Name: Effets des méthodes mécaniques utilisées dans le traitement de la péri-implantite sur la décontamination et la rugosité de la surface de l’implant (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-03-14T14:40:00.000+00:00
Duration: 6 min 36 s
Description: Découvrez une technique de coloration à l'encre pour analyser la décontamination et la rugosité des surfaces d'implants dentaires in vitro. Ce modèle expérimental améliore la prise de décision clinique.

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Le protocole de l’étude a été approuvé par le comité d’éthique (TBAEK-363) de l’Université Akdeniz, à Antalya, en Turquie. Cette étude a été soutenue par le Fonds de recherche de l’Université Akdeniz (numéro de projet : TDH-2024-6676). L’étude a utilisé un implant dentaire en forme de vis (PrimeTaper EV Implant) de dimensions 4,2 mm x 11 mm, avec une conception à micro-filetage mesurant 1,7 mm sur le collier. Préparation de surface par sablage et gravure à l’acide fluorhydrique dilué pour obtenir une surface OsseoSpeed bien définie.
1. Préparation de modèles expérimentaux de péri-implantite
REMARQUE : Trois méthodes de traitement mécanique de décontamination (abrasif à l’air (AA), polyétheréthercétone (PEEK) ultrasonique et curettes en titane ; Table des matériaux) dans deux types différents de défauts de péri-implantite,11 (classe 1A et classe 1B) ont été analysés. Il y avait donc six groupes expérimentaux (figure 1). Au total, 62 implants ont été utilisés, dont un implant de contrôle positif et un implant de contrôle négatif. Ce modèle d’étude in vitro, initialement développé par Sharhmann et al.16, a été modifié par divers chercheurs 12,13,14,15,16,17,18 dans la littérature (Figure 2). En supposant une différence de 10 % dans l’efficacité de l’élimination du biofilm entre les groupes, la taille de l’échantillon a été déterminée à 60 (10 pour chaque groupe) pour six groupes avec une puissance G*, une taille d’effet de 0,50, une erreur de type I de 5 % et une puissance de 80 %.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67778/67778fig01.jpg"> 
Figure 1 : Organigramme des groupes expérimentaux. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67778/67778fig01large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<ol>
	<li>Retirez une première molaire du modèle de fantôme mandibulaire éducatif. Les dents en plastique sont fixées à ce modèle fantôme à l’aide de vis. Dévissez la première molaire et retirez le filetage de la douille. Remplissez la douille en moulant le matériau en silicone souple pour couvrir la cavité afin de créer une crête alvéolaire plate. REMARQUE : Une simulation d’un implant placé dans une zone d’édentement a été créée.</li>
	<li>Numérisez le modèle préparé dans un scanner de laboratoire pour créer un design numérique.</li>
	<li>Créez numériquement des défauts osseux péri-implantitaires 3D de classe 1A etde classe 1B 11 . Ouvrez le logiciel Exocad. Téléchargez le fichier de modèle analysé. Cliquez ensuite sur Conception et sélectionnez Mode expert. Supprimez les zones irrégulières à l’aide de l’option Modifier le maillage. Cliquez ensuite avec le bouton droit de la souris et sélectionnez Enregistrer l’analyse en tant que fichier dans le dossier associé de l’ordinateur.</li>
	<li>Sélectionnez Outils &gt;option Ajouter/Supprimer un maillage , sélectionnez Numérisation à la cire&gt; Télécharger un fichier, puis sélectionnez le fichier qui vient d’être enregistré dans le dossier. Après cela, cliquez sur Mode Assistant sur la droite.</li>
	<li>Dans le nouveau modèle STL qui en résulte, créez une simulation de défaut dans l’alvéole dentaire. Pour ce faire, cliquez sur Ajouter/Supprimer sur le côté gauche. Sélectionnez la taille du pinceau de forme ovale. Ensuite, créez le défaut sur le modèle en utilisant la touche Maj et le clic gauche en même temps. Ajustez la longueur du défaut à 5 mm et la largeur à 4,2 mm (correspondant au diamètre de l’implant) sur la surface buccale de l’implant pour les défauts de classe 1A et 5-5-5 mm pour les défauts de classe 1B.</li>
