7 juin 2024
Dans cette étude, des hydrogels composites mimétiques nerveux ont été développés et caractérisés qui peuvent être utilisés pour étudier et capitaliser sur le comportement pro-régénératif des cellules souches dérivées du tissu adipeux pour la réparation des lésions de la moelle épinière.
Dans cette étude, une plateforme combinatoire de délivrance cellulaire est développée pour les lésions de la moelle épinière à l’aide d’hydrogels dérivés des tissus décellularisés. L’efficacité de la décellularisation et de la viabilité cellulaire dans les hydrogels composites est analysée afin de déterminer leur potentiel en tant que plateforme de culture 3D. Les résultats permettront d’approfondir l’investigation des potentiels thérapeutiques des lésions de la moelle épinière.
Récemment, dans le domaine de la réparation des lésions de la moelle épinière, la décellularisation a été largement utilisée dans le contexte des hydrogels. Ce processus élimine tous les débris cellulaires et nucléaires des tissus ou organes afin d’éviter une réponse immunitaire négative, tout en préservant les composants de la matrice extracellulaire. Maintenant que les hydrogels nerveux composites sont optimisés, la caractérisation de la plateforme sera poursuivie afin de maximiser le comportement neuro-régénératif des ASC pour la réparation de la moelle épinière.
Ce travail contribuera au développement de thérapies combinatoires pour la réparation des lésions de la moelle épinière, en renforçant notamment la thérapie par cellules souches pour une éventuelle traduction clinique. Pour commencer, décongelez la moelle épinière gelée à quatre degrés Celsius au réfrigérateur pendant 18 à 24 heures avant la décellation. À l’aide de ciseaux stériles, retirez soigneusement la dure-mère.
Coupez la moelle épinière en petits morceaux, d’environ un centimètre de long. Placez trois morceaux dans un tube de 50 millilitres. Rincez la moelle épinière avec de l’eau déionisée à quatre degrés Celsius pendant 18 à 24 heures à 60 tr/min.
Ensuite, rincez la moelle épinière avec de l’EDTA à 0,025 % de trypsine (EDTA), suivi de PBS pendant 15 minutes à deux reprises. Ensuite, rincez la moelle épinière avec les solutions suivantes pour la décellularisation. Enfin, rincez la moelle épinière avec de l’eau déionisée pendant une heure à deux reprises, suivie d’un PBS pendant une heure.
Ensuite, lyophilisez la moelle épinière à 0,01 millibar et 56 degrés Celsius pendant trois jours avant de la conserver jusqu’à utilisation. Décongelez le nerf sciatique porcin précédemment congelé à quatre degrés Celsius au réfrigérateur pendant 18 à 24 heures avant la décellularisation. Maintenant, découpez le nerf sciatique en petits morceaux, d’environ un centimètre de long.
Placez trois morceaux dans un tube de 50 millilitres. Rincez le nerf sciatique avec de l’eau déionisée pendant sept heures. Ensuite, rincez le nerf sciatique avec les solutions suivantes pour la décellularisation.
Ensuite, lyophilisez-le à 0,01 millibar et à 56 degrés Celsius pendant trois jours avant de le conserver jusqu’à utilisation. Commencez par utiliser des ciseaux autoclave pour réduire en poudre la moelle épinière porcine et le nerf sciatique précédemment décellés. Digérez les tissus séparément dans 0,01 solution normale d’acide chlorhydrique contenant un milligramme par millilitre de pepsine à une concentration de 15 milligrammes par millilitre.
Placez une barre magnétique dans la solution et remuez à 500 tours par minute pendant au moins quatre jours à quatre degrés Celsius pour générer des solutions de Pregel. Mélangez le prégel du nerf sciatique et de la moelle épinière. Ensuite, diluez l’hydrogel à la concentration souhaitée à l’aide de milieux M199 et de PBS.
Utilisez un hydroxyde de sodium normal et un acide chlorhydrique pour ajuster le pH à 7,4. Une fois le pH ajusté, il faut resuspendre les cellules souches humaines dérivées de l’adipe dans le pregel à une densité de 1 million de cellules par millilitre. Diluez le pregel à 12 milligrammes par millilitre avec PBS.
Placez-le dans les puits, puis posez le couvercle PDMS sur le prégel. Couver la plaque pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius. Ensuite, ajoutez PBS aux puits.
Retirez le couvercle PDMS et la solution. Ajoutez un milieu de croissance ASC aux hydrogels chargés d’ASC et incubez à 37 degrés Celsius pour la culture.
Cette étude développe une plateforme de livraison cellulaire combinatoire utilisant des hydrogels dérivés de tissus décellularisés pour la réparation des lésions de la moelle épinière. Les hydrogels sont caractérisés afin d'évaluer leur efficacité et leur potentiel en tant que plateforme de culture tridimensionnelle pour les cellules souches dérivées du tissu adipeux.
Les plates-formes de hydrogels combinatoires intégrant des matrices nerveuses décellularisées et la délivrance de cellules souches répondent aux défis multifactoriels de la réparation des lésions de la moelle épinière. Cette approche permet la création de systèmes tridimensionnels pertinents pour la maladie afin d'évaluer des stratégies de neuro-régénération, renforçant ainsi la confiance prédictive lors du développement précoce de thérapies. La modularité de la plate-forme la rend adaptée à une application généralisée dans la recherche et le développement en médecine régénérative.
Cette plateforme basée sur un hydrogel s'intègre à la continuité découverte-préclinique, permettant des tests itératifs d'hypothèses et une réduction des risques mécanistiques pour les thérapies neuro-régénératives.