Name: Procédé modifié de cathétérisme intrathécal chez le rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-02-14T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 15 s
Description: Apprenez une méthode modifiée de cathétérisme intrathécal chez le rat pour l'administration répétitive de médicaments dans la recherche sur la douleur neuropathique. Cette technique simple améliore la fiabilité des expériences animales.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Kong, G., Huang, Z., Zhu, Q., Wan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+two+modified+methods+of+intrathecal+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Anim%22%5BJournal%5D)">Comparison of two modified methods of intrathecal catheterization in rats.</a> Exp Anim. 69 (2), 219-223 (2020).</li>
<li>Xu, C. S., Sun, P., Lin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((a+new+design+puncture+needle+and+a+device+of+microcatheter+protection+for+lumbar+intrathecal+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Zhongguo+Ying+Yong+Sheng+Li+Xue+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">a new design puncture needle and a device of microcatheter protection for lumbar intrathecal catheterization in rats.</a> Zhongguo Ying Yong Sheng Li Xue Za Zhi. 36 (3), 283-288 (2020).</li>
<li>Yamamoto, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurosteroid+dehydroepiandrosterone+sulphate+enhances+pain+transmission+in+rat+spinal+cord+dorsal+horn%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Neurosteroid dehydroepiandrosterone sulphate enhances pain transmission in rat spinal cord dorsal horn.</a> Br J Anaesth. 123 (2), e215-e225 (2019).</li>
<li>Mattioli, T. A., Sutak, M., Milne, B., Jhamandas, K., Cahill, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrathecal+catheterization+influences+tolerance+to+chronic+morphine+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Intrathecal catheterization influences tolerance to chronic morphine in rats.</a> Anesth Analg. 114 (3), 690-693 (2012).</li>
<li>Wang, B. C., Hillman, D. E., Li, D., Turndorf, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lumbar+subarachnoid+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Behav%22%5BJournal%5D)">Lumbar subarachnoid catheterization in rats.</a> Pharmacol Biochem Behav. 38 (3), 685-688 (1991).</li>
<li>Yaksh, T. L., Rudy, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+catheterization+of+the+spinal+subarachnoid+space%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Chronic catheterization of the spinal subarachnoid space.</a> Physiol Behav. 17 (6), 1031-1036 (1976).</li>
<li>Martin, H., Kocher, L., Chery-Croze, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+lumbar+intrathecal+catheterization+in+the+rat+with+reduced-length+spinal+compression%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Chronic lumbar intrathecal catheterization in the rat with reduced-length spinal compression.</a> Physiol Behav. 33 (1), 159-161 (1984).</li>
<li>Mazur, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+simple%2C+rapid%2C+and+robust+intrathecal+catheterization+method+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of a simple, rapid, and robust intrathecal catheterization method in the rat.</a> J Neurosci Methods. 280, 36-46 (2017).</li>
<li>Zhang, S. X., Huang, F., Gates, M., White, J., Holmberg, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+scarring+induced+by+chronic+intrathecal+tubing+augmented+cord+tissue+damage+and+worsened+functional+recovery+after+rat+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Extensive scarring induced by chronic intrathecal tubing augmented cord tissue damage and worsened functional recovery after rat spinal cord injury.</a> J Neurosci Methods. 191 (2), 201-207 (2010).</li>
<li>Ohara, P. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+intrathecal+catheterization+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Long-term intrathecal catheterization in the rat.</a> J Neurosci Methods. 110 (1-2), 81-89 (2001).</li>
