Name: Prélèvement sanguin et mesure hormonale pour déterminer le stade du cycle ovarien chez les ouistitis (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-07-05T13:20:00.000+00:00
Duration: 6 min 17 s
Description: Découvrez un protocole de prélèvement sanguin amélioré pour mesurer les niveaux hormonaux et prédire l'ovulation chez les ouistitis. Cette méthode facilite l'accès veineux et précise le stade du cycle ovarien.

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<meta charset="utf8"></head><body>Évaluation du cycle ovarien chez les ouistitis par prélèvement sanguin et analyse hormonale

<ol><li>Kholkute, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+progesterone+levels+throughout+the+ovarian+cycle+of+the+common+marmoset+%28Callithrix+jacchus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Primates%22%5BJournal%5D)">Plasma progesterone levels throughout the ovarian cycle of the common marmoset (Callithrix jacchus).</a> Primates. 25 (1), 123-126 (1984).</li>
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<li>Takahashi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Birth+of+healthy+offspring+following+ICSI+in+in+vitro-matured+common+marmoset+%28Callithrix+jacchus%29+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Birth of healthy offspring following ICSI in in vitro-matured common marmoset (Callithrix jacchus) oocytes.</a> PLoS One. 9 (4), e95560(2014).</li>
<li>Tomioka, I., Takahashi, T., Shimada, A., Yoshioka, K., Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Birth+of+common+marmoset+%28Callithrix+jacchus%29+offspring+derived+from+in+vitro-matured+oocytes+in+chemically+defined+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Birth of common marmoset (Callithrix jacchus) offspring derived from in vitro-matured oocytes in chemically defined medium.</a> Theriogenology. 78 (7), 1487-1493 (2012).</li>
<li>Abe, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+marmoset+genome+engineering+by+autologous+embryo+transfer+and+CRISPR%2FCas9+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Efficient marmoset genome engineering by autologous embryo transfer and CRISPR/Cas9 technology.</a> Sci Rep. 11 (1), 20234(2021).</li>
<li>Summers, P. M., Shephard, A. M., Taylor, C. T., Hearn, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+cryopreservation+and+transfer+on+embryonic+development+in+the+common+marmoset+monkey%2C+Callithrix+jacchus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reprod+Fertil%22%5BJournal%5D)">The effects of cryopreservation and transfer on embryonic development in the common marmoset monkey, Callithrix jacchus.</a> J Reprod Fertil. 79 (1), 241-250 (1987).</li>
<li>Thomson, J. A., Kalishman, J., Hearn, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonsurgical+uterine+stage+preimplantation+embryo+collection+from+the+common+marmoset%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Primatol%22%5BJournal%5D)">Nonsurgical uterine stage preimplantation embryo collection from the common marmoset.</a> J Med Primatol. 23 (6), 333-336 (1994).</li>
<li>Hanazawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimally+invasive+transabdominal+collection+of+preimplantation+embryos+from+the+common+marmoset+monkey+%28Callithrix+jacchus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Minimally invasive transabdominal collection of preimplantation embryos from the common marmoset monkey (Callithrix jacchus).</a> Theriogenology. 78 (4), 811-816 (2012).</li>
<li>Ishibashi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+embryo+transfer+in+the+common+marmoset+monkey+%28Callithrix+jacchus%29+with+a+reduced+transfer+volume%3A+a+non-surgical+approach+with+cryopreserved+late-stage+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Efficient embryo transfer in the common marmoset monkey (Callithrix jacchus) with a reduced transfer volume: a non-surgical approach with cryopreserved late-stage embryos.</a> Biol Reprod. 88 (5), 115(2013).</li>
<li>Kishimoto, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+novel+common+marmoset+embryonic+stem+cell+lines+under+various+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Establishment of novel common marmoset embryonic stem cell lines under various conditions.</a> Stem Cell Res. 53, 102252(2021).</li>
<li>Diehl, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood%2C+including+routes+and+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Toxicol%22%5BJournal%5D)">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J Appl Toxicol. 21 (1), 15-23 (2001).</li>
<li>Daskalaki, M., Drummer, C., Behr, R., Heistermann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+alfaxalone+for+short-term+anesthesia+can+confound+serum+progesterone+measurements+in+the+common+marmoset%3A+a+case+report%5BTitle%5D)+AND+%22Primate+Biol%22%5BJournal%5D)">The use of alfaxalone for short-term anesthesia can confound serum progesterone measurements in the common marmoset: a case report.</a> Primate Biol. 9 (2), 23-28 (2022).</li>
