Name: Imagerie haute résolution de C. elegans à tous les stades larvaires (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-05-23T14:20:00.000+00:00
Duration: 7 min 49 s
Description: Découvrez une méthode microfluidique pour l'imagerie longue durée de C. elegans à haute résolution. Cette approche permet d'observer les processus développementaux in vivo tout en maintenant la viabilité des animaux.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Sulston, J. E., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Post-embryonic+cell+lineages+of+the+nematode%2C+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Post-embryonic cell lineages of the nematode, Caenorhabditis elegans.</a> Dev Biol. 56 (1), 110-156 (1977).</li>
<li>Lin, R., Kipreos, E. T., Zhu, J., Khang, C. H., Kner, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+three-dimensional+imaging+deep+through+multicellular+thick+samples+by+structured+illumination+microscopy+and+adaptive+optics%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Subcellular three-dimensional imaging deep through multicellular thick samples by structured illumination microscopy and adaptive optics.</a> Nat Commun. 12 (1), 3148(2021).</li>
<li>Sulston, J. E., Schierenberg, E., White, J. G., Thomson, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+embryonic+cell+lineage+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">The embryonic cell lineage of the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Dev Biol. 100 (1), 64-119 (1983).</li>
<li>Luke, C. J., Niehaus, J. Z., O'Reilly, L. P., Watkins, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-microfluidic+methods+for+imaging+live+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Non-microfluidic methods for imaging live C. elegans.</a> Methods. 68 (3), 542-547 (2014).</li>
<li>Fang-Yen, C., Gabel, C. V., Samuel, A. D., Bargmann, C. I., Avery, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+microsurgery+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Laser microsurgery in Caenorhabditis elegans.</a> Methods Cell Biol. 107, 177-206 (2012).</li>
<li>Wolke, U., Jezuit, E. A., Priess, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin-dependent+cytoplasmic+streaming+in+C.+elegans+oogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Actin-dependent cytoplasmic streaming in C. elegans oogenesis.</a> Development. 134 (12), 2227-2236 (2007).</li>
<li>Chronis, N., Zimmer, M., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics+for+in+vivo+imaging+of+neuronal+and+behavioral+activity+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Microfluidics for in vivo imaging of neuronal and behavioral activity in Caenorhabditis elegans.</a> Nat Methods. 4 (9), 727-731 (2007).</li>
<li>Hulme, S. E., Shevkoplyas, S. S., Apfeld, J., Fontana, W., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfabricated+array+of+clamps+for+immobilizing+and+imaging%C3%82%C2%A0C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">A microfabricated array of clamps for immobilizing and imagingÂ C. elegans.</a> Lab Chip. 7 (11), 1515-1523 (2007).</li>
<li>Rohde, C. B., Zeng, F., Gonzalez-Rubio, R., Angel, M., Yanik, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+system+for+on-chip+high-throughput+whole-animal+sorting+and+screening+at+subcellular+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Microfluidic system for on-chip high-throughput whole-animal sorting and screening at subcellular resolution.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (35), 13891-13895 (2007).</li>
<li>Chung, K., Crane, M. M., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+on-chip+rapid+microscopy%2C+phenotyping+and+sorting+of+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Automated on-chip rapid microscopy, phenotyping and sorting of C. elegans.</a> Nat Methods. 5 (7), 637-643 (2008).</li>
<li>Krajniak, J., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+high-resolution+imaging+and+culture+of+C.+elegans+in+chip-gel+hybrid+microfluidic+device+for+developmental+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Long-term high-resolution imaging and culture of C. elegans in chip-gel hybrid microfluidic device for developmental studies.</a> Lab Chip. 10 (14), 1862-1868 (2010).</li>
<li>Samara, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+in+vivo+femtosecond+laser+neurosurgery+screen+reveals+small-molecule+enhancer+of+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Large-scale in vivo femtosecond laser neurosurgery screen reveals small-molecule enhancer of regeneration.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (43), 18342-18347 (2010).</li>
<li>Stirman, J. N., Brauner, M., Gottschalk, A., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+study+of+synaptic+transmission+at+the+neuromuscular+junction+enabled+by+optogenetics+and+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">High-throughput study of synaptic transmission at the neuromuscular junction enabled by optogenetics and microfluidics.</a> J Neurosci Methods. 191 (1), 90-93 (2010).</li>