<li>StØrkson, R. V., KjØrsvik, A., TjØlsen, A., Hole, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lumbar+catheterization+of+the+spinal+subarachnoid+space+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Lumbar catheterization of the spinal subarachnoid space in the rat.</a> J Neurosci Methods. 65 (2), 167-172 (1996).</li>
<li>Poon, Y. Y., Chang, A. Y., Ko, S. F., Chan, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+procedure+for+catheterization+of+the+thoracic+spinal+subarachnoid+space+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">An improved procedure for catheterization of the thoracic spinal subarachnoid space in the rat.</a> Anesth Analg. 101 (1), table of contents 155-160 (2005).</li>
<li>Xu, F., Li, T., Zhang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+protecting+and+fixing+the+lumbar+catheters+placed+in+the+spinal+subarachnoid+space+of+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">An improved method for protecting and fixing the lumbar catheters placed in the spinal subarachnoid space of rats.</a> J Neurosci Methods. 183 (2), 114-118 (2009).</li>
<li>Igawa, Y., Andersson, K. E., Post, C., Uvelius, B., Mattiasson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+for+investigation+of+spinal+mechanisms+in+detrusor+instability+associated+with+infravesical+outflow+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Urol+Res%22%5BJournal%5D)">A rat model for investigation of spinal mechanisms in detrusor instability associated with infravesical outflow obstruction.</a> Urol Res. 21 (4), 239-244 (1993).</li>
<li>Hou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+procedure+for+lumbar+intrathecal+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neurol+Res%22%5BJournal%5D)">A modified procedure for lumbar intrathecal catheterization in rats.</a> Neurol Res. 38 (8), 725-732 (2016).</li>
<li>Farhadi, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+open+and+ultrasound-guided+placement+of+central+venous+catheter+in+children+weighing+less+than+five+kilograms%3B+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Acad+Radiol%22%5BJournal%5D)">Comparison of open and ultrasound-guided placement of central venous catheter in children weighing less than five kilograms; a randomized clinical trial.</a> Acad Radiol. 30 (7), 1419-1425 (2023).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Seringue</td><td></td> 1 cc <td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Co., Ltd</td><td>1 cc</td></tr><tr><td>22 calibre & fois ; 1 » aiguilles</td><td></td><td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Co., Ltd</td><td>22G</td></tr><tr><td>23 calibre &times ; 1 » aiguilles</td><td></td><td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Co., Ltd</td><td>23G</td></tr><tr><td>25 &mu ; L Hamilton Seringues</td><td></td><td>Shanghai Bolige Co.,Ltd</td><td>0,31 mm 25 &mu ; L&nbsp ;</td></tr><tr><td>4-O MERSILK NON RÉSORBABLE SUTURE</td><td></td><td>ETHICON</td><td>SA83G</td></tr><tr><td>50 mL corning tubes à centrifuger 3 cm de diamètre</td><td>430820</td><td>CORNING</td> Cathéter épidural <td></td></tr><tr><td>et connecteur</td><td></td><td>Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd</td><td>type régulier</td>Appareil</tr><tr><td></td> à<td>gavage</td><td>Shanghai Bolige Co., Ltd</td><td>8 #</td></tr> <tr><td>PE-10 Mirco Medical Tubing</td><td>BB31695-PE/1</td><td>Scientific Commodities, Inc</td><td></td></tr><tr><td>Manche de scalpel et lames #10</td><td>Jiangsu Songxin Medical Equipment Co., Ltd</td><td>125mm</td>Ciseaux Jiangsu Songxin Medical Equipment Co., Ltd 100mm Sprague-Dawley (SD) rats Shanghai BK / KY Biotechnology Co., Ltd Mâle Fil d’acier inoxydable 0,2 mm de diamètre Dongguan Jiazhi Metal Products Technology <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td> Co., Ltd.</td><td>0,2 mm&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; Pince</td></tr><tr><td></td><td>dentée</td> 1m <td>Jiangsu Songxin Medical Equipment Co., Ltd</td><td>18cm</td></tr><tr><td>Ruban</td><td></td> de soie <td>URGO</td><td>1.25cm &times ; 9.1m</td></tr></tbody></table>

