Name: Méthode à haut débit pour l’observation des phénotypes de motilité chez Pseudomonas aeruginosa (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-06-20T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 23 s
Description: Découvrez une méthode à haut débit pour analyser la motilité chez Pseudomonas aeruginosa. Ce protocole permet d'identifier les facteurs génétiques influençant le déplacement bactérien et la formation de biofilms.

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<ol><li>Burrows, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudomonas+aeruginosa+twitching+motility%3A+type+IV+pili+in+action%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Pseudomonas aeruginosa twitching motility: type IV pili in action.</a> Annu Rev Microbiol. 66, 493-520 (2012).</li>
<li>Khan, F., Pham, D. T. N., Oloketuyi, S. F., Kim, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+and+controlling+the+motility+properties+of+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Microbiol+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Regulation and controlling the motility properties of Pseudomonas aeruginosa.</a> Appl Microbiol Biotechnol. 104 (1), 33-49 (2020).</li>
<li>Gellatly, S. L., Hancock, R. E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudomonas+aeruginosa+new+insights+into+pathogenesis+and+host+defenses%5BTitle%5D)+AND+%22Pathog+Dis%22%5BJournal%5D)">Pseudomonas aeruginosa new insights into pathogenesis and host defenses.</a> Pathog Dis. 67 (3), 159-173 (2013).</li>
<li>Ribbe, J., Baker, A. E., Euler, S., O'Toole, G. A., Maier, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+cyclic+Di-GMP+and+exopolysaccharide+in+type+IV+pilus+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Role of cyclic Di-GMP and exopolysaccharide in type IV pilus dynamics.</a> J Bacteriol. 199, e00859-e00916 (2017).</li>
<li>Arora, S. K., Neely, A. N., Blair, B., Lory, S., Ramphal, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+motility+and+flagellin+glycosylation+in+the+pathogenesis+of+Pseudomonas+aeruginosa+burn+wound+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Role of motility and flagellin glycosylation in the pathogenesis of Pseudomonas aeruginosa burn wound infections.</a> Infect Immun. 73 (7), 4395-4398 (2005).</li>
<li>Kearns, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+field+guide+to+bacterial+swarming+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">A field guide to bacterial swarming motility.</a> Nat Rev Microbiol. 8 (9), 634-644 (2010).</li>
<li>Limoli, D. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interspecies+interactions+induce+exploratory+motility+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Interspecies interactions induce exploratory motility in Pseudomonas aeruginosa.</a> eLife. 8, e47365(2019).</li>
<li>Breidenstein, E. B. M., Fuente-Núñez, C., de la Hancock, R. E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudomonas+aeruginosa%3A+all+roads+lead+to+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Pseudomonas aeruginosa: all roads lead to resistance.</a> Trends Microbiol. 19 (8), 419-426 (2011).</li>
<li>Toutain, C. M., Zegans, M. E., O'Toole, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+two+flagellar+stators+and+their+role+in+the+motility+of+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Evidence for two flagellar stators and their role in the motility of Pseudomonas aeruginosa.</a> J Bacteriol. 187 (2), 771-777 (2005).</li>
<li>Köhler, T., Curty, L. K., Barja, F., van Delden, C., Pechère, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Swarming+of+Pseudomonas+aeruginosa+is+dependent+on+cell-to-cell+signaling+and+requires+flagella+and+requires+flagella+and+pili%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Swarming of Pseudomonas aeruginosa is dependent on cell-to-cell signaling and requires flagella and requires flagella and pili.</a> J Bacteriol. 182 (21), 5990-5996 (2000).</li>
<li>Tremblay, J., Richardson, A. P., Lépine, F., Déziel, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-produced+extracellular+stimuli+modulate+the+Pseudomonas+aeruginosa+swarming+motility+behaviour%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Self-produced extracellular stimuli modulate the Pseudomonas aeruginosa swarming motility behaviour.</a> Environ Microbiol. 9 (10), 2622-2630 (2007).</li>
