Name: Extraction du venin de la guêpe parasitoïde Trichogramma dendrolimi à l’aide d’un hôte artificiel (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-10-06T13:50:00.000+00:00
Duration: 3 min 53 s
Description: Apprenez une méthode efficace d'extraction du venin de Trichogramma dendrolimi à l'aide d'un hôte artificiel en film de polyéthylène. Cette technique améliore l'efficacité et facilite l'étude de la composition protéique du venin.

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Nous remercions le soutien financier de la Fondation des sciences naturelles de la province de Hainan (subvention n° 323QN262), de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (subvention n° 31701843 et 32172483), du Fonds d’innovation pour la science et la technologie agricoles du Jiangsu (subvention n° 323QN262). CX(22)3012 et CX(21)3008), la Fondation « Shuangchuang Doctor » de la province du Jiangsu (subvention n° 202030472) et le fonds de démarrage de l’Université agricole de Nanjing (subvention n° 804018).

1. L’élevage d’insectes
<ol><li>Nourrissez Corcyra cephalonica avec de la farine de maïs à une température de 26 ± 1 °C et à une humidité relative de 40 % ± 10 %.</li>
	<li>Élevez la souche T. dendrolimi de l’insectarium Jilin à l’intérieur en utilisant les œufs de Corcyra cephalonica comme hôtes. Nourrir les guêpes adultes avec 10 % d’eau de saccharose dans des tubes de drosophile à une température de 26 ± 1 °C, une humidité relative de 70 % ± 10 %, une lumière (L) : sombre (D) une période de 14 h : 10 h.</li>
</ol>2. Préparation de cartes d’oeufs en film plastique polyéthylène
<ol><li>Prenez un film plastique polyéthylène d’une longueur de 16 cm, d’une largeur de 12 cm et d’une épaisseur de 20 μm. Presser 30 protubérances semi-circulaires d’un diamètre de 2-3 mm et d’une hauteur d’environ 3 mm à l’aide d’une tige de meulage en verre selon la disposition standard de la plaque PCR de 96 trous. REMARQUE : Le processus d’extraction de 30 protubérances semi-circulaires à l’aide d’une tige de broyage en verre doit être effectué en faisant attention à la pression car une presse trop dure percera le plastique et contaminera la tige de broyage sans venin extraite.</li>
	<li>Désinfectez le film plastique de polyéthylène pressé en exposant les deux côtés à la lumière ultraviolette (UV) pendant 1 h.</li>
	<li>Ajoutez une petite quantité d’alcool polyvinylique à 10 % sur la surface semi-circulaire.</li>
</ol>3. Parasitisme de Trichogramma dendrolimi 
<ol><li>Après l’anesthésie au CO2 , placez les guêpes femelles T. dendrolimi dans une boîte de collecte, et le nombre de guêpes était de ~3000.</li>
	<li>Placez le côté convexe de la carte d’œuf en film vers la boîte de collecte et fixez les bords avec un élastique.</li>
	<li>Ajouter 4 μL de solution d’acides aminés (6 g/L de leucine, 4 g/L de phénylalanine, 4,25 g/L d’histidine) à chaque saillie semi-circulaire. Recouvrez-le d’un film plastique plat en polyéthylène de 16 cm de long et 12 cm de large. Utilisez un élastique pour recouvrir hermétiquement la boîte de collecte de deux feuilles de plastique.</li>
	<li>Laissez les guêpes T. dendrolimi parasiter librement pendant 4 à 8 h et fournissez 10 % d’eau de saccharose à travers le coton mouillé.</li>
</ol>4. Collecte du venin de T. dendrolimi 
<ol><li>Prélever la solution d’acides aminés parasités à partir de la saillie interne de la carte d’ovule artificiel et la transférer dans le bouchon des tubes de 1,5 ml.</li>
	<li>Couvrez le bouchon du tube avec un filet en nylon de 10 μm avec un diamètre de 25 mm, fixez fermement le filet en nylon et le tube à centrifuger. Placez le tube de centrifugation à la verticale pour une centrifugation courte à l’aide d’une mini-centrifugeuse (1360 x g) pendant 10 s et collectez la solution filtrée (~100 μL de venin de T. dendrolimi ).</li>
	<li>Mesurer la concentration de venin de T. dendrolimi recueilli à l’aide d’une trousse de dosage de l’acide bicinchoninique (BCA) (Table des matériaux).</li>
	<li>Conservez le venin à -80 °C pour d’autres analyses.</li>
</ol>5. Analyses SDS-PAGE
<ol><li>Ajouter 30 μL de venin de T. dendrolimi à 10 μL de tampon de chargement d’échantillon 4x dodécyl sulfate-polyacrylamide de sodium (SDS-PAGE) (Table des matériaux) et chauffer à 95 °C pendant 10 min.</li>
	<li>Effectuer un cycle de gel SDS-PAGE à 130 V pendant 120 min.</li>
	<li>Teindre et décolorer le gel SDS-PAGE à l’aide de l’appareil de coloration des protéines (Table des matériaux).</li>
</ol>

