Name: L’établissement de défauts composites osseux de suture calvaire chez le rat : un modèle standardisé pour l’étude de la thérapie de suture régénérative (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-05-10T14:10:00.000+00:00
Duration: 4 min 17 s
Description: Apprenez à créer des défauts osseux de suture calvaire chez le rat pour étudier les thérapies régénératives. Ce modèle standardisé permet d'évaluer la cicatrisation crânienne à court et long terme.

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<meta charset="utf8"></head><body>Standardisation du modèle de suture calvariale du rat pour les études régénératives

<ol><li>Li, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+suture+mesenchymal+stem+cells%3A+insights+and+advances%5BTitle%5D)+AND+%22Biomolecules%22%5BJournal%5D)">Cranial suture mesenchymal stem cells: insights and advances.</a> Biomolecules. 11 (8), 1129(2021).</li>
<li>Opperman, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+sutures+as+intramembranous+bone+growth+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Cranial sutures as intramembranous bone growth sites.</a> Dev Dyn. 219 (4), 472-485 (2000).</li>
<li>Lenton, K. A., Nacamuli, R. P., Wan, D. C., Helms, J. A., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+suture+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Top+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Cranial suture biology.</a> Curr Top Dev Biol. 66 (4), 287-328 (2005).</li>
<li>Slater, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+sutures%3A+A+brief+review%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Cranial sutures: A brief review.</a> Plast Reconstr Surg. 121 (4), 170-178 (2008).</li>
<li>Zhao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+suture+provides+a+niche+for+mesenchymal+stem+cells+of+craniofacial+bones%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The suture provides a niche for mesenchymal stem cells of craniofacial bones.</a> Nat Cell Biol. 17 (4), 386-396 (2015).</li>
<li>Maruyama, T., Jeong, J., Sheu, T. -J., Hsu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cells+of+the+suture+mesenchyme+in+craniofacial+bone+development%2C+repair+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Stem cells of the suture mesenchyme in craniofacial bone development, repair and regeneration.</a> Nat Commun. 7 (1), 10526(2016).</li>
<li>Wilk, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postnatal+calvarial+skeletal+stem+cells+expressing+PRX1+reside+exclusively+in+the+calvarial+sutures+and+are+required+for+bone+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Postnatal calvarial skeletal stem cells expressing PRX1 reside exclusively in the calvarial sutures and are required for bone regeneration.</a> Stem Cell Reports. 8 (4), 933-946 (2017).</li>
<li>Doro, D. H., Grigoriadis, A. E., Liu, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calvarial+suture-derived+stem+cells+and+their+contribution+to+cranial+bone+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Physiol%22%5BJournal%5D)">Calvarial suture-derived stem cells and their contribution to cranial bone repair.</a> Front Physiol. 8, 956(2017).</li>
<li>Kajdic, N., Spazzapan, P., Velnar, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Craniosynostosis-recognition%2C+clinical+characteristics%2C+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Bosn+J+Basic+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Craniosynostosis-recognition, clinical characteristics, and treatment.</a> Bosn J Basic Med Sci. 18 (2), 110-116 (2018).</li>
<li>Park, S., Zhao, H., Urata, M., Chai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sutures+possess+strong+regenerative+capacity+for+calvarial+bone+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Sutures possess strong regenerative capacity for calvarial bone injury.</a> Stem Cells Dev. 25 (23), 1801-1807 (2016).</li>
<li>Quarto, N., Behr, B., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opposite+spectrum+of+activity+of+canonical+Wnt+signaling+in+the+osteogenic+context+of+undifferentiated+and+differentiated+mesenchymal+cells%3A+Implications+for+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Opposite spectrum of activity of canonical Wnt signaling in the osteogenic context of undifferentiated and differentiated mesenchymal cells: Implications for tissue engineering.</a> Tissue Eng Part A. 16 (10), 3185-3197 (2010).</li>
<li>Kaku, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+Stem+Cell-Induced+Cranial+Suture-Like+Gap+in+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal Stem Cell-Induced Cranial Suture-Like Gap in Rats.</a> Plast Reconstr Surg. 127 (1), 69-77 (2011).</li>
<li>Yu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cranial+suture+regeneration+mitigates+skull+and+neurocognitive+defects+in+craniosynostosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cranial suture regeneration mitigates skull and neurocognitive defects in craniosynostosis.</a> Cell. 184 (1), e18 243-256 (2021).</li>
<li>Koons, G. L., Diba, M., Mikos, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Materials+design+for+bone-tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mater%22%5BJournal%5D)">Materials design for bone-tissue engineering.</a> Nat Rev Mater. 5 (8), 584-603 (2020).</li>
<li>Mardas, N., Kostopoulos, L., Karring, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+and+suture+regeneration+in+calvarial+defects+by+e-PTFE-membranes+and+demineralized+bone+matrix+and+the+impact+on+calvarial+growth%3A+an+experimental+study+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Craniofac+Surg%22%5BJournal%5D)">Bone and suture regeneration in calvarial defects by e-PTFE-membranes and demineralized bone matrix and the impact on calvarial growth: an experimental study in the rat.</a> J Craniofac Surg. 13 (3), 453-462 (2002).</li>