	<li>Pour réduire la largeur horizontale du défaut, sélectionnez les cuspides en cliquant sur Anatomie sur le côté gauche et en rétrécissant la largeur vestibulaire du défaut vers l’intérieur. Ensuite, faites un clic droit et enregistrez la scène en tant que fichier.</li>
	<li>Pour créer un modèle final, redémarrez le programme et rechargez le dossier enregistré. Sélectionnez ensuite l’option Mode Assistant et Alignement du modèle sur la droite. Sélectionnez le type de modèle Digital Waxup Model sur la gauche. Cliquez plusieurs fois sur Suivant jusqu’à ce que vous atteigniez la section de conception du modèle sur la gauche. Sélectionnez l’option Modèle complet et cliquez deux fois sur Suivant . Une fois le fichier de modèle terminé, ouvrez-le à l’aide de l’Explorateur et il est prêt à être imprimé.</li>
	<li>Transférez les fichiers STL du modèle conçu à l’imprimante 3D. Imprimez les modèles numériques créés à l’aide d’une résine de modèle.</li>
	<li>Rincez les modèles expérimentaux à l’éthanol à 96 % pendant 5 à 10 min. Après le processus de nettoyage, placez les modèles dans l’appareil de polymérisation électroluminescent et polymérisez à la lumière pendant 5 min à la dose réglée conformément aux instructions du fabricant. REMARQUE : Utilisez un modèle en résine avec une résistance élevée à la traction, à la flexion et à la compression qui convient au forage d’implants. Nettoyez le modèle imprimé avec des solutions à base d’alcool selon les instructions du fabricant et assurez-vous qu’il est correctement photopolymérisé.</li>
</ol>
2. Coloration des implants
<ol>
	<li>Immergez les implants de test dans de l’encre rouge visqueuse et résistante à l’eau. Assurez-vous que toutes les parties de la surface de l’implant sont complètement et uniformément recouvertes d’encre pendant 15 secondes. Retirez les implants du récipient stérile à l’aide de pièces à main de pilote ou de poteaux d’empreinte sans contact avec la main. REMARQUE : Cette coloration simulera un biofilm optiquement visible pour l’analyse photographique.</li>
	<li>Faites sécher à l’air libre les implants tachés à l’aide d’une seringue à air dentaire afin d’avoir une dispersion uniforme de l’encre. Séchez davantage les implants colorés pendant 24 h à température ambiante. Séchez les implants de manière isolée avec les pièces à main, sans contact avec les mains.</li>
</ol>
3. Mise en place d’implants colorés
<ol>
	<li>Réglez les paramètres d’un distributeur de physiothérapie dentaire comme suit : 800 tr/min, couple de 40 N sans irrigation saline.</li>
	<li>Créez l’emboîture de l’implant avec les forets chirurgicaux sur les modèles expérimentaux pour placer les implants de 11 mm de longueur et 4,2 mm de largeur. Préparez la même emboîture d’implant pour les modèles présentant les deux types de défauts (modèles de défauts de classe 1A et 1B).</li>
	<li>Utilisez les forets implantaires de manière séquentielle selon les instructions du fabricant pour obtenir une stabilité primaire. Nettoyez les débris restants après le forage avec une seringue air-eau, puis placez les implants. Stabiliser les modèles expérimentaux de péri-implantite sur la plate-forme de travail à l’aide d’une pince pour éviter les micromouvements des implants et pour éviter les microfissures sur les modèles.</li>
	<li>Insérez les implants avec une pièce à main de support dans les emboîtures. Laissez 5 mm de surface exposée sur la surface buccale. Assurez-vous que les implants sont immergés au même niveau sur la crête osseuse linguale du modèle. Évitez de toucher la surface de l’implant tachée.</li>
</ol>
4. Décontamination des implants
<ol>
	<li>Commencez à décontaminer les implants en groupes sans les retirer des modèles expérimentaux de défauts 1A et 1B.</li>