Parasitation artificielle de l’hôte par Trichogramma dendrolimi et extraction de venin

<ol><li>Pennacchio, F., Strand, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+developmental+strategies+in+parasitic+hymenoptera%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Evolution of developmental strategies in parasitic hymenoptera.</a> Annual Review of Entomology. 51, 233-258 (2006).</li>
<li>Yan, Z. C., Ye, X. H., Wang, B. B., Fang, Q., Ye, G. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+advances+on+composition%2C+function+and+evolution+of+venom+proteins+in+parasitoid+wasps%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+Journal+of+Biological+Control%22%5BJournal%5D)">Research advances on composition, function and evolution of venom proteins in parasitoid wasps.</a> Chinese Journal of Biological Control. 33 (1), 1-10 (2017).</li>
<li>Asgari, S., Rivers, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Venom+proteins+from+endoparasitoid+wasps+and+their+role+in+host-parasite+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Venom proteins from endoparasitoid wasps and their role in host-parasite interactions.</a> Annual Review of Entomology. 56, 313-335 (2011).</li>
<li>Moreau, S. J. M., Guillot, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+and+prospects+on+biosynthesis%2C+structures%2C+and+functions+of+venom+proteins+from+parasitic+wasps%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Biochemistry+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Advances and prospects on biosynthesis, structures, and functions of venom proteins from parasitic wasps.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 35 (11), 1209-1223 (2005).</li>
<li>Yan, Z. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+venom+serpin+splicing+isoform+of+the+endoparasitoid+wasp+Pteromalus+puparum+suppresses+host+prophenoloxidase+cascade+by+forming+complexes+with+host+hemolymph+proteinases%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">A venom serpin splicing isoform of the endoparasitoid wasp Pteromalus puparum suppresses host prophenoloxidase cascade by forming complexes with host hemolymph proteinases.</a> Journal Biological Chemistry. 292 (3), 1038-1051 (2017).</li>
<li>Woelke, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Description+and+biology+of+two+new+egg+parasitoid+species+%28Hymenoptera%3A+Trichogrammatidae%29+reared+from+eggs+of+Heliconiini+butterflies+%28Lepidoptera%3A+Nymphalidae%3A+Heliconiinae%29+in+Panama%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Natural+History%22%5BJournal%5D)">Description and biology of two new egg parasitoid species (Hymenoptera: Trichogrammatidae) reared from eggs of Heliconiini butterflies (Lepidoptera: Nymphalidae: Heliconiinae) in Panama.</a> Journal of Natural History. 53 (11-12), 639-657 (2019).</li>
<li>Zang, L. S., Wang, S., Zhang, F., Desneux, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+control+with+Trichogramma+in+China%3A+History%2C+present+status%2C+and+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Biological control with Trichogramma in China: History, present status, and perspectives.</a> Annual Review of Entomology. 66, 463-484 (2021).</li>
<li>Nettles, W. C. J., Morrison, R. K., Xie, Z. N., Ball, D., Shenkir, C. A., Vinson, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic+action+of+potassium+chloride+and+magnesium+sulfate+on+parasitoid+wasp+oviposition%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Synergistic action of potassium chloride and magnesium sulfate on parasitoid wasp oviposition.</a> Science. 218, 4568(1982).</li>
<li>Tilden, R. L., Ferkovich, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kairomonal+stimulation+of+oviposition+into+an+artificial+substrate+by+the+endoparasitoid+Microplitis+croceipes+%28Hymenoptera%29Braconidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+Entomological+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">Kairomonal stimulation of oviposition into an artificial substrate by the endoparasitoid Microplitis croceipes (Hymenoptera)Braconidae).</a> Annals of the Entomological Society of America. 81 (1), 152-156 (1988).</li>
<li>Xie, Z. N., Li, L., Xie, Y. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+culture+of+Habrobracon+hebetor%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+Journal+of+Biological+Control%22%5BJournal%5D)">In vitro culture of Habrobracon hebetor.</a> Chinese Journal of Biological Control. 5 (2), 49-51 (1989).</li>
<li>Han, S. T., Liu, W. H., Li, L. Y., Chen, Q. X., Zeng, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breeding+Trichogramma+ostriniae+with+artificial+eggs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Environmental+Entomology%22%5BJournal%5D)">Breeding Trichogramma ostriniae with artificial eggs.</a> Journal of Environmental Entomology. 21 (1), 9-12 (1999).</li>
<li>Li, L. Y., Chen, Q. X., Liu, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oviposition+behavior+of+twelve+species+of+Trichogramma+and+its+influence+on+the+efficiency+of+rearing+them+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Environmental+Entomology%22%5BJournal%5D)">Oviposition behavior of twelve species of Trichogramma and its influence on the efficiency of rearing them in vitro.</a> Journal of Environmental Entomology. 11 (1), 31-35 (1989).</li>
<li>Xing, J. Q., Li, L. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rearing+of+an+egg+parasite+Anastatus+japonicus+Ashmead+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Entomologica+Sinica%22%5BJournal%5D)">Rearing of an egg parasite Anastatus japonicus Ashmead in vitro.</a> Acta Entomologica Sinica. 33 (2), 166-173 (1990).</li>
<li>Moreau, S. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%22It+stings+a+bit+but+it+cleans+well%22%3A+Venoms+of+Hymenoptera+and+their+antimicrobial+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">"It stings a bit but it cleans well": Venoms of Hymenoptera and their antimicrobial potential.</a> Journal of Insect Physiology. 59 (2), 186-204 (2013).</li>
<li>Moreau, S. J. M., Asgari, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Venom+proteins+from+parasitoid+wasps+and+their+biological+function%5BTitle%5D)+AND+%22Toxins%22%5BJournal%5D)">Venom proteins from parasitoid wasps and their biological function.</a> Toxins. 7 (7), 2385-2412 (2015).</li>
</ol>