<li>Kostopoulos, L., Karring, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+the+sagittal+suture+by+GTR+and+its+impact+on+growth+of+the+cranial+vault%5BTitle%5D)+AND+%22J+Craniofac+Surg%22%5BJournal%5D)">Regeneration of the sagittal suture by GTR and its impact on growth of the cranial vault.</a> J Craniofac Surg. 11 (6), 553-561 (2000).</li>
<li>Mosaddad, S. A., Hussain, A., Tebyaniyan, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+the+use+of+animal+models+in+craniofacial+regenerative+medicine%3A+A+narrative+review%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+B+Rev%22%5BJournal%5D)">Exploring the use of animal models in craniofacial regenerative medicine: A narrative review.</a> Tissue Eng Part B Rev. , (2023).</li>
<li>Tan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PgC3Mg+metal-organic+cages+functionalized+hydrogels+with+enhanced+bioactive+and+ROS+scavenging+capabilities+for+accelerated+bone+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mater+Chem+B%22%5BJournal%5D)">PgC3Mg metal-organic cages functionalized hydrogels with enhanced bioactive and ROS scavenging capabilities for accelerated bone regeneration.</a> J Mater Chem B. 10 (28), 5375-5387 (2022).</li>
<li>Yazdanian, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+and+properties+of+%CE%B2TCP%2FZeolite%2FGelatin+scaffold+as+developed+scaffold+in+bone+regeneration%3A+in+vitro+and+in+vivo+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Biocybern+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Fabrication and properties of βTCP/Zeolite/Gelatin scaffold as developed scaffold in bone regeneration: in vitro and in vivo studies.</a> Biocybern Biomed Eng. 40 (4), 1626-1637 (2020).</li>
<li>Soufdoost, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+evaluation+of+novel+Tadalafil%2F%CE%B2-TCP%2FCollagen+scaffold+for+bone+regeneration%3A+A+rabbit+critical-size+calvarial+defect+study%5BTitle%5D)+AND+%22Biocybern+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo evaluation of novel Tadalafil/β-TCP/Collagen scaffold for bone regeneration: A rabbit critical-size calvarial defect study.</a> Biocybern Biomed Eng. 39 (3), 789-796 (2019).</li>
<li>Russell, W. P., Russell, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy%2C+head+and+neck%2C+coronal+suture%5BTitle%5D)+AND+%22StatPearls%22%5BJournal%5D)">Anatomy, head and neck, coronal suture.</a> StatPearls. , (2022).</li>
<li>Menon, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skeletal+stem+and+progenitor+cells+maintain+cranial+suture+patency+and+prevent+craniosynostosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Skeletal stem and progenitor cells maintain cranial suture patency and prevent craniosynostosis.</a> Nat Commun. 12 (1), 4640(2021).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Paraformaldéhyde à 4 %</td><td>Biosharp</td><td>BL539A</td><td></td></tr><tr><td>Solution d’iodophor à 2 %</td><td>Chengdu Jinshan Chemical Reagent Co., Ltd.</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>75 % d’éthanol</td><td>Chengdu Jinshan Chemical Reagent Co., Ltd.</td><td>Boules</td><td></td></tr><tr><td>de coton</td><td>Haishi Hainuo Group Co., Ltd.&nbsp ;</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Cotons-tiges</td><td>Lakong Medical Devices Co.,&nbsp ;</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Pince incurvée</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Logiciel Dataviewer et Ctan pour l’évaluation du volume des défauts résiduels</td><td>Bruker</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Fraises rondes dentaires à basse vitesse</td><td>Dreybird Medical Equipment Co., Ltd.</td><td>RA3-012 RA1-008</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel stérile jetable</td><td>Hangzhou Huawei Medical Supplies Co., Ltd.</td><td>Seringues</td><td></td></tr><tr><td>jetables (22 G)</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>SB1-089(IX)</td><td></td></tr><tr><td>Rasoir électrique</td><td>JASE</td><td>BM320210</td><td></td></tr><tr><td>Acide éthylènediamine tétraacétique (EDTA)</td><td>BioFroxx</td><td>1340GR500</td><td></td></tr><tr><td>Kit de teinture à l’hématoxyline et à l’éosine</td><td>Biosharp</td><td>BL700B</td><td></td></tr><tr><td>Aiguille d’irrigation (23 G)</td><td>Sichuan New Century Medical Polymer Products Co., Ltd.</td><td>Pièce</td><td></td></tr><tr><td>à main à basse vitesse</td><td>Guangzhou Dental Guard Technology Co., Ltd.</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Masson » s Kit de teinture trichrome</td><td>Solarbio</td><td>G1340</td><td></td></tr><tr><td>Tissus non tissés médicaux</td><td>Henan Yadu Industrial Co., Ltd.&nbsp ;</td><td>La</td><td></td></tr><tr><td>micro-tomographie (&micro ; CT)&nbsp ;</td><td>Scanco Medical AG</td><td>&micro ; CT45</td><td></td></tr><tr><td>Mimics 20.0 pour les images en coupe transversale</td><td>Materialise</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguilles</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Aucun Ascenseur</td><td></td></tr><tr><td>périosté</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Solution</td><td></td></tr><tr><td>saline</td><td>Sichuan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Logiciel de visualisation médicale Scanco pour la reconstruction d’images 3D</td><td>Scanco Medical AG</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>SPSS Statistics 20.0 pour l’analyse statistique</td><td>IBM</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Rats Sprague-Dawley&nbsp ;</td><td>Byrness Weil Biotech Ltd</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux droits</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>Aucun</td><td></td></tr><tr><td>Moteur chirurgical</td><td>MARATHON</td><td>N3-140232</td><td></td></tr><tr><td>Sutures chirurgicales (monofilament 3-0)</td><td>Hangzhou Huawei Medical Supplies Co., Ltd.</td><td>aucun</td><td></td></tr></tbody></table>