<li>Hodges, J. K., Cottingham, P. G., Summers, P. M., Liang, Y. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+ovulation+in+the+marmoset+monkey+%28Callithrix+jacchus%29+with+human+chorionic+gonadotropin+following+prostaglandin-induced+luteal+regression%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil+Steril%22%5BJournal%5D)">Controlled ovulation in the marmoset monkey (Callithrix jacchus) with human chorionic gonadotropin following prostaglandin-induced luteal regression.</a> Fertil Steril. 48 (2), 299-305 (1987).</li>
<li>Barrett, J., Abbott, D. H., George, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extension+of+reproductive+suppression+by+pheromonal+cues+in+subordinate+female+marmoset+monkeys%2C+Callithrix+jacchus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reprod+Fertil%22%5BJournal%5D)">Extension of reproductive suppression by pheromonal cues in subordinate female marmoset monkeys, Callithrix jacchus.</a> J Reprod Fertil. 90 (2), 411-418 (1990).</li>
<li>Barrett, J., Abbott, D. H., George, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensory+cues+and+the+suppression+of+reproduction+in+subordinate+female+marmoset+monkeys%2C+Callithrix+jacchus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reprod+Fertil%22%5BJournal%5D)">Sensory cues and the suppression of reproduction in subordinate female marmoset monkeys, Callithrix jacchus.</a> J Reprod Fertil. 97 (1), 301-310 (1993).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>AIA-360</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0019945</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>AIA-PACK DILUANT CONCENTRÉ</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0020956</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>AIA-PACK SUBSTRATE SET II</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0020968</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>AIA-PACK WASH CONCENTRATE</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0020955</td><td>Mesure hormonale (P4/ E2)</td></tr><tr><td>CMS-1</td><td>CLEA Japon</td><td></td><td>Aliment ouistiti</td></tr><tr><td>Estrumate</td><td>MSD Santé</td><td></td> animale <td>Analogue PGF2alpha (cloprosténol)</td></tr><tr><td>Gonal-f Injection sous-cutanée 150</td><td>Merck Biopharma Co., Ltd.</td><td></td><td>FSH</td></tr><tr><td>Gonatropine pour injection intramusculaire 1000</td><td>ASKA Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td>872413</td><td></td></tr><tr><td>solution injectable d’héparine sodique hCG 5 000 unités/5 mL</td><td>Mochida Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td>224122458</td><td>Kit</td></tr> de <tr><td>test immunochromatographique pour la détection de la gonadotrophine chorionique du ouistiti commun (Dual Checker)</td><td>CLEA Japan, Inc.</td><td></td><td>Détermination du niveau de CG</td></tr><tr><td>Éclairage de microscope à double bras à profil bas LPF-SD</td><td>SHIOKAZE GIKEN</td><td></td><td>Lampe de bureau pour le prélèvement sanguin</td></tr><tr><td>Dispositif de retenue pour le prélèvement sanguin Marmoset</td><td>JIC Japan JM-1006</td><td></td><td>Prélèvement sanguin http://www.jic-japan.jp/prd/marmoset/prd016.html email : vi@jic-japan.jp</td></tr><tr><td>Metacam 0.05 %</td><td>Boehringer Ingelheim Animal Health Japan Co., Ltée.</td><td></td> Gobelet d’échantillon pour <td>le traitement des hématomes</td></tr><tr><td>, 3 mL, PS, pour Tosoh 360 et AIA-600 II, 1000/sachet</td><td>Globe Scientific</td><td>110913</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>ST AIA-PACK iE2</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0025224</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>ST AIA-PACK iE2 CALIBRATOR SET</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0025324</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>ST AIA-PACK iE2 SOLUTION DE DILUTION D’ÉCHANTILLON</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0025524</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>ST AIA-PACK PROGIII</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0025240</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>ST AIA-PACK PROGIII CALIBRATOR SET</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0025340</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>ST AIA-PACK PROGIII SAMPLE DILUING SOLUTION</td><td>Tosoh Corporation</td><td>&nbsp ; 0025540</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr><tr><td>Seringue avec aiguille de 25 G (0,50 x 25 mm)</td><td>TERUMO</td><td>SS-01T2525</td><td>Prélèvement sanguin</td></tr><tr><td>Tensolvet 5.000 I.E. gel.</td><td>Dechra Pharmaceuticals</td><td>14033492</td><td>Traitement des hématomes</td></tr><tr><td>TOSOH MULTI-CONTROL SET</td><td>Tosoh Corporation</td><td>0015965</td><td>Mesure hormonale (P4/E2)</td></tr></tbody></table>

prélèvement sanguin et mesure hormonale pour déterminer le stade du cycle ovarien chez les ouistitis

Blood Sampling and Hormone Measurement for Determining the Stage in the Ovarian Cycle in Marmosets

Le tableau 1 donne des précisions sur les animaux utilisés dans cette étude.
