22 mars 2024
Le protocole présenté dans cette étude illustre l’efficacité du détecteur de différence AMPc in situ dans la mesure de l’AMPc à l’aide de deux méthodes. L’une des méthodes utilise un spectrophotomètre à lecture de plaques à 96 puits avec des cellules HEK-293. L’autre méthode permet de visualiser des cellules HASM individuelles au microscope fluorescent.
Nous servons l’organisation des micro-domaines KP cycliques en mettant l’accent sur l’élucidation de la formation et du maintien de ces compartiments. Nous cherchons à découvrir les composants clés qui permettent aux cellules de discerner les signaux spatiaux au sein de ces domaines, en explorant la variation de leur interprétation et la façon dont ces caractéristiques sont modifiées dans des maladies comme l’asthme et la BPCO. L’infection des cellules primaires à l’aide du vecteur Beckman est un défi.
Pour cela, la condition doit être optimisée pour le type de cellules individuelles afin d’obtenir une expression suffisante du biocapteur. Ce protocole permet la détection et le suivi en temps réel, allant de quelques minutes à quelques heures, et la mesure de la dynamique cyclocampu au sein de cellules vivantes. Par conséquent, les signaux générés par cet essai sont directement corrélés aux niveaux cycliques de P, réduisant considérablement les interférences potentielles des autres composants cellulaires et fournissant des résultats fiables.
Cette étude présente un protocole pour mesurer les niveaux de cAMP en utilisant le détecteur de différence de cAMP in situ. Elle met en évidence deux méthodes : l'une impliquant un spectrophotomètre à lecture de plaque à 96 puits avec des cellules HEK-293 et une autre utilisant des cellules HASM individuelles sous un microscope fluorescent.
Real-time quantification of cAMP dynamics in live cells is critical for de-risking early discovery and validating signaling targets in disease-relevant systems. The cADDis biosensor enables continuous, quantitative measurement of cAMP in both immortalized and primary cells, supporting predictive confidence in pathway interrogation. This capability strengthens portfolio triage by providing robust, reproducible data on intracellular signaling events relevant to respiratory and other disease models.
The cADDis biosensor integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, screening, and translational research in live cell systems.