procédé modifié de cathétérisme intrathécal chez le rat

A Modified Method for Intrathecal Catheterization in Rats

Pour l’injection intrathécale, l’extrémité extracorporelle du tube PE10 a été coupée et le tube PE10 a été scellé avec un capuchon d’étanchéité entre deux injections de médicament. Dans notre étude pilote, le taux de réussite du cathétérisme intrathécal était d’environ 95 % (19 rats sur 20) ; Le succès a été indiqué par un mouvement de la queue et/ou la libération d’un liquide transparent incolore pendant la procédure. Environ 85 % des trompes sont restées en place 7 jours après la chirurgie, et environ 80 % sont restées en place 28 jours après la chirurgie. Les rats se sont rétablis peu de temps après l’opération, et aucune complication n’a été observée dans les 7 jours suivant l’opération. Les mouvements quotidiens étaient normaux et aucune anomalie comportementale n’a été observée. Ces résultats indiquent que notre méthode est supérieure à celles précédemment rapportées en termes de taux de réussite et de taux de longue résidence.
Une paralysie complète des membres inférieurs lors de l’injection de lidocaïne via des cathéters indique un cathétérisme intrathécalréussi15. Le taux de réussite du cathétérisme intrathécal est calculé en divisant le nombre total de rats par le nombre de rats ayant réussi le cathétérisme. Avec notre méthode modifiée, le taux de réussite était de 95 %, ce qui était supérieur au taux obtenu avec la méthode rapportée par Hou et al. (88 %)15. C’est ce que montre la figure 4.
Le tube intrathécal a été surveillé 2, 5 et 7 jours après le cathétérisme intrathécal et le taux de réussite du cathéter à demeure a été calculé en fonction du nombre de rats avec un cathéter à demeure réussi/nombre total de rats × 100 %. À 2, 5 et 7 jours après le cathétérisme intrathécal, le taux de réussite du cathéter à demeure était de 94 %, 81 % et 65 %, respectivement, dans l’étude de StØrkson et al.11. Le taux de réussite du cathéter à demeure 2, 5 et 7 jours après le cathétérisme intrathécal était de 95 %, 90 % et 85 %, respectivement, avec notre technique (Figure 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig1.jpg"> 
Graphique 1. Matériaux et instruments utilisés pour le cathétérisme intrathécal. (A) Un tube PE10 de 15 cm de long a été préparé, et le tube a été marqué à 2 cm d’une extrémité pour indiquer la profondeur d’insertion. (B) Un fil d’acier inoxydable de 20 cm de long avec deux extrémités polies a été inséré dans le tube PE10 comme support. (C) La pointe pointue de l’aiguille 22G a été coupée à l’aide d’une paire de ciseaux, et l’extrémité distale a été scellée à l’aide d’une pince. (D) Un cathéter péridural (1,0 mm de diamètre externe) a été coupé en fragments de 1 cm, qui ont ensuite été insérés dans l’aiguille 22G sans pointe pointue. (E) L’extrémité distale du cathéter péridural a été scellée à l’aide d’une paire de pinces droites chauffées ; Cet appareil s’appelait le capuchon d’étanchéité des tubes. (F) Une bande antiallergique de 0,3 cm × 0,5 cm (ruban de soie, 1,25 cm × 9,1 m) a été préparée à l’aide d’une paire de ciseaux. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig1large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig2.jpg"> 
Graphique 2. Préparation d’instruments pour le cathétérisme intrathécal. Les instruments (tels que des pinces dentées, des ciseaux, un appareil de gavage, un manche de scalpel et des lames #10) ont été stérilisés à l’éthanol pendant environ 2 heures, puis lavés avec une solution saline normale environ 30 minutes avant l’opération. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig2large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig3.jpg"> 