<li>San-Miguel, A., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics+as+a+tool+for%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%3A+The+Online+Review+of+C.+elegans+Biology%22%5BJournal%5D)">Microfluidics as a tool for.</a> WormBook: The Online Review of C. elegans Biology. , (2013).</li>
<li>Lee, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multi-channel+device+for+high-density+target-selective+stimulation+and+long-term+monitoring+of+cells+and+subcellular+features+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">A multi-channel device for high-density target-selective stimulation and long-term monitoring of cells and subcellular features in C. elegans.</a> Lab Chip. 14 (23), 4513-4522 (2014).</li>
<li>Mondal, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+microfluidics+providing+high-resolution+and+high-throughput+screening+of+Caenorhabditis+elegans+poly-glutamine+aggregation+model%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Large-scale microfluidics providing high-resolution and high-throughput screening of Caenorhabditis elegans poly-glutamine aggregation model.</a> Nat Commun. 7 (1), 13023(2016).</li>
<li>Berger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+C.+elegans+immobilization+enables+high-resolution+developmental+studies+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Long-term C. elegans immobilization enables high-resolution developmental studies in vivo.</a> Lab Chip. 18 (9), 1359-1368 (2018).</li>
<li>Berger, S., Spiri, S., DeMello, A., Hajnal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic-based+imaging+of+complete+Caenorhabditis+elegans+larval+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Microfluidic-based imaging of complete Caenorhabditis elegans larval development.</a> Development. 148 (18), dev199674(2021).</li>
<li>Spiri, S., Berger, S., Mereu, L., DeMello, A., Hajnal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reciprocal+EGFR+signaling+in+the+anchor+cell+ensures+precise+inter-organ+connection+during+Caenorhabditis+elegans+vulval+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Reciprocal EGFR signaling in the anchor cell ensures precise inter-organ connection during Caenorhabditis elegans vulval morphogenesis.</a> Development. 149 (1), dev199900(2022).</li>
<li>Gritti, N., Kienle, S., Filina, O., Van Zon, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+time-lapse+microscopy+of+C.+elegans+post-embryonic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Long-term time-lapse microscopy of C. elegans post-embryonic development.</a> Nat Commun. 7 (1), 12500(2016).</li>
<li>Keil, W., Kutscher, L. M., Shaham, S., Siggia, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+high-resolution+imaging+of+developing+C.+elegans+larvae+with+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Long-term high-resolution imaging of developing C. elegans larvae with microfluidics.</a> Dev Cell. 40 (2), 202-214 (2017).</li>
<li>Heinze, S. D., Berger, S., Engleitner, S., Daube, M., Hajnal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonging+somatic+cell+proliferation+through+constitutive+hox+gene+expression+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Prolonging somatic cell proliferation through constitutive hox gene expression in C. elegans.</a> Nat Commun. 14 (1), 6850(2023).</li>
<li>Agarwal, P., Berger, S., Shemesh, T., Zaidel-Bar, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Active+nuclear+positioning+and+actomyosin+contractility+maintain+leader+cell+integrity+during+gonadogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Active nuclear positioning and actomyosin contractility maintain leader cell integrity during gonadogenesis.</a> Curr Biol. 34 (11), 2373-2386 (2024).</li>
<li>Segos, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-random+segregation+of+mitochondria+during+asymmetric+cell+division+contributes+to+cell+fate+divergence+in+daughter+cells%5BTitle%5D)+AND+%22bioRxiv%22%5BJournal%5D)">Non-random segregation of mitochondria during asymmetric cell division contributes to cell fate divergence in daughter cells.</a> bioRxiv. , 2024-2109 (2024).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).</li>
<li>Stiernagle, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintenance+of+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%3A+The+Online+Review+of+C.+elegans+Biology%22%5BJournal%5D)">Maintenance of C. elegans.</a> WormBook: The Online Review of C. elegans Biology. , (2006).</li>
<li>Pepin, B. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPepin%2C+B+%22GPU+Deconvolution+Library+with+C+and+Matlab+API+for+Nvidia+GPUs%22">GPU Deconvolution Library with C and Matlab API for Nvidia GPUs</a>. , https://github.com/bobpepin/YacuDecu (2025).</li>
<li>Podbilewicz, B., White, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+fusions+in+the+developing+epithelia+of+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell fusions in the developing epithelia of C. elegans.</a> Dev Biol. 161 (2), 408-424 (1994).</li>