l’établissement de défauts composites osseux de suture calvaire chez le rat : un modèle standardisé pour l’étude de la thérapie de suture régénérative

The Establishment of Calvarial Suture-Bony Composite Defects in Rats: A Standardized Model for Suture-Regenerative Therapy Investigation

Dans cette étude, le défaut de suture calvaire-composite osseux du rat a été établi en perçant un trou rectangulaire de 4,5 mm x 2 mm à travers la suture coronale. L’illustration du schéma chirurgical et l’organigramme de la recherche sont illustrés à la figure 3. L’image 3D et la vue en coupe transversale d’échantillons postopératoires de 0 jour, à savoir des échantillons prélevés immédiatement après l’opération, ont confirmé la création réussie d’un défaut calvaire de pleine épaisseur, impliquant l’ablation complète de la suture coronale ainsi que des structures osseuses adjacentes aux deux extrémités (Figure 4A). Les images CT et les résultats d’analyse statistique correspondants à 6 semaines après l’opération ont révélé une inclination naturelle vers la fermeture du défaut accompagnée de nodules calcifiés irréguliers formés à l’intérieur du défaut (Figure 4). Cette tendance s’est accentuée 12 semaines après l’intervention (Figure 4), ce qui indique une fusion potentielle des sutures au fil du temps. Une analyse histologique plus poussée a été effectuée à l’aide de H&amp;E et de la coloration trichrome de Masson. Deux semaines après l’opération, nous avons observé une extension et une continuité remarquables du périoste et de la dure-mère, qui ont formé un tissu fibreux dense et épais et ont scellé efficacement la zone du défaut (Figure 5). Notamment, à ce stade précoce, l’émergence de fibres minéralisées colorées en bleu a été détectée, dont la présence a subi une augmentation substantielle au cours des 6 semaines suivant la chirurgie (Figure 5). À 12 semaines postopératoires, de gros morceaux de nouvel os ont été observés au centre du défaut (Figure 5), confirmant à nouveau le pronostic défavorable de calcification stromale et de fermeture de la suture. Les résultats défavorables de la cicatrisation naturelle des défauts composites osseux des sutures soulignent la nécessité de la régénération des sutures crâniennes par le biais d’interventions thérapeutiques, telles que l’implantation de biomatériaux 13,15,16.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig01v2.jpg"> Figure 1 : Instruments chirurgicaux. (A) Les articles chirurgicaux ont été numérotés par ordre d’utilisation, y compris (1) les pinces incurvées, (2) le scalpel stérile jetable, (3) l’élévateur périosté, (4) l’aiguille d’irrigation, (5) les boules de coton, (6) la pièce à main à basse vitesse, (7) le moteur chirurgical (la flèche jaune représente le bouton RPM et la flèche blanche représente l’interrupteur), (8) les fraises rondes dentaires à basse vitesse, (9) le porte-aiguille, (10) sutures monofilament 3-0 et (11) ciseaux droits. (B) Fraise ronde à basse vitesse de 1,2 mm et 0,8 mm de diamètre. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig01largev2.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig02.jpg"> Figure 2 : Intervention chirurgicale. (A) Placez le rat en position couchée. (B) Rasez les cheveux du cuir chevelu avec un rasoir électrique. (C) Inciser la peau avec un scalpel jetable. (D) Inciser le périoste à l’aide d’un scalpel. (E1, E2) Élevez le périoste pour exposer les sutures coronales à l’aide d’un élévateur périosté. Les flèches jaunes indiquent les sutures coronales. (F1) Perçage d’une rainure de positionnement. (F2) Créez au préalable un défaut rectangulaire avec une fraise ronde de 1,2 mm. (G1, G2) Coupez le défaut avec une fraise ronde de 0,8 mm pour obtenir une forme rectangulaire standard de 4,5 x 2 mm. (H1, H2) Calibrez la largeur et la longueur du défaut à l’aide d’un pied à coulisse. (I) Fermez la peau à l’aide de sutures monofilaments 3-0. Cette représentation utilise un cadavre, qui est délibérément laissé non drapé pour faciliter une meilleure visualisation anatomique. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig02large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig03.jpg"> Figure 3 : Illustration schématique du défaut composite de suture calvaire-os et stratégie de recherche de cette étude. Abréviations : H&amp;E = hématoxyline et éosine ; μCT = micro-tomographie informatisée. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig03large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig04.jpg"> Figure 4 : Tendance à la fermeture du défaut composite osseux de la suture calvaire. (A) Images μCT représentatives et vues en coupe transversale des défauts composites osseux de suture au jour 0, à la semaine 6 et à la semaine 12 postopératoires. Les coupes transversales représentent les emplacements indiqués par les lignes pointillées jaunes dans les images 3D. Barres d’échelle = 2 mm. (B) Analyse quantitative du volume des défauts résiduels après la chirurgie par le biais d’évaluations μCT. n = 6 répétitions/groupe. Les données sont exprimées en moyenne ± écart-type. ANOVA à un facteur suivie du test de comparaisons multiples de Dunnett. p&lt;0.001. Abréviations : PO = postopératoire ; μCT = micro-tomographie informatisée. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig04large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66417/66417fig05.jpg"> Figure 5 : Variations histologiques des défauts composites osseux de suture. (A) H&amp;E et (B) Coloration trichrome de Masson des défauts composites osseux de suture à la semaine 2, à la semaine 6 et à la semaine 12. Les contours pointillés rouges indiquent le tissu fibreux encapsulant la zone du défaut. Les pentagrammes noirs représentent les fibres minéralisées tachées de bleu. Les pentagrammes jaunes mettent en évidence le nouvel os formé au centre du défaut. Barres d’échelle = 500 μm ; 200 μm (encarts). Abréviations : PO = postopératoire ; H&amp;E = hématoxyline et éosine. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/66417fig05large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
Figure supplémentaire S1 : Largeur de la suture coronale dans la direction antéro-postérieure (image calvaire du plan sagittal). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66417/Supplementary%20Figure%201.zip" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.</a>

L’établissement de défauts composites osseux de suture calvaire chez le rat : un modèle standardisé pour l’étude de la thérapie de suture régénérative

Large-scale calvarial defects often coincide with cranial suture disruption, leading to impairments in calvarial defect restoration and skull development ...

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Ce protocole décrit l'isolement de tissu adipeux dérivé des cellules stromales de lipoaspirate et la création d'une 4 mm de taille critique défaut crânienne pour évaluer la régénération osseuse.

Réparation d&#39;un modèle de critique des défauts de taille crânienne Utilisation adipeuses cellules stromales prélevés sur des Lipoaspirate

Dans cette vidéo, nous décrivons l’intervention chirurgicale pour générer un modèle calvaire de lapin afin d’évaluer les capacités de régénération osseuse des matériaux de substitution d’échantillons osseux d’intérêt.

