Name: Protocole de capture-vaccination-remise en liberté pour l’immunisation des mouffettes et d’autres vecteurs de la rage contre la rage (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-11-29T12:20:00.000+00:00
Duration: 4 min 10 s
Description: Découvrez la méthode de capture-vaccination-libération pour immuniser les mouffettes contre la rage sans immobilisation chimique. Ce protocole sécurisé protège les animaux et les opérateurs grâce à un équipement de protection adapté.

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<ol><li>Rosatte, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+raccoon+rabies+from+Wolfe+Island%2C+Ontario%3A+animal+density+and+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">The elimination of raccoon rabies from Wolfe Island, Ontario: animal density and movements.</a> Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 242-250 (2007).</li>
<li>Marston, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+a+rabies+virus+host+shift+event+reveals+within-host+viral+dynamics+in+a+new+host%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Evolution%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of a rabies virus host shift event reveals within-host viral dynamics in a new host.</a> Virus Evolution. 3 (2), vex038(2017).</li>
<li>Freuling, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+fox+rabies+from+Europe%3A+determinants+of+success+and+lessons+for+the+future%5BTitle%5D)+AND+%22Philosophical+Transactions+of+the+Royal+Society+B%3A+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">The elimination of fox rabies from Europe: determinants of success and lessons for the future.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 368, 20120142(2013).</li>
<li>Slate, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oral+rabies+vaccination+in+North+America%3A+opportunities%2C+complexities%2C+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Oral rabies vaccination in North America: opportunities, complexities, and challenges.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 3 (12), e549-e549 (2009).</li>
<li>Wohlers, A., Lankau, E. W., Oertli, E. H., Maki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Challenges+to+controlling+rabies+in+skunk+populations+using+oral+rabies+vaccination%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Zoonoses+and+Public+Health%22%5BJournal%5D)">Challenges to controlling rabies in skunk populations using oral rabies vaccination: A review.</a> Zoonoses and Public Health. 65 (4), 373-385 (2018).</li>
<li>Sterner, R. T., Meltzer, M. I., Shwiff, S. A., Slate, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tactics+and+economics+of+wildlife+oral+rabies+vaccination%2C+Canada+and+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Tactics and economics of wildlife oral rabies vaccination, Canada and the United States.</a> Emerging Infectious Diseases. 15 (8), 1176-1184 (2009).</li>
<li>Elmore, S. A., Chipman, R. B., Slate, D., Huyvaert, K. P., VerCauteren, K. C., Gilbert, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Management+and+modeling+approaches+for+controlling+raccoon+rabies%3A+The+road+to+elimination%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Management and modeling approaches for controlling raccoon rabies: The road to elimination.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 11, e0005579(2017).</li>
<li>Kuzmin, I. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+inferences+suggest+multiple+host+shifts+of+rabies+viruses+from+bats+to+mesocarnivores+in+Arizona+during+2001-2009%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Molecular inferences suggest multiple host shifts of rabies viruses from bats to mesocarnivores in Arizona during 2001-2009.</a> PLoS Pathogens. 8 (6), e1002786(2012).</li>
<li>Shwiff, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+and+indirect+costs+of+rabies+exposure%3A+a+retrospective+study+in+southern+California+%281998-2002%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Direct and indirect costs of rabies exposure: a retrospective study in southern California (1998-2002).</a> Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 251-257 (2007).</li>
