26 avril 2024
Cette recherche décrit deux techniques pour isoler les pièges extracellulaires neutrophiles abondants (TNE) de la moelle osseuse du rat. Une méthode combine un kit d’isolement des neutrophiles commercial avec une centrifugation à gradient de densité, tandis que l’autre utilise uniquement la centrifugation à gradient de densité. Les deux approches produisent des TNE fonctionnelles surpassant celles des neutrophiles du sang périphérique.
Nous avons mis au point une méthode d’isolement des neutrophiles de rat et d’extraction ultérieure des TNE. Cette méthode permet d’optimiser l’accessibilité pour la réalisation d’expériences liées aux TNE chez le rat et dans des lignées cellulaires dérivées de rats. Dans notre étude, nous avons effectué une comparaison entre les neutrophiles isolés du sang périphérique et des fils de moelle osseuse.
Nos résultats mettent en évidence la supériorité des neutrophiles dérivés de la moelle osseuse, montrant un avantage numérique substantiel dans le nombre de neutrophiles isolés ainsi que leur capacité de synchronisation. Notre méthode basée sur la moelle osseuse pour isoler les neutrophiles et les TNE de rat comble une lacune de la recherche en optimisant les techniques d’isolement pour ces types de cellules. Contrairement aux méthodes précédentes qui utilisaient principalement le sang périphérique, notre protocole cible la moelle osseuse, augmentant les neutrophiles à grands rendements et offrant un modèle de rat plus précis pour étudier les neutrophiles et la biologie des rats.
Cette recherche étudie les méthodes d'isolement des pièges extracellulaires neutrophiles (PEN) à partir de la moelle osseuse de rat, en comparant deux techniques distinctes. L'étude montre que les deux méthodes produisent des PEN fonctionnels, les neutrophiles dérivés de la moelle osseuse démontrant une efficacité d'isolement supérieure à celle des neutrophiles du sang périphérique.
Efficient isolation of rat bone marrow neutrophils and NETs addresses a critical bottleneck in preclinical immunology and inflammation research. This method enables higher-yield, functionally comparable neutrophil and NET preparations, supporting robust target validation and mechanistic de-risking in early discovery. Enhanced scalability and reproducibility position this workflow as a foundational capability for translational and disease-relevant model development.
This isolation method integrates at the interface of early discovery and preclinical model development, supporting workflows from hypothesis testing to lead identification.