation de bernacles cultivées dans des études d’expression génique est illustrée.

balane Balanus improvisus comme modèle Marine - culture et l’Expression des gènes

Poisson zèbre (Danio rerio) deviennent un modèle animal vertébré-employé couramment pour la colonisation microbienne et la pathogenèse. Ce protocole décrit l’utilisation du protozoaire Paramecium caudatum comme un véhicule pour des infections transmises par les aliments chez les larves de poisson zèbre. P. caudatum facilement intériorise les bactéries et obtenir repris par zebrafish larvaire par des comportements de prédateurs naturels.

Utilisant le protozoaire Paramecium caudatum comme vecteur d’Infections d’origine alimentaire chez les larves de poisson zèbre

Le protocole se concentre sur la collecte des échantillons de tortues marines, décrivant toutes les étapes de la récupération des animaux et de la necropsie à la classification et la quantification des déchets marins ingérés. En outre, les résultats représentatifs montrent comment utiliser les données collectées pour élaborer les seuils possibles pour un bon état environnemental.

Collecte de données sur l’ingestion de litière marine dans les tortues marines et les seuils pour un bon état environnemental

Présenté ici est un protocole pour une seule cellule, l'épifluorescence technique basée sur la microscopie pour quantifier les taux de pâturage chez les eucaryotes prédateurs aquatiques avec une haute précision et une résolution taxonomique.

Bactéries étiquetées fluorescentes comme traceur pour révéler de nouvelles voies de flux de carbone organique dans les écosystèmes aquatiques

Il s'agit d'un protocole visant à modéliser le spectre de taille (rapport d'échelle entre la masse individuelle et la densité de population) pour les données combinées sur les poissons et les invertébrés provenant des cours d'eau et des rivières. Les méthodes comprennent : les techniques de terrain pour recueillir des échantillons quantitatifs de poissons et d'invertébrés; méthodes de laboratoire pour normaliser les données sur le terrain; et l'analyse des données statistiques.

Modélisation du spectre de taille pour les macroinvertébrés et les poissons dans les écosystèmes des cours d'eau

Oikopleura dioica est un organisme modèle tunicier dans divers domaines de la biologie. Nous décrivons les méthodes d’échantillonnage, l’identification des espèces, la configuration de la culture et les protocoles de culture pour les animaux et les aliments pour algues. Nous soulignons les facteurs clés qui ont contribué à renforcer le système culturel et discutons des problèmes et des résolutions possibles.

Échantillonnage simplifié et culture du Larvacean cosmopolite pélagique, Oikopleura dioica

Ce protocole présente une méthode d’évaluation du taux d’alimentation du crustacé xylophage Limnoria en mesurant la production de granulés fécaux. Cette méthode est conçue pour être utilisée dans des laboratoires non spécialisés et peut être incorporée dans des protocoles d’essai standard afin d’évaluer la durabilité accrue du bois dans des conditions marines.

Test rapide de résistance du bois à la biodégradation par les crustacés marins xylophages

Les relevés au chalut optique offrent une méthode non invasive d’échantillonnage des populations de poissons de fond et fournissent des données à plus grande échelle que les relevés traditionnels au chalut. Cet article propose une procédure générale pour une enquête au chalutage optique des poissons de fond en Nouvelle-Angleterre.

Levés au chalut optique des poissons de fond : une étude vidéo au chalut de la morue atlantique (Gadus morhua) du golfe du Maine occidental

Découvrez une méthode efficace de piégeage lumineux pour collecter les isopodes gnathiides parasites des poissons dans les récifs coralliens. Cette technique permet d'étudier la dynamique écologique de ces organismes nocturnes.

Collecte de parasites de poissons isopodes gnathiidés marins avec des pièges lumineux

Explorer plus de vidéos