Graphique 3. Résultats de l’expérience de validation de la lidocaïne après cathétérisme intrathécal. Après l’injection intrathécale de 20 μL de lidocaïne à 2 % suivie d’une injection de 10 μL de solution saline normale, le rat a été temporairement paralysé : une paralysie des membres inférieurs s’est produite dans les 30 secondes et a disparu 30 minutes plus tard, indiquant une réussite du cathétérisme intrathécal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig3large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig4.jpg"> 
Graphique 4. Comparaison du taux de réussite du cathétérisme entre notre méthode modifiée et une méthode précédemment rapportée. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig4large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66487/66487fig5.jpg"> 
Graphique 5. Comparaison du taux de cathéter à longue demeure entre notre méthode modifiée et une méthode précédemment publiée. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66487/66487fig5large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>　</td>
			<td>Méthode modifiée</td>
			<td>Méthode préalable</td>
			<td>Avantages de la méthode modifiée</td>
			<td>Inconvénients de la méthode a priori</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="4">Méthode de guidage pour l’insertion</td>
			<td rowspan="4">un fil d’acier inoxydable</td>
			<td rowspan="4">Guide-canule (20G 0,9× 38 mm)</td>
			<td>Augmente l’élasticité du tube,</td>
			<td>La résistance est difficile à ressentir, ce qui augmente la difficulté de fonctionnement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Améliore le taux de réussite du cathétérisme intrathécal</td>
			<td>Dommages aux tissus dus à des ponctions répétées</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Réduit l’espace de travail requis</td>
			<td>Une extrémité du tube est étirée à 1,5 fois la longueur d’origine, ce qui rend le diamètre des deux extrémités différent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Minimise les dommages aux tissus autour de la colonne lombaire</td>
			<td>Sensibilité aux fuites de liquide céphalo-rachidien car le diamètre de la canule guide 20G est 2 fois ou plus celui du tube PE10 étiré</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Longueur du tube PE10</td>
			<td>15 cm</td>
			<td>14 ou 28 cm</td>
			<td>Détermination facile de la longueur du tube PE10, quelle que soit la durée du cathéter à demeure</td>
			<td>La durée d’entrée du cathéter est plus courte pour un tube PE10 plus court ; sensibilité à la chute du corps pour un long tube PE10</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Méthode de fixation</td>
			<td>Suture « 8 » et 4 fois</td>
			<td>1 ou 2 perles</td>
			<td>Évite le mouvement et la rétraction du tube pendant les activités des animaux</td>
			<td>Différence de diamètre du tube aux deux extrémités et sensibilité au déplacement du tube PE10 lors de la fabrication du cordon </td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Méthode d’étanchéité des tubes</td>
			<td rowspan="2">Casquette faite maison</td>
			<td rowspan="2">Non</td>
			<td>Empêche la fuite de liquide céphalo-rachidien </td>
			<td rowspan="2">Exigence de découpe répétée du tube PE10 </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Évite la découpe répétée du tube PE10 </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Méthode de prévention de la rétraction</td>
			<td>Bande anti-allergique</td>
			<td>1 ou 2 perles</td>
			<td>Empêche le tube de se rétracter pendant les activités des animaux </td>
			<td>Sensibilité à la rétraction</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tableau 1. Avantages et inconvénients de la méthode modifiée et d’une méthode précédemment signalée.