Analyses anatomiques de la veine fémorale Des analyses anatomiques de la veine fémorale ont été effectuées à l’aide d’un ouistiti commun mâle de 2 ans (I 7713M) euthanasié. Les veines et les artères fémorales sont situées dans le triangle fémoral. Le triangle fémoral se forme à la limite entre la paroi abdominale et les muscles de la cuisse (Figure 1B-D). À la base de la cuisse, une grosse veine traverse le centre du triangle inversé et une artère est parallèle à l’extérieur de la veine. Dans la région inférieure, les veines et les artères s’amincissent et se chevauchent, les artères étant positionnées au-dessus des veines (Figure 1D).
Pour le prélèvement sanguin, la veine doit être ciblée car une lésion artérielle peut provoquer un hématome de l’artère fémorale, ce qui peut entraîner un choc cardiovasculaire lorsque l’hémorragie est sévère13. Bien que le sang puisse être prélevé dans n’importe quelle partie de la veine du triangle et de sa région distale, la ponction veineuse du site proximal du triangle fémoral est recommandée en raison de la grande taille de la veine et de son chevauchement apparemment faible avec l’artère. De plus, la veine du site proximal est superficielle, ce qui permet de la localiser facilement à l’aide d’une aiguille. Parce qu’elle pulse, l’artère du triangle fémoral est parfois identifiée visuellement ou par palpation, et la veine s’étend juste médialement à celle-ci. Ainsi, l’observation de la pulsation artérielle permet de prédire l’emplacement de la veine.
De plus, une coloration bleue indicatrice de la veine est généralement observée sous la peau au sommet du triangle (Figure 1B,C). Cependant, les ganglions lymphatiques du triangle sont souvent situés près de la veine et présentent une couleur bleu foncé, de sorte que leur apparence est similaire. Heureusement, ils se distinguent par leur mobilité : la veine est stationnaire et les ganglions lymphatiques sont mobiles. Ainsi, la pulsation de l’artère et la couleur bleue de la veine sont deux indices majeurs utilisés pour localiser la veine, bien qu’il puisse être nécessaire de raser les cheveux pour les visualiser.
Détermination du stade du cycle ovarien Les niveaux de P4 et d’E2 ont été surveillés chez six ouistitis femelles (âgées de 1 à 3 ans) afin d’étudier la durée des phases folliculaire et lutéale. Les résultats ont montré une durée moyenne de 11,58 jours (n = 6 pour quatre ouistitis) et de 16,8 jours (n = 5 pour trois ouistitis) pour les phases folliculaire et lutéale, respectivement (tableau 2). Dans ce qui suit, la dynamique P4 et E2 d’un (I6751F, 3 ans) des six ouistitis est décrite en détail. Des prélèvements sanguins et des mesures hormonales ont été effectués chez cet animal à quelques jours d’intervalle pendant 38 jours (tableau 3).
Phase lutéale (jours 1 à 10) Le jour de début de la mesure a été fixé au jour 1. D’après le taux de P4 (21 ng/mL), l’animal était probablement en phase lutéale. Un taux élevé de P4 a été observé du 1er au 10e jour (≥21 ng/mL), suggérant la phase lutéale. Le 12e jour, il a chuté brusquement à 4 ng/mL. Cette diminution significative indiquait le passage de la phase lutéale à la phase folliculaire. Une diminution du taux d’E2 entre le jour 10 (241 ng/mL) et le jour 12 (189 ng/mL) a également soutenu cette transition.