L’auteur n’a rien à divulguer et n’a pas d’intérêts financiers concurrents.

Nous présentons ici une méthode d’extraction du venin de T. dendrolimi à l’aide d’hôtes artificiels. Les points clés de l’expérience de collecte de venin sont les suivants. (1) Au cours de la préparation, T. dendrolimi doit être anesthésié rapidement avec une concentration appropriée de CO2. Si la concentration de CO2 est trop faible, elle sera insuffisante pour anesthésier rapidement les trichogrammes . À l’inverse, si la concentration est trop élevée, les trichogramm...

Les guêpes parasitoïdes sont des insectes hyménoptères parasites qui sont des ressources importantes pour la lutte biologique1. Il existe une grande variété de guêpes parasitoïdes, avec plus de 600 000 espèces estimées2. La diversité des guêpes parasitoïdes dépasse de loin celle d’autres arthropodes venimeux, tels que les serpents, les escargots coniques, les araignées, les scorpions et les abeilles. Le venin est un facteur parasitaire important chez les guêpes parasitoïdes. Pour un parasitisme réussi, le venin est injecté dans l’hôte, modulant le comportement, l’immunité, le développement et le métabolisme de l’hôte3. De plus, le venin des guêpes parasitoïdes présente une diversité remarquable dans ses structures moléculaires, ses cibles et ses fonctions, reflétant une coévolution complexe avec leurs hôtes. Ainsi, le venin parasitoïde est une ressource précieuse et sous-estimée de molécules actives à des fins insecticides ou médicales4. Contrairement au venin des serpents, des escargots coniques, des araignées, des scorpions et des abeilles, le venin de guêpe parasitoïde ne peut pas être collecté par stimulation directe ou par stimulation électrique5. La méthode actuelle d’extraction du venin de guêpe parasitoïde consiste à disséquer le réservoir de venin. Cependant, les guêpes parasitoïdes sont souvent petites, et la dissection des guêpes parasitoïdes nécessite des compétences techniques élevées. Par conséquent, si nous pouvons trouver un moyen de collecter le venin des guêpes parasitoïdes de manière efficace et pratique, il sera d’une grande aide de rechercher le venin des guêpes parasitoïdes.
Trichogramma (Hymenoptera : Trichogrammatidae) est un genre de guêpes parasitoïdes minuscules (~0,5 mm de long)6. Ces guêpes sont parmi les agents de lutte biologique les plus utilisés, ciblant particulièrement les œufs de divers lépidoptères ravageurs dans l’agriculture et les forêts. Par exemple, T. dendrolimi, l’une des espèces de trichogrammes les plus utilisées en Chine, a été largement utilisé pour lutter contre une variété de ravageurs agricoles et forestiers, tels que Dendrolimus superans, Ostrinia furnacalis et Chilo suppressalis. Des études antérieures ont montré que les guêpes trichogrammes pouvaient injecter leurs œufs dans des hôtes artificiels7. Les hôtes artificiels peuvent être créés à l’aide de matériaux tels que la cire8, l’agar9, le parafilm10 et le film plastique11. La solution dans les hôtes artificiels qui induit une ponte suffisante pour les trichogrammes peut être simple, comme les acides aminés ou les sels inorganiques12. Sur la base de la caractéristique selon laquelle T. dendrolimi peut parasiter des hôtes artificiels, cette étude fournit une nouvelle méthode pour extraire le venin des guêpes parasitoïdes à l’aide d’hôtes artificiels. Cette approche vise à remédier aux lacunes du faible rendement, de la faible pureté et de la sensibilité à la contamination dans les techniques d’extraction actuelles. En utilisant cette méthode, une grande quantité de venin de haute pureté de T. dendrolimi peut être extraite, ce qui répond aux besoins de la recherche scientifique et du criblage de molécules bioactives à des fins insecticides ou médicales.