<li>Shwiff, S. A., Elser, J. L., Ernst, K. H., Shwiff, S. S., Anderson, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cost-benefit+analysis+of+controlling+rabies%3A+placing+economics+at+the+heart+of+rabies+control+to+focus+political+will%5BTitle%5D)+AND+%22OIE+Scientific+and+Technical+Review%22%5BJournal%5D)">Cost-benefit analysis of controlling rabies: placing economics at the heart of rabies control to focus political will.</a> OIE Scientific and Technical Review. 37 (2), 681-689 (2018).</li>
<li>Rosatte, R. C., Power, M. J., Machines, C. D., Campbell, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trap-vaccinate-release+and+oral+vaccination+for+rabies+control+in+urban+skunks%2C+raccoons+and+foxes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Trap-vaccinate-release and oral vaccination for rabies control in urban skunks, raccoons and foxes.</a> Journal of Wildlife Diseases. 28 (4), 562-571 (1992).</li>
<li>Slavinski, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trap-vaccinate-release+program+to+control+raccoon+rabies%2C+New+York%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Trap-vaccinate-release program to control raccoon rabies, New York, USA.</a> Emerging Infectious Diseases. 18 (7), 1170-1172 (2012).</li>
<li>Rosatte, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+control+of+raccoon+rabies+in+Ontario+Canada%3A+Proactive+and+reactive+tactics%2C+1994-2007%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">The control of raccoon rabies in Ontario Canada: Proactive and reactive tactics, 1994-2007.</a> Journal of Wildlife Diseases. 45 (3), 772-784 (2009).</li>
<li>Rosatte, R. C., Howard, D. R., Campbell, J. B., Maclnnes, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intramuscular+vaccination+of+skunks+and+raccoons+against+rabies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Intramuscular vaccination of skunks and raccoons against rabies.</a> Journal of Wildlife Diseases. 26 (2), 225-230 (1990).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>#8 x 1-1/2 po. R4 Multi-Purpose Star Drive Flat Head Screw (110 par paquet)</td><td>Home Depot</td><td>96085</td><td>Utilisé pour fixer la base à la tige de poussée de l'outil d'aspiration</td></tr><tr><td>#8 x 1-1/4 po. #2 Phillips, Vis à tête plate en dôme pour bois (Paquet de 100)</td><td>Home Depot</td><td>SD8X1.25-R</td><td>Utilisé pour fixer le panneau de piège à la cheville</td></tr><tr><td>2&nbsp; po. x 2 po. x 8 pi. Planche de lattes de bois Furring Strip</td><td>Home Depot</td><td>75800593</td><td>Tige de poussée pour l'outil d'aspiration</td></tr><tr><td>Aiguille 20 G&nbsp; x 1,5 po</td><td>Kendall monoject</td><td>8881</td><td>Utilisée pour vacciner l'animal</td></tr><tr><td>Seringue 3 mL</td><td>Kendall monoject</td><td>513934</td><td>Utilisée pour vacciner l'animal</td></tr><tr><td>Marteau de perçage en acier 48 oz.</td><td>Home Depot</td><td>MRF3LB</td><td>Utilisé pour planter le panneau de piège dans le sol</td></tr><tr><td>Lame de scie circulaire OSB/contreplaqué 7-1/4 po. x 140 dents</td><td>Home Depot</td><td>A07140A</td><td>Lame nécessaire pour la scie circulaire pour couper le contreplaqué</td></tr><tr><td>Planche à épingles en aluminium - Ouverture supérieure, format Lettre</td><td>ULINE</td><td>S-20173</td><td>Utilisée pour enregistrer et conserver les fiches de données</td></tr><tr><td>Scie circulaire</td><td>Home Depot</td><td>CSB144LZK</td><td>Utilisée pour couper le bois pour fabriquer l'outil d'aspiration</td></tr><tr><td>Comprimé froid - 6 oz</td><td>ULINE</td><td>S-9902</td><td>Utilisé pour réguler la température du vaccin</td></tr><tr><td>Savon à vaisselle</td><td>ULINE</td><td>S-9975</td><td>Utilisé pour nettoyer les pièges</td></tr><tr><td>Vêtement de protection Dupont Tyvek&nbsp;</td><td>ULINE</td><td>S-11495</td><td>Utilisé pour protéger le personnel des éclaboussures de mouffette. La taille sera dépendante de la taille du personnel. Vous pouvez également utiliser le combiné sans capuche S-9636.</td></tr><tr><td>Unité GPS portable</td><td>Garmin</td><td>ETrex 32X</td><td>Utilisé pour enregistrer l'emplacement du piège et des animaux capturés</td></tr><tr><td>Miroir portable 6 po. x 7 po.