Phase folliculaire (jours 12 à 22) Après la transition vers la phase folliculaire, le taux de P4 est resté faible (4-6 ng/mL) jusqu’au 19e jour, puis a légèrement augmenté du 19e au 24e jour (19e jour, 6 ng/mL ; 22e jour, 8 ng/mL ; 24e jour, 9 ng/mL). En revanche, le taux d’E2 a augmenté de manière significative du jour 19 (94 ng/mL) à 22 (322 ng/mL), puis a diminué du jour 22 au jour 24 (158 ng/mL). Sur la base de l’augmentation des niveaux de P4 et de la diminution des niveaux d’E2, l’ovulation a été prédite entre les jours 22 et 24, passant de la phase folliculaire à la phase lutéale.
Phase lutéale (jours 24-36) Après l’ovulation, le taux de P4 est resté élevé jusqu’au 36e jour, puis a chuté à 3 ng/mL le 38e jour. Ainsi, il est probable que la transition de la phase lutéale à la phase folliculaire se soit produite entre les jours 36 et 38. Conformément à cette transition, le taux d’E2 a diminué au cours de cette période (jour 36, 2517 ng/mL ; jour 38, 73 ng/mL).
Prédiction et détermination du moment de l’ovulation
Pour examiner la relation entre le taux de CG dans l’urine et la date d’ovulation, sept ouistitis (n° 1 à 7) ont été préparés. Du cloprosténol a été injecté pour réinitialiser le cycle ovulatoire (jour 0). Ensuite, une surveillance des taux sanguins de P4/E2 et des taux de CG urinaires a été effectuée à partir du jour 7. L’urine a été recueillie immédiatement après l’allumage. Les prélèvements sanguins ont été effectués essentiellement le matin. On a supposé que l’ovulation se produisait lorsque le niveau d’E2 avait été largement abaissé par rapport à celui de la veille, comme indiqué17. Ce jour-là, la rupture folliculaire a en effet été observée à la surface des ovaires, et la présence de zygotes/ovocytes dans les oviductes (Tableau 4).
La CG a été détectée pour la première fois au cours des jours 7 à 11 (jour 7, N = 1 ; jour 8, N = 2 ; jour 9, N = 1 ; jour 10, N = 2 ; jour 11, N = 1) (tableau 4). La forte baisse des niveaux d’E2 (indication de l’ovulation) a été observée 0 à 3 jours après le premier signal CG. La durée entre la première détection de CG et la diminution de E2 semblait être importante lorsque la première détection de CG était plus précoce (Figure 3A). Par exemple, un animal (n° 1) a montré une baisse du signal E2 3 jours après la première détection de CG le jour 7 (tableau 4). En revanche, la cooccurrence de la première détection de CG et de la chute du signal E2 a été observée chez un animal (n° 2) le jour 10. Ainsi, bien que la première détection de CG et l’ovulation aient été observées le même jour chez l’un des cinq animaux, l’ovulation s’est produite quelques jours après la première détection de CG.