<table><tbody><tr><td>10 &mu ; m Nylon Net</td><td>Millipore</td><td>NY1002500</td><td>Pour filtrer les œufs</td></tr><tr><td>10 % Alcool polyvinylique</td><td>Aladdin</td><td>P139533</td><td>Pour attirer&nbsp ; T. dendrolimi&nbsp ; pour pondre des oeufs</td></tr><tr><td>10 % Eau de saccharose</td><td>Sinopharm Réactif chimique&nbsp ;</td><td>10021463</td><td>Feed Trichogramma dendrolimi</td></tr><tr><td>4x LDS Tampon de chargement</td><td>Ace Hardware</td><td>B23010301</td><td>SDS-PAGE</td></tr><tr><td>Boîte de collection</td><td>Deli</td><td>8555</td><td>Conteneur pour T. dendrolimi parasitism</td></tr><tr><td>Future PAGE&nbsp ; 4&ndash ; 12 % (12 puits)</td><td>Ace Hardware</td><td>J70236502X</td><td>Appareil</td></tr><tr><td>de coloration des protéines SDS-PAGE GenScript eStain L1</td><td>GenScript</td><td>L00753</td><td>SDS-PAGE</td></tr><tr><td>Tige de meulage du verre&nbsp ; &nbsp ;</td><td>Applygen</td><td>tb6268</td><td>Saillies semi-circulaires&nbsp ;</td></tr><tr><td>L- Leucine</td><td>Solarbio</td><td>L0011</td><td>Composants artificiels de l’hôte</td></tr><tr><td>L-Histidine</td><td>Aladdin</td><td>A2219458</td><td>Composants artificiels</td></tr><tr><td>de l’hôte L-Phénylalanine</td><td>Solarbio</td><td>P0010</td><td>Composants artificiels</td></tr><tr><td>de l’hôte Mini-Centrifugeuses</td><td>Scilogex</td><td>D1008</td><td>Centrifugeuse</td></tr><tr><td>MOPS-SDS Tampon de fonctionnement</td><td>Ace Hardware</td><td>B23021</td><td>SDS-PAGE</td></tr><tr><td>Kit de dosage des protéines BCA instantané Omni-Easy</td><td>Shanghai Yamay Biomedical Technology&nbsp ;</td><td>ZJ102</td><td>Pour l’estimation de la concentration en protéines de venin</td></tr><tr><td>Disposition de la plaque PCR de 96 trous</td><td>Thermo Fisher</td><td>AB1400L</td><td>Saillies semi-circulaires&nbsp ;</td></tr><tr><td>Film plastique en polyéthylène</td><td>Suzhou Aopang Trading &nbsp ;</td><td>001c5427</td><td>Carte d’oeuf artificiel</td></tr><tr><td>Marqueur de protéine de couleur pré-coloré (10&ndash ; 180 kDa)</td><td>YiFeiXue Biotech</td><td>YWB007</td><td>SDS-PAGE</td></tr><tr><td>Élastique</td><td>Guangzhou qianrui biologie science et technologie</td><td>009</td><td>Resserrer le film plastique et la boîte de collecte</td></tr><tr><td>Tapis septa en caoutchouc de silicone, 96 puits, trou rond</td><td>Sangon Biotech</td><td>F504416-0001</td><td>Saillies semi-circulaires&nbsp ;</td></tr></tbody></table>

extraction du venin de la guêpe parasitoïde trichogramma dendrolimi à l’aide d’un hôte artificiel