</td><td>Walmart</td><td>Equate</td><td>Utilisé pour déterminer le sexe de l'animal</td></tr><tr><td>Lampe frontale</td><td>Home Depot</td><td>HDB32EH</td><td>Pour vérifier les pièges avant le lever du soleil</td></tr><tr><td>Pot de beurre de cacahuète</td><td>Walmart</td><td>Pot de 40 oz</td><td>Appât pour piéger les mouffettes.&nbsp;</td></tr><tr><td>Piège vivant pour mouffettes</td><td>Tomahawk</td><td>103</td><td>Utilisé pour attraper les mouffettes</td></tr><tr><td>Piège vivant pour mouffettes et autres carnivores</td><td>Tomahawk</td><td>205; 602</td><td>Utilisé pour attraper les mouffettes et autres carnivores</td></tr><tr><td>Gants en nitrile</td><td>ULINE</td><td>S-14179</td><td>Utilisé pour protéger le personnel des agents pathogènes. La taille et l'utilisation de gants poudrés ou non poudrés dépendront du choix du personnel.</td></tr><tr><td>Kit de perceuse/visseuse 18 V sans fil ONE+ 3/8 po avec batterie de 1,5 Ah, chargeur, outils manuels, accessoires et sac d'outils</td><td>Home Depot</td><td>PCL201K1SB</td><td>Utilisé pour assembler les panneaux sur les piquets</td></tr><tr><td>Stylo à bille Paper Mate Profile 8 paquets Pointe grasse noire de 1,4 mm</td><td>Staples</td><td>2095460</td><td>Utilisé pour écrire sur les fiches de données</td></tr><tr><td>Panneau de piège antirabique 9 po. x 12 po.</td><td>FedEx Office</td><td>NA</td><td>Attaché au piquet près de l'emplacement du piège</td></tr><tr><td>Vaccin contre la rage</td><td>Boehringer Ingelheim</td><td>Imrab&reg;</td><td>1 mL par animal; https://www.boehringer-ingelheim.com/animal-health/companion-animals-products/rabisin-imrab#:~:text=Rabisin%C2%AE%20%2F%20Imrab%C2%AE%20is,signs%20due%20to%20rabies%20infection.</td></tr><tr><td>Panneau d'avertissement contre la rage 4 po. x 6 po.</td><td>FedEx Office</td><td>NA</td><td>Attaché au haut du piège</td></tr><tr><td>Étiquette d'oreille pour raton laveur et renard</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005-3</td><td>Étiquettes d'oreilles pour ratons laveurs et renards</td></tr><tr><td>Étiquette d'oreille pour raton laveur et renard</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005s3</td><td>Pince à étiquettes d'oreilles pour attacher les étiquettes d'oreilles aux ratons laveurs et renards</td></tr><tr><td>Refroidisseur de repas à lunch 6 packs</td><td>4imprint.com</td><td>155149</td><td>Utilisé pour transporter le vaccin sur le terrain</td></tr><tr><td>Rouleau de film plastique 12 pi. x 400 pi.</td><td>3M</td><td>6723</td><td>Utilisé pour calmer l'animal et protéger le personnel</td></tr><tr><td>Lunettes de protection ou visière jetable</td><td>ULINE</td><td>S-24607</td><td>Utilisé pour protéger le visage du personnel contre les éclaboussures de mouffette et les agents pathogènes.</td></tr><tr><td>Contreplaqué brut (Commun: 1/2 po. x 2 pi. x 4 pi.; Réel: 0,451 po. x 23,75 po. x 47,75 po.)</td><td>Home Depot</td><td>300896</td><td>Base pour l'outil d'aspiration</td></tr><tr><td>Balance 55 lb x 0,5 oz</td><td>Brecknell</td><td>Modèle 816965007486</td><td>Utilisé pour peser la cage et l'animal</td></tr><tr><td>Stylo permanent Sharpie à pointe fine noire 1 paquet</td><td>Ace Hardware</td><td>35010</td><td>Utilisé pour étiqueter les sacs à sandwich</td></tr><tr><td>Conteneur à aiguilles - 1 pinte</td><td>ULINE</td><td>S-15307</td><td>Pour contenir les seringues usagées</td></tr><tr><td>Étiquette d'oreille pour mouffette</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005-1</td><td>Étiquettes d'oreilles pour mouffettes</td></tr><tr><td>Applicateur d'étiquette d'oreille pour mouffette</td><td>National Band and Tag Company</td><td>1005s1&nbsp;</td><td>Pince à étiquettes d'oreilles pour attacher les étiquettes d'oreilles aux mouffettes</td></tr><tr><td>Eau du robinet</td><td>NA</td><td></td><td>Utilisé pour nettoyer les pièges</td></tr><tr><td>Fil de ligne de piège</td><td>Minnesota Trap Line Products, INC</td><td>11GA-01</td><td>Fil de piège pour fixer le panneau au piège https://www.minntrapprod.com/Snares/departments/577/</td></tr><tr><td>Bouteilles Ziploc pour sandwich</td><td>ULINE</td><td>S-23777</td><td>Utilisé pour contenir les étiquettes d'oreilles</td></tr></tbody></table>

