Étude du mouvement orthodontique des dents chez la souris

Le premier objectif de cette recherche est d’analyser le remodelage osseux maxillaire puis la résorption en réponse à des stimuli pharmacologiques ou à l’utilisation de transgéniques. Cette étude vise à ouvrir la voie à de futures stratégies thérapeutiques pour moduler la perte osseuse associée au remodelage osseux. Parmi les progrès récents, citons l’analyse de la conception moléculaire pour prévenir ou traiter la perte de mortalité de la masse osseuse. Cette innovation a permis d’améliorer les traitements dentaires, impliquant des structures telles que l’orthodontie et les implants dentaires.

Les technologies actuellement employées pour faire progresser la recherche dans notre domaine comprennent l’utilisation d’animaux génétiquement modifiés, l’analyse par macrotomographie informatisée, les progrès de la technologie des ressorts et le développement de matériaux pour les descripteurs dentaires. Cette procédure est effectuée sous anesthésie avec la position des souris dans une table chirurgicale et assistée par la microscopie pour plus de précision. La carence en œstrogènes observée dans l’ostéoporose a été associée à une augmentation du remodelage osseux maxillaire.

Des recherches futures pourraient étudier le potentiel de molécules telles que la phosphate kinase et la dioxygénase 1, en tant que thérapies ciblant les enzymes ostéoclastiques. Il s’agit d’une stratégie visant à améliorer la protection de l’ostéo dans des conditions de stress mécanique. Pour commencer, utilisez une pince à coupe distale pour couper le ressort hélicoïdal ouvert en nickel-titane de 0,25 x 0,76 pouce en six boucles, avec deux extrémités en forme de boucle positionnées perpendiculairement au ressort, à l’aide d’une pince orthodontique Weingart.

Façonnez le fil rond de nickel chromé de 0,20 millimètre de diamètre dans la configuration souhaitée avec des extrémités en forme de boucle à l’aide d’une pince à épiler Matthew et d’un instrument de forme ronde comme référence de taille. Assemblez les extrémités en forme de boucle de la bobine et le fil rond de nickel chromé de 0,20 millimètre. Après avoir anesthésié la souris, évaluez la profondeur de l’anesthésie à l’aide du réflexe de la pédale.

Positionnez la souris en position de décubitus dorsal sur une table chirurgicale, en immobilisant ses membres pour restreindre les mouvements et permettre l’accès intra-oral. Utilisez un ouvre-bouche, fabriqué à partir d’un fil de 0,50 millimètre de diamètre et fixé avec un fil de 0,08 millimètre pour faciliter une visualisation complète tout en empêchant le mouvement de la tête. Au stéréomicroscope, observez les structures intra-orales.

Nettoyez et mordancez les premières molaires et incisives droites à l’aide d’acétone et d’un apprêt automordançant, respectivement. À l’aide d’un micro-pinceau, prélevez une petite quantité d’apprêt automordançant. Et appliquez-le sur la surface occlusale de la première molaire supérieure.

Photopolymérisez l’apprêt à la surface occlusale des molaires et des incisives pendant 30 secondes. À l’aide d’une résine photopolymérisable, collez l’extrémité distale d’un ressort hélicoïdal ouvert en nickel-titane à six boucles sur la surface occlusale de la première molaire maxillaire droite. Et photopolymérise pendant 30 secondes.

Activez l’antenne à l’aide d’un appareil spécialement conçu avec un rail et un mécanisme à manivelle fixés à la table chirurgicale. Connectez l’extrémité en forme de boucle libre du fil rond de 0,20 millimètre au crochet de la jauge de tension. Lors de l’activation de la manivelle, déplacez la table chirurgicale le long du rail jusqu’à ce que le dynamomètre enregistre une force de 0,35 newton.

Collez le fil rond de 0,20 millimètre aux deux incisives supérieures, pour ancrer la bobine. Coupez le fil pour détacher la souris du dynamomètre. Ajoutez un autre incrément de résine pour que le bord métallique de l’appareil ne soit pas exposé et ne blesse pas la souris.

Et photopolymérise pendant 30 secondes. Démontez la souris de la table. Après la chirurgie, traitez la souris avec une solution saline pour éviter la déshydratation pendant la période d’adaptation avec l’appareil.

Pour commencer, prélevez l’os maxillaire de la souris euthanasiée avec des ciseaux tranchants en coupant tous les tissus mous. L’os zygomatique dans le plan sagittal et la suture nasale fronton et la synchondrose sphéno-occipitale dans le plan coronal. Fixez l’os maxillaire avec du formol tamponné neutre à 10 % pendant 48 heures.

Pour effectuer une micro-tomodensitométrie de l’os maxillaire, utilisez une taille de voxel isotrope de 9 à 18 micromètres, des réglages de rayons X de 50 kilovolts, un filtre en aluminium de 0,5 millimètre et un angle de rotation de 0,5 degré pour des balayages haute résolution. Reconstruire les images acquises à l’aide du programme de reconstruction par microtomographie indiqué par le fabricant de la microtomodensitométrie utilisée. Pour quantifier le mouvement des dents orthodontiques, mesurez la différence de distance linéaire entre la jonction de l’émail de ciment de la première et de la deuxième molaire de l’hémisphère maxillaire droit par rapport à l’hémisphère maxillaire gauche.

Pour vérifier la présence d’une résorption radiculaire inflammatoire induite par l’orthodontie, à l’aide de la méthode de contournage manuel, sélectionnez la région d’intérêt de la racine distovestibulaire de la première molaire maxillaire. Mesurez la densité minérale racinaire et le pourcentage de volume racinaire par volume total. L’étude d’un modèle murin de mouvement dentaire orthodontique avec une force de 0,35 newton appliquée, a démontré que la distance moyenne de jonction de l’émail de ciment du côté du contrôle entre la première et la deuxième molaire était de 243,69 micromètres.

Du côté du mouvement orthodontique des dents, la distance moyenne de jonction de l’émail de ciment était de 284,66 micromètres.