4 octobre 2024
Ici, nous décrivons une méthode complète pour mesurer la phosphorylation oxydative mitochondriale dans les fibres musculaires squelettiques perméabilisées fraîches à partir de muscles humains ou de souris. Cette méthode permet de quantifier en temps réel la respiration mitochondriale et d’évaluer la préférence pour le carburant et la flexibilité métabolique tout en préservant les réseaux mitochondriaux existants et l’intégrité de la membrane.
Nos recherches portent sur l’intersection du métabolisme et des réponses au stress dans les maladies métaboliques, un thème majeur du programme NORD de l’Université de Washington. Grâce aux synergies entre nos noyaux NORD, nous sommes en mesure d’aborder des questions complexes dans le métabolisme nutritionnel et les maladies grâce à une approche interdisciplinaire et collaborative. Les tests traditionnels de respiration mitochondriale ont examiné des mitochondries isolées.
L’isolement des mitochondries prend du temps et peut compromettre l’intégrité de la membrane mitochondriale externe. De plus, les mitochondries ne fonctionnent pas seules, mais font partie d’un réseau dynamique d’adaptation métabolique cellulaire. Notre protocole maintient ce réseau pour fournir une évaluation physiologiquement pertinente de la fonction mitochondriale.
Notre objectif s’est étendu à l’identification des régulateurs de l’adaptation métabolique qui sont importants pour la santé et la maladie. Les principales questions que nous nous posons sont les suivantes : ces régulateurs, comme la protéase du site 1, sont-ils aussi importants dans différents types de tissus ? Et quelle est leur signification physiologique ?
Cette étude présente un protocole complet pour mesurer la phosphorylation oxydative mitochondriale dans des fibres musculaires squelettiques perméabilisées fraîches de modèles humains ou murins. La méthode permet une quantification en temps réel de la respiration mitochondriale, de la préférence énergétique et de la flexibilité métabolique, tout en préservant les réseaux mitochondriaux et l'intégrité membranaire.
High-resolution respirometry in permeabilized skeletal muscle fibers enables precise, physiologically relevant measurement of mitochondrial oxidative phosphorylation, a critical determinant of cellular energy metabolism. This approach supports early discovery and target validation for metabolic disease portfolios by providing robust, quantitative insights into mitochondrial function and metabolic flexibility. Integrating these measurements enhances predictive confidence at key inflection points in metabolic and muscle health R&D pipelines.
This high-resolution respirometry protocol bridges early discovery, lead identification, and preclinical research by enabling robust mitochondrial function assessment in both human and mouse muscle fibers.