	<li>Système abrasif à l’air : Réglez l’appareil à pleine puissance avec une irrigation à l’eau avec une poudre d’érythritol de 14 μm. Tenez l’extrémité de l’appareil à 2-3 mm de la surface de l’implant et appliquez la poudre uniformément sur le défaut de péri-implantite exposé. Limitez le temps de travail à 2 min pour les défauts 1A et 3 min pour les défauts 1B.</li>
	<li>Pointe à ultrasons en polyétheréthercétone (PEEK) : Réglez l’appareil à 8 puissance (80 %) avec une irrigation maximale par eau. Tenez la pièce à main PEEK d’une manière adaptée à l’utilisation par ultrasons. Effectuez la décontamination de la surface de l’implant avec des mouvements linéaires et parallèles. Appliquez l’embout PEEK entre les fils autant que sa conception le permet. Limitez le temps de travail à 2 min pour les défauts 1A et 3 min pour les défauts 1B.</li>
	<li>Curettes en titane : Appliquez des contacts consécutifs avec une pression constante de 60° à 90° sur la surface de l’implant avec une force d’environ 0,75 N sur la surface exposée de l’implant de 5 mm pendant 2 min pour les défauts 1A et 3 min pour les défauts 1B.</li>
	<li>Après la décontamination, retirez l’implant à l’aide de la pièce d’entraînement sans contact avec la main. Si les modèles se déforment après décontamination, passez aux modèles de secours. Stabilisez les modèles expérimentaux de péri-implantite sur la plate-forme de travail à l’aide d’une pince. REMARQUE : Toutes les méthodes doivent être calibrées et appliquées par un seul chercheur.</li>
</ol>
5. Imagerie photographique
<ol>
	<li>Retirez les implants du modèle à l’aide d’un tournevis d’implant compatible. Faites sécher les implants à l’air libre pendant 20 secondes pour éliminer les particules/restes détachés à la surface.</li>
	<li>Placez les implants sur des modèles photographiques en acrylique conçus sur mesure pour prendre des vues plates, des vues apicales à 30° et des vues coronales à 30° pour évaluer les parties apicales et coronales des filetages sur la surface de l’implant.</li>
	<li>Placez l’appareil photo sur un trépied et uniformisez les paramètres de l’appareil photo (distance 15 cm, ISO 160, ouverture f/16, temps d’exposition 1/250 s). Assurez-vous que la pièce est suffisamment éclairée. Il est nécessaire de stabiliser l’appareil photo avec un trépied.</li>
	<li>Prenez les photos numériques au format RAW avec un flash. Obtenez un total de 90 photos buccales (une plate, une à 30° apicale et une à 30° coronale pour chaque surface d’implant) pour les défauts de classe 1A et 270 photos (plate, 30° apicale et 30° coronale de chaque surface buccale, mésiale, distale pour chaque implant) pour les défauts de classe 1B. Déposez tous les fichiers photo numériques sur un disque dur pour une analyse plus approfondie de l’image.</li>
</ol>
6. Analyse d’images
<ol>
	<li>Effectuez toutes les analyses sur un logiciel d’imagerie numérique (ImageJ). Avant l’analyse, rendez l’arrière-plan des photographies noir à l’aide d’un programme Photoshop (Photoroom) pour vous assurer que seul l’implant est visible dans l’image. Ouvrez l’application puis ajoutez chaque image de la galerie. Supprimez l’arrière-plan de l’image et sélectionnez Arrière-plan noir dans les options.</li>
	<li>Faites glisser et déposez l’image sur ImageJ. Dessinez un carré dans l’image pour couvrir 5 mm coronaire à l’implant. Cliquez ensuite sur Image &gt; Recadrer pour la normalisation. Répétez le même processus pour chaque image.</li>
	<li>Convertissez les images au format 8 bits en cliquant sur Image ˃ Tapez ˃ 8 bits et ajustez les seuils en cliquant sur Image ˃ Ajuster ˃ Seuil pour les calculs de surface.</li>
	<li>Calculez toute la surface de l’implant et la zone des résidus de couleur rouge en cliquant sur Analyser ˃ Mesurer ˃ Surface.</li>
	<li>Enregistrez la zone de pixels obtenue dans un fichier tableur. Créez un fichier de feuille de calcul distinct pour enregistrer les données d’image brutes.</li>
	<li>Afin d’obtenir le pourcentage de restes de couleur rouge, multipliez la surface affichée en rouge par 100 et divisez par la surface totale de l’implant.</li>
</ol>
7. Analyse MEB
<ol>