protocole de capture-vaccination-remise en liberté pour l’immunisation des mouffettes et d’autres vecteurs de la rage contre la rage

A Trap-Vaccinate-Release Protocol for Immunization of Skunks and Additional Rabies Vectors Against Rabies

Protocole de capture-vaccination-remise en liberté pour l’immunisation des mouffettes et d’autres vecteurs de la rage contre la rage

Oral vaccination of wildlife against rabies via the distribution of vaccine-laden baits is used widely as a management tool in Europe and North America. ...

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Research

Recherche

JoVE Journal

Environment

Environnement

Nous avons offert aux mangoustes captives des appâts vaccinales contre la rage buccale placebo avec de l'acide éthylique ou méthyle iophenoxique comme biomarqueur et vérifié l'utilisation d'appâts à l'aide d'une nouvelle chromatographie liquide avec la spectrométrie de masse en tandem (LC-MS/MS).

Analyse des analogues de l'acide iophénoxique chez la petite mangouste indienne (Herpestes Auropunctatus) Sera pour utilisation comme marqueur biologique de vaccination contre la rage buccale

Le test immunohistochimique rapide direct (DRIT) offre une alternative reconnue par l'Organisation mondiale de la santé animale et de l'Organisation mondiale de la santé (OIE/OMS) au test direct d'anticorps fluorescents (DFA) pour le diagnostic de la rage. Ce test permet des applications sur le terrain qui peuvent être effectuées en environ 1 h sur les impressions cérébrales à l'aide de la microscopie légère.

Surveillance accrue de la rage à l'aide d'un test immunohistochimique rapide direct

Ce protocole introduit une procédure d'exploitation de laboratoire standard pour l'essai diagnostique des antigènes de lyssavirus dans les chauves-souris à Taiwan.

Procédure d'exploitation standard pour la surveillance du Lyssavirus de la population de chauves-souris à Taiwan

Une réaction en chaîne de polymérase de transcription inverse imbriquée de Pan-lyssavirus a été développée pour détecter spécifiquement tous les lyssavirus connus. La validation à l’aide d’échantillons de cerveau de la rage de différentes espèces animales a montré que cette méthode a une sensibilité et une spécificité équivalentes au test d’anticorps fluorescent étalon-or et pourrait être utilisée pour le diagnostic systématique de la rage.