Extracting Venom from the Parasitoid Wasp Trichogramma dendrolimi Using an Artificial Host

Les guêpes parasitoïdes sont un groupe diversifié d’insectes hyménoptères qui constituent des ressources inestimables pour la lutte biologique contre les ravageurs. Pour assurer un parasitisme réussi, les guêpes parasitoïdes injectent du venin dans leurs hôtes pour supprimer l’immunité de leurs hôtes, moduler le développement, le métabolisme et même le comportement des hôtes. Avec plus de 600 000 espèces estimées, la diversité des guêpes parasitoïdes dépasse celle d’autres animaux venimeux, tels que les serpents, les escargots coniques et les araignées. Le venin de guêpe parasitoïde est une source sous-explorée de molécules bioactives avec des applications potentielles dans la lutte antiparasitaire et la médecine. Cependant, la collecte du venin parasitoïde est difficile en raison de l’impossibilité d’utiliser la stimulation directe ou électrique et de la difficulté de dissection en raison de leur petite taille. Trichogramma est un genre de minuscules guêpes parasitoïdes d’œufs (~0,5 mm) qui sont largement utilisées pour la lutte biologique contre les lépidoptères ravageurs dans l’agriculture et les forêts. Nous rapportons ici une méthode d’extraction du venin de T. dendrolimi à l’aide d’hôtes artificiels. Ces hôtes artificiels sont créés avec un film de polyéthylène et des solutions d’acides aminés, puis inoculés avec des guêpes Trichogramma pour le parasitisme. Le venin a ensuite été recueilli et concentré. Cette méthode permet d’extraire de grandes quantités de venin de trichogramme tout en évitant la contamination d’autres tissus causée par la dissection, un problème courant dans les protocoles de dissection de réservoir de venin. Cette approche innovante facilite l’étude du venin de Trichogramma , ouvrant la voie à de nouvelles recherches et applications potentielles.

La concentration en protéines d’échantillons représentatifs de venin a été mesurée à l’aide de la trousse d’analyse des protéines, et les résultats sont présentés dans le tableau 1. Les résultats ont montré que la concentration de protéine de venin recueillie par cette méthode variait de 0,35 μg/μL à 0,46 μg/μL, tandis que le témoin négatif de la solution d’acides aminés n’avait qu’une concentration en protéines de 0,03 μg/μL à 0,05 μg/μL. La concentration de protéine de venin collectée par cette méthode...

Nous présentons ici un protocole d’extraction du venin de Trichogramma dendrolimi à l’aide d’un hôte artificiel créé avec un film de polyéthylène et une solution d’acides aminés.

Extraction du venin de la guêpe parasitoïde Trichogramma dendrolimi à l’aide d’un hôte artificiel

Parasitoid wasps are a diverse group of hymenopteran insects that serve as invaluable resources for pest biocontrol. To ensure successful parasitism, ...

L’absence de méthodes efficaces d’extraction du venin limite souvent la recherche sur le venin des guêpes parasitoïdes, en particulier chez les minuscules guêpes parasitoïdes. Cette étude fournit une méthode efficace pour extraire le venin de Trichogramma avec une étude post-suivi du venin de Trichogramma, telle que la compensation protéique et l’analyse de la fonction du venin. Auparavant, aucune méthode d’échange du venin de guêpe parasitoïde ne nécessitait de distinguer la réserve de venin.Cependant, les guêpes parasitoïdes sont minuscules. Non seulement les exigences techniques pour distinguer le venin étaient élevées, mais la poursuite d’autres tissus pendant la dissection est également courante. Notre méthode normale utilise un hôte artificiel, évitant ainsi de tels problèmes.À l’avenir, nous nous concentrerons sur l’agriculture et les applications médicales du venin de trichogramme. Nous visons à utiliser des gènes spécifiques de venin insecticide pour la lutte antiparasitaire. Parallèlement, nous prévoyons d’étudier le potentiel inexploité du venin de Trichogramma dans la méthodologie, en particulier son utilité potentielle dans l’amélioration des techniques d’immunothérapie, et dans la découverte de nouvelles molécules antibiotiques.

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