<li>Kühn, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotaxis+directs+Pseudomonas+aeruginosa+twitching+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Mechanotaxis directs Pseudomonas aeruginosa twitching motility.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 118 (30), e2101759118(2021).</li>
<li>Talà, L., Fineberg, A., Kukura, P., Persat, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudomonas+aeruginosa+orchestrates+twitching+motility+by+sequential+control+of+type+IV+pili+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Pseudomonas aeruginosa orchestrates twitching motility by sequential control of type IV pili movements.</a> Nat Microbiol. 4 (5), 774-780 (2019).</li>
<li>Tittsler, R. P., Sandholzer, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+semi-solid+agar+for+the+detection+of+bacterial+motility%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">The use of semi-solid agar for the detection of bacterial motility.</a> J Bacteriol. 31 (6), 575-580 (1936).</li>
<li>Turnbull, L., Whitchurch, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motility+assay%3A+Twitching+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Motility assay: Twitching motility.</a> Methods Mol Biol. 1149, 73-86 (2014).</li>
<li>Ha, D. -G., Kuchma, S. L., O'Toole, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plate-based+assay+for+swarming+motility+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Plate-based assay for swarming motility in Pseudomonas aeruginosa.</a> Methods Mol Biol. 1149, 67-72 (2014).</li>
<li>Semmler, A. B. T., Whitchurch, C. B., Mattick, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+re-examination+of+twitching+motility+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology%22%5BJournal%5D)">A re-examination of twitching motility in Pseudomonas aeruginosa.</a> Microbiology. 145 (Pt 10), 2863-2873 (1999).</li>
<li>Henrichsen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twitching+Motility%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Twitching Motility.</a> Annu Rev Microbiol. 37, 81-93 (1983).</li>
<li>Nolan, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+global+genomic+approach+uncovers+novel+components+for+twitching+motility-mediated+biofilm+expansion+in+Pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22Microb+Genom%22%5BJournal%5D)">A global genomic approach uncovers novel components for twitching motility-mediated biofilm expansion in Pseudomonas aeruginosa.</a> Microb Genom. 4 (11), e000229(2018).</li>
<li>Overhage, J., Lewenza, S., Marr, A. K., Hancock, R. E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+genes+involved+in+swarming+motility+using+a+Pseudomonas+aeruginosa+PAO1+mini-Tn5-lux+mutant+library%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Identification of genes involved in swarming motility using a Pseudomonas aeruginosa PAO1 mini-Tn5-lux mutant library.</a> J Bacteriol. 189 (5), 2164-2169 (2007).</li>
<li>De Bleeckere, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+throughput+determination+of+the+biofilm+prevention+concentration+for+Pseudomonas+aeruginosa+biofilms+using+a+synthetic+cystic+fibrosis+sputum+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Biofilm%22%5BJournal%5D)">High throughput determination of the biofilm prevention concentration for Pseudomonas aeruginosa biofilms using a synthetic cystic fibrosis sputum medium.</a> Biofilm. 5, 100106(2023).</li>
<li>Brochado, A. R., Typas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+approaches+to+understanding+gene+function+and+mapping+network+architecture+in+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">High-throughput approaches to understanding gene function and mapping network architecture in bacteria.</a> Curr Opin Microbiol. 16 (2), 199-206 (2013).</li>
<li>Hertzberg, R. P., Pope, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+screening%3A+new+technology+for+the+21st+century%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">High-throughput screening: new technology for the 21st century.</a> Curr Opin Chem Biol. 4 (4), 445-451 (2000).</li>