Génération d’un modèle de défaut calvarial de lapin : une procédure chirurgicale pour créer des défauts ronds dans la partie supérieure du crâne de lapin afin d’évaluer les matériaux de substitution osseuse pour les capacités de régénération osseuse

Les cellules stromales dérivées du tissu adipeux peuvent être utiles pour concevoir de nouveaux tissus à partir des propres cellules d’un patient. Nous présentons un protocole pour l’isolement d’une sous-population de cellules stromales (ASC) humaines dérivées du tissu adipeux avec un potentiel ostéogénique accru, suivi de l’application des cellules dans un test de cicatrisation calvaire in vivo.

Isolement rapide de BMPR-IB + Adipose-Derived cellules stromales pour utilisation dans un calvarial Defect Modèle de guérison

Nous présentons ici un protocole afin de visualiser les vaisseaux sanguins formation in vivo et en temps réel en 3D échafaudages par microscopie multiphoton. L’angiogenèse dans les échafaudages génétiquement modifiés a été étudiée dans un modèle de défaut murine substance osseuse critique. Plus de nouveaux vaisseaux ont été détectés dans le groupe de traitement que chez les témoins.

Visualisation de l’angiogenèse par microscopie Multiphoton In Vivo en échafaudage de 3D-PLGA/PNVS génétiquement modifiés pour la réparation osseuse défaut critique substance

Modèles de mammifères in vivo des défauts osseux taille critique sont indispensables pour les chercheurs qui étudient les mécanismes de guérison et de traitements orthopédiques. Ici, nous introduisons un protocole pour la création de défauts reproductibles, segmentaires, fémorales chez les rats stabilisés à l’aide de fixation externe.

Un modèle fiable et reproductible taille critique segmentaire fémorale défaut chez les Rats stabilisé avec un fixateur externe personnalisée

Ici, nous présentons un protocole chirurgical chez les lapins dans le but d'évaluer les matériaux de substitution osseuse en termes de capacités de régénération osseuse. En utilisant des cylindres PEEK fixés sur des crânes de lapin, l'ostéoconduction, l'ostéoinduction, l'ostéogenèse et la vasculogenèse induites par les matériaux peuvent être évalués soit sur des animaux vivants ou euthanasiés.

Modèle calvarial de l'augmentation osseuse dans le lapin pour l'évaluation de la croissance osseuse et la néovascularisation dans les matériaux de substitution osseuse

Ce protocole présente un modèle murin standardisé d’expansion de suture et une méthode de visualisation 3D pour étudier les changements mécanobiologiques de la suture et le remodelage osseux sous charge de force de traction.

Technique de visualisation 3D pour le remodelage osseux dans un modèle murin d’expansion de suture

Ici, nous présentons un protocole pour la création d’un défaut de cavité en boîte dans le tissu de diaphyse fémorale du rat. Ce modèle permet d’évaluer les performances des biomatériaux sous stress biomécanique et d’explorer les mécanismes de régénération osseuse liés à l’ostéogenèse intramembraneuse.

Création d’un modèle de défaut de cavité en boîte dans l’os cortical du fémora de rat

Cette étude a établi un modèle de défaut semi-segmentaire fémoral chez le rat afin d’évaluer la performance mécanique et ostéogénique des matériaux de substitution osseuse dans des conditions portantes, sans recours à fixation interne ou externe.

Modèle de défaut osseux diaphysaire semi-segmentaire chez les rats pour évaluer la performance des substituts osseux dans les régions portantes

L’étude combine de manière innovante des points de suture et des aiguilles en titane pour une fixation interne stable dans un modèle de fracture radiale chez le rat. La cicatrisation des fractures a été évaluée par micro-tomodensitométrie (micro-CT), et les neurones du ganglion primaire de la racine dorsale (DRG) ont été isolés et cultivés pour des investigations complémentaires.

Développement d’un nouveau modèle de fixation interne pour les fractures radiales chez le rat : évaluation de la cicatrisation des fractures et isolement des ganglions de la racine dorsale

Apprenez à créer des défauts osseux de suture calvaire chez le rat pour étudier les thérapies régénératives. Ce modèle standardisé permet d'évaluer la cicatrisation crânienne à court et long terme.

L’établissement de défauts composites osseux de suture calvaire chez le rat : un modèle standardisé pour l’étude de la thérapie de suture régénérative (Vidéo) | JoVE Journal

L’établissement de défauts composites osseux de suture calvaire chez le rat : un modèle standardisé pour l’étude de la thérapie de suture régénérative

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