18 août 2023
Les pièges extracellulaires neutrophiles (TNE) sont associés à diverses maladies, et l’immunofluorescence est souvent utilisée pour leur visualisation. Cependant, il existe différents protocoles de coloration et, dans de nombreux cas, un seul type de tissu est examiné. Ici, nous établissons un protocole d’application générale pour la coloration des TNE dans les tissus de souris et d’humains.
Parmi la sélection d’anticorps pour l’imagerie tissulaire, le processus de fixation pose un défi par masquage d’épitopes. Par conséquent, une étape de récupération personnalisée est nécessaire pour exposer ces antigènes à la liaison aux anticorps. De plus, l’autofluorescence inhérente aux tissus peut causer des difficultés jusqu’à une coloration de fond élevée.
Cependant, l’utilisation d’approches différentes dans les protocoles de la littérature empêche une comparaison standardisée entre les images. Notre étude vise à répondre à la demande de procédures standardisées et à aider le chercheur à surmonter les défis pendant le processus d’imagerie. Nous avons établi un protocole d’imagerie polyvalent applicable à différents tissus en comparant différents protocoles.
Notre travail fournit donc des conseils d’orientation et de dépannage, de l’utilisation des anticorps à l’assemblage des échantillons, en mettant en évidence les pièges potentiels. Nos résultats font progresser la recherche en introduisant un nouvel anticorps primaire contre l’hisone trois citrulliné, ainsi qu’un agent réducteur autofluorescent pour minimiser la coloration de fond. De plus, pour une imagerie réussie, nous mettons l’accent sur la manipulation soigneuse des échantillons et sur l’importance de maintenir une température élevée et constante pour la récupération de l’antigène.
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Cette étude aborde les défis de la visualisation des pièges extracellulaires à neutrophiles (PEN) dans divers tissus. En établissant un protocole d'imagerie standardisé, la recherche vise à améliorer la cohérence et la fiabilité de la visualisation des PEN dans les tissus de souris et d'humains.
Standardized immunofluorescence imaging of neutrophil extracellular traps (NETs) addresses a critical need for reproducible target validation in inflammation and immune-mediated disease research. By enabling consistent visualization across human and mouse tissues, this protocol supports predictive confidence at the discovery and translational interface. Reliable NET detection informs mechanistic de-risking and portfolio triage for therapeutic programs targeting innate immunity and inflammatory pathways.
This immunofluorescence protocol integrates from early discovery through preclinical research, supporting hypothesis testing, assay development, and translational validation in immune and inflammatory disease programs.