<li>Baba, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+Escherichia+coli+K-12+in-frame%2C+single-gene+knockout+mutants%3A+the+Keio+collection%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection.</a> Mol Syst Biol. 2, 2006.0008(2006).</li>
<li>Tong, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+dispensability+in+Escherichia+coli+grown+in+thirty+different+carbon+environments%5BTitle%5D)+AND+%22mBio%22%5BJournal%5D)">Gene dispensability in Escherichia coli grown in thirty different carbon environments.</a> mBio. 11 (6), e02259-e02320 (2020).</li>
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<li>Porwollik, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defined+single-gene+and+multi-gene+deletion+mutant+collections+in+Salmonella+enterica+sv+Typhimurium%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Defined single-gene and multi-gene deletion mutant collections in Salmonella enterica sv Typhimurium.</a> PLoS One. 9 (7), e99820(2014).</li>
<li>Koo, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+and+analysis+of+two+genome-scale+deletion+libraries+for+Bacillus+subtilis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Syst%22%5BJournal%5D)">Construction and analysis of two genome-scale deletion libraries for Bacillus subtilis.</a> Cell Syst. 4 (3), 291-305.e7 (2017).</li>
<li>Liberati, N. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+ordered%2C+nonredundant+library+of+Pseudomonas+aeruginosa+strain+PA14+transposon+insertion+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">An ordered, nonredundant library of Pseudomonas aeruginosa strain PA14 transposon insertion mutants.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (8), 2833-2838 (2006).</li>
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<li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Image+to+ImageJ%3A+25+years+of+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).</li>
<li>Haley, C. L., Kruczek, C., Qaisar, U., Colmer-Hamood, J. A., Hamood, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mucin+inhibits+Pseudomonas+aeruginosa+biofilm+formation+by+significantly+enhancing+twitching+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Can+J+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Mucin inhibits Pseudomonas aeruginosa biofilm formation by significantly enhancing twitching motility.</a> Can J Microbiol. 60 (3), 155-166 (2014).</li>
<li>Déziel, E., Comeau, Y., Villemur, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initiation+of+biofilm+formation+by+Pseudomonas+aeruginosa+57RP+correlates+with+emergence+of+hyperpiliated+and+highly+adherent+phenotypic+variants+deficient+in+swimming%2C+swarming%2C+and+twitching+motilities%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Initiation of biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa 57RP correlates with emergence of hyperpiliated and highly adherent phenotypic variants deficient in swimming, swarming, and twitching motilities.</a> J Bacteriol. 183 (4), 1195-1204 (2001).</li>
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<li>Lewis, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonmotile+subpopulations+of+Pseudomonas+aeruginosa+repress+flagellar+motility+in+motile+cells+through+a+type+IV+pilus-+and+pel-dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Nonmotile subpopulations of Pseudomonas aeruginosa repress flagellar motility in motile cells through a type IV pilus- and pel-dependent mechanism.</a> J Bacteriol. 204 (5), e00528-e00621 (2022).</li>
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<li>Rasmussen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+screening+assay+for+inhibitors+of+bacterial+motility+identifies+a+novel+inhibitor+of+the+Na%2B-driven+flagellar+motor+and+virulence+gene+expression+in+Vibrio+cholerae%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">A high-throughput screening assay for inhibitors of bacterial motility identifies a novel inhibitor of the Na+-driven flagellar motor and virulence gene expression in Vibrio cholerae.</a> Antimicrob Agents Chemother. 55 (9), 4134-4143 (2011).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>96 plaques de puits &nbsp ; &nbsp ;</td><td>Corning&nbsp ; &nbsp ;</td><td>3701&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Agar & nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ; &nbsp ;</td><td>BP1423-2&nbsp ;</td><td>Concentration finale de 0,5 % pour la motilité en essaim ou 1 % pour la motilité des spasmes respectivement.