Procédé modifié de cathétérisme intrathécal chez le rat

Intrathecal catheterization has been widely applied in animal experiments, especially those on neuropathic pain. However, the traditional methods still ...

a-modified-method-for-intrathecal-catheterization-in-rats

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

La vidéo montre une méthode de génération d’un modèle de rat avec une démyélinisation corticale cérébrale généralisée. Il s’agit de perturber la barrière hémato-encéphalique en injectant des cytokines pro-inflammatoires dans des souris amorcées avec la protéine de gaine de myéline recombinante. Ce processus facilite l’infiltration des cellules immunitaires, entraînant une démyélinisation corticale cérébrale généralisée.

Génération de la démyélinisation corticale cérébrale généralisée dans un modèle de rat

Source : Chen, Y., et al. Administration intrathécale d’oligonucléotides antisens dans le système nerveux central du rat. J. Vis. Exp. (2019)Cette vidéo montre l’administration d’un composé d’essai dans le liquide céphalo-rachidien (LCR) par le biais d’un cathéter implanté dans la colonne vertébrale lombaire d’un modèle de rat. Le composé circule le long du LCR jusqu’au cerveau et à la moelle épinière, pénètre dans les neurones et offre un potentiel thérapeutique.

Administration intrathécale d’un composé d’essai dans le système nerveux central du rat

Nous décrivons une méthode pour cibler les médicaments pour le système nerveux central soit par l'implantation d'un cathéter ou d'effectuer une injection en bolus dans le ventricule latéral droit chez la souris. Nous nous concentrons particulièrement sur la prestation des oligonucléotides antisens. Cette technique est facilement adaptable à d'autres médicaments et à des rats.

Livraison intraventriculaire directe des médicaments pour le système nerveux central rongeurs

Les accès vasculaires permettant de mesurer l’hémodynamique, de fournir des fluides et d’effectuer des prélèvements sanguins sont importants pour toute étude de petit modèle animal. Nous présentons une technique d’implantation de cathéters dans l’artère carotide et la veine jugulaire commune chez un rat anesthésié pour se connecter à un système de surveillance, de perfusions et d’échantillonnage.

Cathétérisme de l&#39;artère carotide et Veine jugulaire faire pour effectuer des mesures hémodynamiques, Infusions et prélèvement sanguin dans un modèle de rat Conscients

Le protocole présenté ici permet la reproduction d’une démyélinisation généralisée de la matière grise des deux hémisphères corticaux chez les rats Dark Agouti mâles adultes. La méthode comprend l’implantation intracérébrale d’un cathéter, l’immunisation subclinique contre la glycoprotéine oligodendrocytaire de myéline et l’injection intracérébrale d’un mélange de cytokines pro-inflammatoires à travers le cathéter implanté.

Modèle de rat de démyélinisation corticale cérébrale généralisée induite par une injection intracérébrale de cytokines pro-inflammatoires

Ici, nous décrivons une méthode pour livrer des drogues au système nerveux central de rat en implantant un cathéter dans l'espace intrathécal lombaire de la colonne vertébrale. Nous nous concentrons sur la livraison des oligonucléotides d'antisens, bien que cette méthode soit appropriée pour la livraison d'autres modalités thérapeutiques aussi bien.

Livraison intrathécale d'Oligonucléotides antisens dans le système nerveux central de rat

L’hémorragie sous-arachnoïdienne continue de porter un lourd fardeau de mortalité et de morbidité chez l’homme. Pour faciliter la poursuite des recherches sur la maladie et sa physiopathologie, un modèle pré-chiasmatique à injection unique est présenté.

Injection unique pré-chiasmatique de sang autologue pour induire une hémorragie sous-arachnoïdienne expérimentale chez un rat

Une intervention chirurgicale est décrite pour effectuer des injections dans la citerne lombaire du rat juvénile. Cette approche a été utilisée pour l’administration intrathécale de vecteurs de thérapie génique, mais on s’attend à ce qu’elle puisse être utilisée pour une variété de traitements, y compris les cellules et les médicaments.

Administration intrathécale de vecteurs chez des rats juvéniles par injection dans une citerne lombaire

Une injection intrathécale lombaire représente une voie d’administration pertinente sur le plan translationnel pour l’administration de la thérapie génique au système nerveux central. Ce protocole standardisé complet pour les injections intrathécales lombaires chez les souris et les rats néonatals, juvéniles et adultes vise à guider les chercheurs dans l’adoption de cette technique pour les études précliniques de thérapie génique.

Injection intrathécale lombaire de vecteurs de thérapie génique pour le ciblage du système nerveux central chez la souris et le rat

Ce protocole chirurgical est un guide étape par étape pour insérer un cathéter intrathécal dans l’espace sous-dural de la colonne vertébrale d’un rongeur afin d’administrer un traitement ciblé.

Accès à l’espace sous-dural de la moelle épinière des rongeurs pour l’administration du traitement

Apprenez une méthode modifiée de cathétérisme intrathécal chez le rat pour l'administration répétitive de médicaments dans la recherche sur la douleur neuropathique. Cette technique simple améliore la fiabilité des expériences animales.

Procédé modifié de cathétérisme intrathécal chez le rat

Explorer plus de vidéos