Évaluation d’une réaction en chaîne de polymérase de transcription inverse imbriquée universelle pour la détection des lyssavirus

Ici, nous décrivons une immunocapture indirecte de sandwich d’ELISA pour déterminer le contenu immunogénique de glycoprotéine dans les vaccins de rage. Ce test utilise un anticorps monoclonal neutralisant (mAb-D1) reconnaissant les garnitures de glycoprotéine. Il s’agit d’une alternative au test in vivo NIH pour suivre la cohérence de la puissance vaccinale pendant la production.

Test ELISA in Vitro pour évaluer la puissance vaccinale contre la rage

Ce RT-PCR en temps réel utilisant le colorant intercalateur de dsDNA est approprié pour diagnostiquer des infections de lyssavirus. La méthode commence par l'ARN extrait d'échantillons pré-mortem ou post-mortem soupçonnés de rage, détaillant la préparation du mélange maître, l'ajout d'ARN, la configuration de la machine en temps réel et l'interprétation correcte des résultats.

Pan-lyssavirus en temps réel RT-PCR pour le diagnostic de la rage

Nous présentons un protocole complet pour le diagnostic post mortem de la rage animale dans des conditions de terrain utilisant un essai immunochromagraphic rapide de diagnostic (RIDT), de l’échantillonnage de biopsie de cerveau à l’interprétation finale. Nous décrivons également d’autres applications utilisant le dispositif pour l’analyse moléculaire et le génotypage viral.

Test de diagnostic immunochromatographique rapide sur le terrain postmortem pour les paramètres limités par les ressources avec d’autres applications moléculaires

Ce protocole présente une approche basée sur qRT-PCR pour déterminer le numéro de copie de gène de nucléoprotéine de virus de rage (N) dans diverses structures anatomiques de cerveau bovin utilisant la transcription in vitro.

Quantitation du virus de la rage dans diverses structures cérébrales bovines

Cette méthode décrit l’encapsulation de l’antigène rabique dans des microparticules polymères biodégradables ayant des propriétés structurelles et matérielles qui permettent une libération pulsatile après un délai prédéterminé. L’évaluation par dosage immunoenzymatique (ELISA) de l’antigène extrait du noyau de particules confirme la présence intacte de glycoprotéine trimérique du virus de la rage par fabrication de particules.

Fabrication de microparticules polymères pulsatiles encapsulant l’antigène antirabique

Nous présentons ici un flux de travail rapide et rentable pour caractériser les génomes du virus de la rage (RABV) à l’aide de la technologie nanopore. Le flux de travail vise à soutenir la surveillance fondée sur la génomique à l’échelle locale, en fournissant des informations sur les lignées de RABV en circulation et leur placement dans les phylogénies régionales afin d’orienter les mesures de lutte contre la rage.

Séquençage du génome entier pour la caractérisation rapide du virus de la rage à l’aide de la technologie des nanopores

Ce protocole fait la démonstration de l’essai RT-PCR (transcription inverse en chaîne par polymérase en temps réel du pan-lyssavirus LN34), de la collecte de tissus à l’interprétation des résultats, y compris les mises à jour des séquences d’amorces et des formulations afin d’améliorer les performances des tests pour certains lyssavirus et lagomorphes non enragés. Nous démontrons également la configuration de l’essai pour un format LN34 multiplexé à puits unique (LN34M).

Diagnostic post-mortem de la rage chez les animaux par le test actualisé et multiplexé LN34 Real-time Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction

Découvrez la méthode de capture-vaccination-libération pour immuniser les mouffettes contre la rage sans immobilisation chimique. Ce protocole sécurisé protège les animaux et les opérateurs grâce à un équipement de protection adapté.

Protocole de capture-vaccination-remise en liberté pour l’immunisation des mouffettes et d’autres vecteurs de la rage contre la rage (Vidéo) | JoVE Journal

Protocole de capture-vaccination-remise en liberté pour l’immunisation des mouffettes et d’autres vecteurs de la rage contre la rage

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