</td></tr><tr><td>Acides de Casamine & nbsp ; &nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ; &nbsp ;</td><td>223050&nbsp ;</td><td>Préparez un stock d’eau à 20 %. Le filtre stérilise avec un 0,22 & mu ; m filtre et stocke à 4 °C. Concentration finale de 0,5 % dans un milieu minimum M9. &nbsp ;</td></tr><tr><td>Violet cristal &nbsp ;</td><td>Bio Basic&nbsp ; &nbsp ;</td><td>CB0331</td><td>Préparez une solution à 1 % dans de l’eau.</td></tr><tr><td>D-Glucose &nbsp ; &nbsp ;</td><td>Bio Basic&nbsp ; &nbsp ;</td><td>GB0219&nbsp ;</td><td>Préparez un stock de 20 % (1,1 M) dans de l’eau et stérilisez par autoclavage. Concentration finale de 0,2 % dans le moyen minimum M9. &nbsp ;</td></tr><tr><td>Filtropur S 0.2&nbsp ;</td><td>Sarstedt&nbsp ;</td><td>83.1826.001</td><td></td></tr><tr><td>Sulfate de gentamycine & nbsp ; &nbsp ;</td><td>Bio Basic&nbsp ; &nbsp ;</td><td>GB0217&nbsp ;</td><td>Préparez un bouillon de 30 mg/ml dans de l’eau. Le filtre stérilise avec un 0,22 & mu ; M filtre et stockage à 4 degrés ; C et ndash ; concentration finale dans les plaques 15 & micro ; g/mL.. &nbsp ; &nbsp ;</td></tr><tr><td>Inoculation de la boucle et de l’aiguille &nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>22363597</td><td></td></tr><tr><td>M9 Sels Minimaux, 5X & nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>248510</td><td>Préparez un stock de 1M dans de l’eau et stérilisez par autoclave. Concentration finale de 1 mM dans un milieu minimum M9. & nbsp ; &nbsp ;</td></tr><tr><td>Sulfate de magnésium (MgSO4) & nbsp ; &nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>M63-500</td><td>&nbsp ; Préparez un bouillon de MgSO4 de 1 m dans de l’eau. Le filtre stérilise avec un 0,22 & mu ; Filtre M et conserve à température ambiante. Concentration finale &nbsp ;</td></tr><tr><td>Bibliothèque de mutants d’insertion de transposons PA14 & nbsp ; &nbsp ;</td><td></td><td>Liberati et al., 2006 (voir référence 29)</td><td>59 plaques à 96 puits pour l’ensemble de la collection. Chaque puits contient un seul mutant dans LB avec 25 % de glycérol.</td></tr><tr><td>Boîte de Petri 92x16mm &nbsp ;</td><td>Sarstedt&nbsp ;</td><td>82.1473.001</td><td></td></tr><tr><td>PhenoBooth+&nbsp ;</td><td>Instruments chanteurs & nbsp ;</td><td>https://www.singerinstruments.com/solution/phenobooth/specification/&nbsp ;</td><td>Dissoudre 11,3 g de la poudre dans 200 mL d’eau purifiée. Autoclave à 121 & degrés C pendant 15 min. & nbsp ;</td></tr><tr><td>Seringue en plastique 10 mL&nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>14955459</td><td></td></tr><tr><td>Rotor+&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ;</td><td>Instruments chanteurs & nbsp ;</td><td>https://www.singerinstruments.com/resource/rotor-had/&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Densités de RePads à broches courtes 384 &nbsp ;</td><td>Instruments chanteurs & nbsp ; &nbsp ;</td><td>REP-004&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>RePads à broches courtes densités 96 &nbsp ; &nbsp ;</td><td>Instruments chanteurs & nbsp ; &nbsp ;</td><td>REP-002&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de sodium (NaCl)&nbsp ; &nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>BP358-212&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Réplicateur à ressort à 96 broches</td><td>EnzyScreen&nbsp ; &nbsp ;</td><td>CR1000&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Lame chirurgicale en acier inoxydable n° 25&nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>08-918-5F</td><td></td></tr><tr><td>Tryptone&nbsp ;</td><td>Oxoïde & nbsp ; &nbsp ;</td><td>LP0042B&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Plaques Uniwell</td><td>Instruments chanteurs & nbsp ; &nbsp ;</td><td>PlusPlates : PLU-003&nbsp ; &nbsp ;</td><td>Dimension de la plaque : 54 et plus de fois ; 34 et fois ; 38 cm - sans murs intérieurs, ce qui offre des dimensions intérieures plus grandes.</td></tr><tr><td>Plaques Uniwell</td><td>VWR</td><td>Plaques de culture tissulaire à puits unique : 75780-348</td><td>Même dimensions que les PlusPlates.</td></tr><tr><td>Extrait de levure & nbsp ;</td><td>Fisher Scientific & nbsp ;</td><td>248510&nbsp ;</td><td></td></tr></tbody></table>

