May 3rd, 2024
Ce protocole est basé sur la mort induite par le LPS et l’ATP des macrophages THP-1 différenciés par PMA. Nous utilisons la cytométrie en flux pour analyser l’annexine V et la double coloration 7-AAD pour détecter la mort cellulaire, en utilisant la cellule entière et en utilisant la microscopie électronique à balayage pour observer la morphologie de la membrane cellulaire.
Nous nous attaquons aux décès introduits par le LPS et l’ATP de macrophages THP-1 différenciés par PMA. Les décès introduits par le LPS et l’ATP ne se limitent pas à la pryoptose, mais l’apoptose et la nécroptose peuvent également survenir. Cela aidera à mieux comprendre la mort cellulaire après stimulation LPS et ATP, et à choisir des méthodes expérimentales plus appropriées.
La technologie Cryo-EM étudie de nombreuses autres structures dans les tissus, les cellules et les micro-organismes. La cryo-EM fournit des données de structure néo-natives pour divers complexes moléculaires. Par exemple, l’utilisation de techniques Cryo-Em pour effectuer une reconstruction 3D peut nous aider à mieux comprendre les caractéristiques des pièces apoptotiques et nécroptotiques.
Bien que la pryoptose soit considérée comme dominante dans la mort cellulaire introduite par le LPS et l’ATP, on ne peut pas déterminer l’appropriation de ces formes de mort ou si elles existent toutes. À l’avenir, nous devrons nous concentrer sur la validation de diverses morts cellulaires et leur mesure.
Cette étude examine les mécanismes de mort cellulaire dans les macrophages THP-1 différenciés par PMA induits par le lipopolysaccharide (LPS) et l'adénosine triphosphate (ATP). Les techniques clés comprennent la cytométrie en flux et la microscopie électronique à balayage, révélant les caractéristiques de la pyroptose, l'apoptose et la nécroptose.
Discriminating between pyroptosis, apoptosis, and necroptosis in PMA-differentiated THP-1 macrophages following LPS and ATP stimulation is critical for target validation and mechanistic de-risking in inflammation research. Quantitative flow cytometry and ultrastructural analysis enable predictive confidence in cell death pathway assignment, supporting robust early discovery decisions. This workflow informs portfolio triage by clarifying the biological consequences of inflammatory triggers in human macrophage models.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven testing of inflammatory cell death mechanisms in human macrophage models.