Le kit de test immunochromatographique pour le ouistiti CG est conçu pour utiliser l’urine pour les tests. L’examen du taux de CG accompagne généralement la détermination des niveaux de P4/E2 à l’aide du plasma sanguin. Il sera utile que le plasma sanguin, au lieu de l’urine, puisse être utilisé pour le test CG. Pour tester cela, le plasma sanguin qui a été laissé après la mesure du niveau P4/E2 dans les expériences ci-dessus a été examiné. Le plasma sanguin et l’urine des quatre animaux ont été prélevés l’un ou l’autre des jours des expériences ci-dessus (les jours d’examen étaient indiqués par des astérisques doubles [**] dans le tableau 4). En utilisant l’urine, deux des quatre animaux ont montré des résultats positifs (scores 5 et 3), et les deux autres ont montré des résultats négatifs (score 1). Le plasma sanguin a montré essentiellement les mêmes résultats que l’urine (figure 3B). Le signal le plus fort a été obtenu en utilisant du plasma sanguin. Par conséquent, lors de l’utilisation de plasma sanguin, le jugement doit être fait avant 10 minutes, qui sont définies pour l’urine.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66691/66691fig01.jpg"> Figure 1 : Prélèvement de sang sur des ouistitis. (A) Un dispositif de contention est utilisé pour le prélèvement de sang. (B) Haut de la cuisse du ouistiti. (C) Triangle fémoral et vaisseaux sanguins. L’artère fémorale dans le triangle est souvent visible et présente des pulsations. La couleur bleue de la veine fémorale est parfois visible dans la zone proximale du triangle (indiquée comme le site de phlébotomie). Les ganglions lymphatiques présentent également une couleur bleue. Cependant, les ganglions lymphatiques sont mobiles car les ganglions lymphatiques sont attachés à la peau. (D) Vue anatomique de la cuisse de l’animal euthanasié. L’artère, la veine et le site de la phlébotomie sont indiqués. Le même animal est représenté en B-D. (E) Prélèvement sanguin à l’aide d’un dispositif de contention. La position de maintien des pattes du ouistiti et le sang prélevé sont montrés. (F) Prélèvement d’urine sur un ouistiti. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691fig01large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66691/66691fig02.jpg"> Figure 2 : Profils typiques des niveaux de P4, E2 et CG au cours du cycle ovarien chez les ouistitis. Les points temporels des injections de FSH, hCG et PGF2α sont indiqués. Les lignes pointillées indiquent le schéma hormonal attendu après l’injection de PGF2α. Abréviations : P4 = progestérone ; E2 = œstradiol ; CG = gonadotrophine chorionique ; FSH = hormone folliculo-stimulante ; hCG = gonadotrophine chorionique humaine ; PGF2α = prostaglandine F2α. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691fig02large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66691/66691fig03.jpg"> Figure 3 : Détermination du taux de CG pour prédire l’apparition de l’ovulation. (A) La relation possible entre le premier jour de détection de la CG (score &gt; 1) et la durée jusqu’à l’ovulation (chute E2). (B) Le plasma sanguin peut être utilisé pour les tests immunochromatographiques CG. Un résultat représentatif de chaque score (en haut). Le score a été déterminé 10 minutes après le chargement de l’échantillon. Le score 2 représente l’absence de groupe dans les 5 minutes mais l’apparition d’un groupe dans les 10 minutes. Le prélèvement sanguin a été effectué peu de temps après le prélèvement d’urine. Quatre ouistitis (n° 1, 2, 3, 5 dans le tableau S4) ont été examinés. Les échantillons utilisés ici sont indiqués par des astérisques doubles dans le tableau 4. Le plasma sanguin a été dilué à 50 % par un tampon de dilution utilisé pour la mesure de l’E2. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691fig03large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
Tableau 1 : Animaux utilisés dans cette étude. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691_Table%201v2.xlsx" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.</a>
Tableau 2 : Durée des phases folliculaire et lutéale. La phase a été déterminée sur la base du taux de P4 (phase folliculaire P4 ≤ 8, phase lutéale P4 &gt; 8). Lorsqu’un changement de phase a été observé entre les mesures, le point médian entre les dates de mesure a été déterminé comme étant le point de changement. La durée entre les deux points de changement a été considérée comme des phases folliculaires ou lutéales. Pour assurer la mesure de la durée d’une seule phase, les données avec un intervalle long (≥7 jours) ou deux de ≥6 jours d’intervalle dans la même phase, y compris lorsqu’elles couvrent les deux phases, n’ont pas été utilisées pour les analyses. Ce n’est que lorsque deux mesures ont été effectuées dans la même phase que les données ont été utilisées. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691_240320_Table2_rev.zip" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.</a>
Tableau 3 : Résultats des mesures de P4 et d’E2 pendant 38 jours chez un ouistiti.<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691_240320_Table3_rev.zip" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.</a>
Tableau 4 : Détermination et prédiction des jours ovulatoires. Les traces d’ovulation étaient considérées comme présentes si des sites de saignement ou de rupture étaient observés dans les ovaires. L’ovocyte/zygote indique les stades de l’ovocyte/zygote obtenus à partir des oviductes le jour de la chute de E2. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66691/66691_Table%204_revv2.xlsx" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.</a>

Prélèvement sanguin et mesure hormonale pour déterminer le stade du cycle ovarien chez les ouistitis

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