	<li>Conservez tous les implants dans leurs boîtes stériles jusqu’au jour de l’analyse.</li>
	<li>Avant l’analyse MEB, sélectionnez au hasard un échantillon représentatif de chaque groupe de traitement. En plus des échantillons sélectionnés dans chaque groupe, ajoutez un implant stérile et seulement l’implant entièrement recouvert d’encre. Ainsi, préparez un total de huit échantillons d’implants pour l’analyse MEB.</li>
	<li>Pulvériser de l’azote gazeux à l’aide d’un pistolet à gaz pendant 20 s afin d’éliminer toute micro-poudre sur la surface de l’implant avant l’analyse MEB. REMARQUE : Aucun revêtement d’or supplémentaire n’a été appliqué en raison de la technologie avancée de l’appareil.</li>
	<li>Montez chaque implant sur des talons MEB avec des disques adhésifs en carbone conducteur de manière à permettre l’analyse de la surface plane buccale sans décontamination des mains. Disposez-les par ordre de nombre pour éviter la confusion des groupes.</li>
	<li>Sélectionnez une zone parmi les implants placés dans l’instrument et capturez des images à différents grossissements. Répétez la même procédure pour différentes régions des surfaces de l’implant (mésiale ou distale). Utilisez un grossissement de 100x, 1000x et 5000x pour les images à l’aide d’un appareil MEB fonctionnant à 10-30 kV avec une distance de travail moyenne de 12 mm. REMARQUE : Le deuxième microbrin de la zone du collier et le deuxième macrobrin du corps ont été sélectionnés pour chaque implant afin d’assurer la standardisation lors de l’analyse MEB. Pour certaines images, il est recommandé d’effectuer une analyse élémentaire (EDS) pendant l’imagerie à des fins de comparaison.</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67778/67778fig02.jpg"> 
Figure 2 : Organigramme de l’étude. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67778/67778fig02large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
8. Analyse statistique
<ol>
	<li>Exprimez les variables catégorielles sous forme de nombres et de pourcentages et les variables continues sous forme de moyenne et d’écart-type. Confirmez la normalité de la distribution pour les variables continues avec le test de Shapiro-Wilk.</li>
	<li>Pour comparer des variables continues entre des groupes de défauts, utilisez le test t de Student. Pour comparer plus de deux groupes, utilisez l’ANOVA à un facteur ou le test de Kruskal Wallis selon que les hypothèses statistiques se sont vérifiées ou non.</li>
	<li>Pour les données normalement distribuées, en ce qui concerne l’homogénéité des variances, utilisez les tests de Tukey pour des comparaisons multiples de groupes. Pour les données non distribuées de manière anormale, utilisez le test U de Mann-Whitney ajusté par Bonferroni pour des comparaisons multiples de groupes. Toutes les analyses statistiques ont été effectuées à l’aide d’IBM SPSS 20. Le niveau statistique de signification pour tous les tests a été considéré comme étant de 0,05.</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Imprimante 3D</td><td>DentaFab, Istanbul, Turquie</td><td></td><td>Pour produire des défauts expérimentaux de péri-implantite</td></tr><tr><td>Résine d’impression 3D&nbsp ;</td><td>Alias, Istanbul, Turquie</td><td></td><td>Produire des modèles expérimentaux de péri-implantite</td></tr><tr><td>Scanner 3D</td><td>DOF Inc. EDGE, Séoul ,République de Corée</td><td></td><td>Utilisé pour scanner le modèle de fantôme dentaire</td></tr><tr><td>Système abrasif à l’air</td><td>AIRFLOW Plus PowderE.M.S., Electro Medical Systems S.A., Nyon, Suisse</td><td></td><td>Utilisé pour décontaminer la surface de l’implant</td></tr><tr><td>Logiciel de CFAO</td><td>Exocad 3.2 Elefsina</td><td></td><td>Pour produire des défauts expérimentaux de péri-implantite</td></tr><tr><td>Caméra</td><td>Canon EOS 70D, Japon</td><td></td><td>Afin d’obtenir des enregistrements photographiques d’implants</td></tr><tr><td>Implant dentaire</td><td>DS PrimeTaper, Dentsply Sirona, Hanau, Allemagne</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Unité de