méthode à haut débit pour l’observation des phénotypes de motilité chez pseudomonas aeruginosa

High-throughput Method for Observing Motility Phenotypes in Pseudomonas aeruginosa

Méthode à haut débit pour l’observation des phénotypes de motilité chez Pseudomonas aeruginosa

Motility behaviors often play a significant role in the ability of a bacterium to exploit the resources available in its environment. This is particularly ...

high-throughput-method-for-observing-motility-phenotypes-pseudomonas

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Ce protocole décrit le développement d'un dispositif microfluidique pour étudier la chimiotaxie bactérienne dans des gradients de concentration stable de chemoeffectors.

Un dispositif microfluidique pour quantifier chimiotactisme des bactéries dans des gradients de concentration stable

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Essai d’essaimage pour la visualisation de la motilité de surface bactérienne

Source : Chu, W., et Zhuang, X. Visualisation de la motilité bactérienne sur la base d’une réaction de couleur. J. Vis. Exp. (2022)Cette vidéo fait la démonstration d’un essai de gélose semi-solide à base de colorant redox pour évaluer la motilité bactérienne en distinguant visuellement les souches mobiles et non mobiles.

Visualisation de la motilité bactérienne à l’aide d’un milieu semi-solide enrichi en colorant redox

Source : Scheidweiler, D., et al. Combiner des dispositifs fluidiques avec la microscopie et la cytométrie en flux pour étudier le transport microbien dans des milieux poreux à l’échelle spatiale. J. Vis. Exp. (2020).Cette vidéo démontre l’utilisation d’un dispositif microfluidique pour quantifier la motilité bactérienne via une matrice poreuse composée de piliers disposés aléatoirement. Des bactéries marquées par fluorescence sont introduites dans l’appareil, imagées au microscope au fur et à...

Évaluation de la motilité bactérienne à l’aide d’un dispositif microfluidique

La motilité de l’essaimage est influencée par des facteurs physiques et environnementaux. Nous décrivons un protocole en deux phases et des lignes directrices pour contourner les défis généralement associés à la préparation des essais en essaim et à la collecte de données. Une technique d’imagerie macroscopique est utilisée pour obtenir des informations détaillées sur le comportement de l’essaim qui ne sont pas fournies par les techniques d’analyse actuelles.

Préparation, imagerie, et la quantification de la surface bactérienne motilité dosages

Dans cette étude, une chambre d'écoulement nano-microfluidique a été utilisé pour visualiser et caractériser fonctionnellement la motilité des secousses de Xylella fastidiosa, une bactérie qui cause la maladie de Pierce de la vigne.

Visualisation des Twitching motilité et caractérisation du rôle de la<em&gt; Pilg</em&gt; in<em&gt; Xylella fastidiosa</em

Cet article décrit le dosage à haut débit qui a été établi avec succès à l' écran de grandes bibliothèques de petites molécules pour leur capacité potentielle à manipuler les niveaux cellulaires de cyclique di-GMP chez Pseudomonas aeruginosa, fournissant un nouvel outil puissant pour la découverte de médicaments antibactériens et les tests de composé.

Mise en place d&#39;un programme d&#39;installation à haut débit pour le criblage de petites molécules qui modulent c-di-GMP Signalisation dans<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em

De nombreuses bactéries utilisent la motilité entraînée par les flagelles pour naviguer dans leur environnement et coloniser un environnement favorable à la fois individuellement et collectivement. Démontré ici est l’utilisation de trois méthodes établies qui exploitent la motilité comme un outil de sélection pour identifier les composants / voies contribuant à la natation et la motilité de l’essaimage.

Étudier la motilité induite par flagelle chez Escherichia coli en appliquant trois techniques établies dans une série

Ici, nous décrivons la construction de mutants nuls d’Aeromonas dans des glycosyltransférases spécifiques ou des régions contenant des glycosyltransférases, les tests de motilité et la purification des flagelles effectués pour établir l’implication et la fonction de leurs enzymes codées dans la biosynthèse d’un glycane, ainsi que le rôle de ce glycane dans la pathogenèse bactérienne.

Génération de mutants nuls pour élucider le rôle des glycosyltransférases bactériennes dans la motilité bactérienne

Ici, nous présentons un protocole pour détecter la motilité bactérienne basée sur une réaction de couleur. Les principaux avantages de cette méthode sont qu’elle est facile à évaluer et plus précise, et ne nécessite pas d’équipement spécialisé.

Visualisation de la motilité bactérienne basée sur une réaction de couleur

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Imagerie par microscopie à épifluorescence time-lapse de Pseudomonas aeruginosa et Staphylococcus aureus Phénotypes hétérogènes

Découvrez une méthode à haut débit pour analyser la motilité chez Pseudomonas aeruginosa. Ce protocole permet d'identifier les facteurs génétiques influençant le déplacement bactérien et la formation de biofilms.

Méthode à haut débit pour l’observation des phénotypes de motilité chez Pseudomonas aeruginosa

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