photopolymérisation</td><td>Solidilite V, Japon</td><td></td><td>Habitué à la polymérisation de modèles expérimentaux en laboratoire</td></tr><tr><td>Encre permanente</td><td>Edding, Allemagne&nbsp ;</td><td></td><td>Utilisé pour colorer la surface de l’implant pour imiter le biofilm</td></tr><tr><td>Physiodispenser</td><td>Dentsply Sirona, Hanau, Allemagne</td><td></td><td>Pour placer les implants dans les modèles expérimentaux</td></tr><tr><td>Dispositif MEB</td><td>FEI QUANTA FEG 250 FEI Technologies Inc. (Oregon, États-Unis</td><td></td><td>Utilisé pour analyser les changements topographiques sur la surface de l’implant</td></tr><tr><td>Kit d’implants chirurgicaux</td><td>Dentsply Sirona, Hanau, Allemagne</td><td></td><td>Pour placer les implants dans les modèles expérimentaux</td></tr><tr><td>Currette en titane</td><td>Langer et frac12 ; Currette en titane, Hu-Friedy, Chicago, IL, États-Unis</td><td></td><td>Utilisé pour décontaminer la surface de l’implant</td></tr><tr><td>Pointe ultrasonique PEEK</td><td>Détartreur implantaire PI-MAX, E.M.S., Electro Medical Systems S.A., Nyon, Suisse</td><td></td><td>Utilisé pour décontaminer la surface de l’implant</td></tr></tbody></table>

effets des méthodes mécaniques utilisées dans le traitement de la péri-implantite sur la décontamination et la rugosité de la surface de l’implant

Effects of Mechanical Methods Used in Peri-implantitis Treatment on Implant Surface Decontamination and Roughness

Le protocole expérimental décrit ici pour l’analyse de la décontamination des surfaces des implants a révélé des différences significatives entre les différentes procédures de traitement. De plus, le protocole SEM post-traitement a également montré des changements significatifs sur les surfaces de l’implant, à des degrés divers parmi les groupes d’étude.
Comparaisons au niveau de l’implant (moyennes totales de l’implant) après décontamination Des comparaisons au niveau de l...

Effets des méthodes mécaniques utilisées dans le traitement de la péri-implantite sur la décontamination et la rugosité de la surface de l’implant

Various mechanical methods have been proposed for decontaminating dental implant surfaces with varying success. This in vitro study evaluated the ...

Cette étude évalue l’efficacité des systèmes d’abrasion à l’air, des pointes à ultrasons PEEK et des curettes en titane pour la décontamination de la surface des implants, ainsi que leur impact sur la rugosité de la surface à l’aide d’une analyse au microscope électronique à balayage. La prévalence de la péri-implantite augmente dans le monde entier et il n’existe pas de protocole définitif pour des traitements efficaces de cette maladie.Les résultats montrent que l’abrasion à l’air peut être utilisée de manière sûre et efficace pour la décontamination des surfaces d’implants à des fins régénératives. Bien que le MEB puisse fournir des détails sur la surface de l’implant, il est nécessaire de disposer d’un indice d’objet pour différencier les changements après le traitement de surface.[Narrateur] Pour commencer, retirez la première molaire d’un modèle de fantôme mandibulaire éducatif. À l’aide d’un tournevis, desserrez et retirez la vis fixant la première molaire. Extrayez le filetage de la douille. Moulez un matériau en silicone souple dans l’alvéole pour créer une crête alvéolaire plate. Imprimez les modèles numériques à l’aide d’une résine de modèle. Maintenant, rincez les modèles expérimentaux imprimés avec de l’éthanol à 96 % pendant cinq à 10 minutes. Après le nettoyage, placez les modèles dans un appareil de polymérisation électroluminescent. Durcissez les modèles avec de la lumière pendant cinq minutes. Pour colorer les implants, immergez-les complètement dans de l’encre rouge visqueuse et résistante à l’eau pendant 15 secondes. Séchez les implants tachés à l’air libre avec une seringue à air dentaire pour obtenir une dispersion uniforme de l’encre. Ensuite, ajustez les paramètres d’un physiodistributeur dentaire à 800 tours par minute, couple de 40 Newton, sans irrigation saline. À l’aide de forets chirurgicaux pour implants, créez des emboîtures d’implants dans les modèles expérimentaux pour des implants mesurant 11 millimètres de long et 4,2 millimètres de large. Insérez maintenant les implants dans les emboîtures à l’aide d’une pièce à main porteuse. Assurez-vous que cinq millimètres de l’implant restent exposés sur la surface buccale. Alignez l’implant à immerger au même niveau que la crête osseuse linguale du modèle. Pour un système abrasif à l’air, réglez l’appareil à pleine puissance avec l’irrigation par eau et appliquez de la poudre d’érythritol de 14 micromètres. Tenez l’embout de l’appareil à deux ou trois millimètres de la surface de l’implant et appliquez la poudre uniformément. Pour un embout à ultrasons en polyéther-éther-cétone ou PEEK, réglez l’appareil sur le niveau de puissance huit avec une irrigation maximale par eau. Effectuer la décontamination avec des mouvements linéaires et parallèles, en assurant l’application entre les fils de l’implant dans la mesure du possible. Pour les curettes en titane, appliquez des contacts consécutifs avec une pression constante à un angle de 60 à 90 degrés par rapport à la surface de l’implant. Retirez les implants du modèle à l’aide d’un tournevis d’implant compatible. Faites sécher les implants à l’air libre pendant 20 secondes pour éliminer les particules ou les restes à la surface. Placez les implants sur des modèles photographiques acryliques conçus sur mesure pour évaluer les régions apicales et coronales des fils de l’implant. Ensuite, montez l’appareil photo sur un trépied et uniformisez les paramètres de l’appareil photo. Assurez-vous que la pièce est suffisamment éclairée. Prenez des photos numériques au format brut avec un flash. Pour l’analyse d’image, cliquez sur l’image, puis sur Type, et appuyez sur huit bits pour convertir les images au format huit bits. Ajustez les seuils en cliquant séquentiellement sur image, ajuster et seuil pour les calculs de surface. Ensuite, appuyez sur analyser, puis sur mesurer. Cliquez ensuite sur la surface pour calculer la surface totale de l’implant et la zone de résidu rouge. Pour l’analyse MEB, vaporisez d’abord l’implant avec de l’azote gazeux à l’aide d’un pistolet à gaz pendant 20 secondes, afin d’éliminer toute micro-poudre de la surface de l’implant. Montez chaque implant sur des talons MEB à l’aide de disques adhésifs en carbone conducteur. Disposez les implants par ordre de numéro pour éviter les erreurs d’identification avant l’imagerie MEB. La décontamination la plus efficace a été observée dans le groupe AA-1A. La décontamination la plus faible a été détectée dans les groupes TIT-1A et TIT-1B. Dans les zones mésiales et distales du groupe de défauts 1B, plus de résidus d’encre ont été trouvés sous les fils par rapport à la zone buccale dans le groupe de traitement AA. De plus, une particule de poudre a été observée dans le site du micro-fil buccal du groupe de défauts 1B. Une apparence floue et perforée a été observée dans le groupe PEEK. Cependant, le traitement PEEK a donné des résultats similaires à ceux de l’AA dans les zones mésiales et distales du groupe de défauts 1B à des grossissements de 1000x et 5 000x. Les curettes en titane ont provoqué d’importantes altérations de surface, la structure rugueuse de la zone buccale micro-filetée du groupe de défauts 1A devenant indiscernable. D’autres sites présentaient un aplatissement et des rayures longitudinales et horizontales. Dans les sites mésial et distal du groupe de défauts 1B, la structure rugueuse a disparu et le nombre de rayures a augmenté. L’analyse élémentaire de l’implant de référence stérile a révélé une teneur en titane de 99,2 %. L’analyse des structures ressemblant à des trous noirs dans d’autres groupes, et la surface de l’implant non traitée entièrement recouverte d’encre a montré une composition dominante en carbone.

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