<li>Nusser-Stein, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-cycle+regulation+of+NOTCH+signaling+during+C.+elegans+vulval+development%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell-cycle regulation of NOTCH signaling during C. elegans vulval development.</a> Mol Syst Biol. 8 (1), 618(2012).</li>
<li>Euling, S., Ambros, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterochronic+genes+control+cell+cycle+progress+and+developmental+competence+of+C.+elegans+vulva+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Heterochronic genes control cell cycle progress and developmental competence of C. elegans vulva precursor cells.</a> Cell. 84 (5), 667-676 (1996).</li>
<li>Mok, D. Z., Sternberg, P. W., Inoue, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphologically+defined+sub-stages+of+C.+elegans+vulval+development+in+the+fourth+larval+stage%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Morphologically defined sub-stages of C. elegans vulval development in the fourth larval stage.</a> BMC Dev Biol. 15, 1-8 (2015).</li>
<li>Laranjeira, A. C., Berger, S., Kohlbrenner, T., Greter, N. R., Hajnal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nutritional+vitamin+B12+regulates+RAS%2FMAPK-mediated+cell+fate+decisions+through+one-carbon+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Nutritional vitamin B12 regulates RAS/MAPK-mediated cell fate decisions through one-carbon metabolism.</a> Nat Commun. 15 (1), 8178(2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Électrovanne 3/2&nbsp ;</td><td>Distrelec</td><td>154-22-898 et 154-22-899</td><td>Alternative à ci-dessus. Électrovanne reliant le régulateur de pression à l’électrovanne sur puce.</td></tr><tr><td>Arduino</td><td>Distrelec</td><td>301-01-956</td><td>Microcontrôleur en option selon le contrôleur et l’interface sélectionnés.</td></tr><tr><td>Bacto-Tryptone</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>211705</td><td>Pour la production de bouillon.</td></tr><tr><td>Bacto-Levure</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>212750</td><td>Pour la production de L Bouillon.</td></tr><tr><td>Aiguille émoussée 23G</td><td>Gonano Dosiertechnik</td><td>GGA723050&nbsp ;</td><td>Aiguille émoussée reliant le tube 1/16" à une seringue.</td></tr><tr><td>Aiguille émoussée 30G</td><td>Gonano Dosiertechnik</td><td>IG-TE730050</td><td>Aiguille émoussée reliant le tube 1/32" à une seringue.</td></tr><tr><td>C. elegans Construct 1</td><td>NA</td><td>NA</td><td>AH5786 LGI : hmr-1(cp21[hmr-1 ::gfp + LoxP]) Marston, D.J. et al. MRCK-1 entraîne la constriction apicale chez C. elegans en liant le modèle de développement à la génération de force. Curr. Biol. 26 (16), 2079-2089. 2016.</td></tr><tr><td>C. elegans Construct 2</td><td>NA</td><td>NA</td><td>AH1187 LGII : arIs92[egl-17 ::cfp] Yoo, A.S., Bais, C., Greenwald, I. Diaphonie entre les voies EGFR et LIN-12/Notch dans le développement vulvaire de C. elegans. Science. 303 (5658), 663-666. 2004.</td></tr><tr><td>C. elegans Construct 3</td><td>NA</td><td>NA</td><td>AH5786 LGV : qyIs50[Pcdh-3>mCherry ::moeABD, unc-119(+)] Ziel, J.W., Hagedorn, E.J., Audhya, A., Sherwood, D.R. UNC-6 (netrin) oriente la membrane invasive de la cellule d’ancrage chez C. elegans. Nat. Cell Biol., 11 (2), 183-189. 2009.</td></tr><tr><td>C. elegans Construct 4</td><td>NA</td><td>NA</td><td>ML2615 LGX : dlg-1(mc103[dlg-1 ::gfp]) Vuong-Brender, T.T.K., Suman, S.K., Labouesse, M. La MEC apicale préserve l’intégrité embryonnaire et répartit les contraintes mécaniques au cours de la morphogenèse. Développement. 144 (23), 4336-4349. 2017.Câble</td></tr> <tr><td></td><td>Distrelec</td><td>143-46-644</td><td>Nécessaire si vous sélectionnez le solénoïde de distrelec. Câble reliant le solénoïde au MOSFET.</td></tr><tr><td>Chlorotriméthylsilane&nbsp ;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>386529-25ML</td><td>Silane pour la passivation des wafers.</td></tr><tr><td>Cholestérol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C8667</td><td>Pour&nbsp ; Production S-Basale.</td></tr><tr><td>Flyback Diode</td><td>Distrelec</td><td>110-52-628</td><td>Diode flyback protégeant le microcontrôleur.</td></tr><tr><td>Goupille creuse en acier</td><td>Gonano Dosiertechnik</td><td>GGA7R23050&nbsp ;</td><td>Goupille creuse en acier 23G reliant le tube 1/16" à l’appareil.</td></tr><tr><td>L Bouillon</td><td>NA</td><td>NA Préparé</td><td>sur place selon la recette standard. 10 g de Bacto-tryptone, 5 g de Bacto-levure, 5 g de NaCl, H2O à 1 litre, pH à 7,0 avec 1 M de NaOH</td></tr><tr><td>Appareil d’imagerie à long terme L1</td><td>NA</td><td>Appareil</td><td>d’imagerie à long terme pour les larves L1 à L2 précoce/moyenne. Fabriqué sur place, disponible sur demande. Également disponible en tant que variante d’échange de support.</td></tr><tr><td>Dispositif d’imagerie à long terme L1-4</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Dispositif d’imagerie à long terme pour les larves de L1 à L4 moyenne. Fabriqué sur place, disponible sur demande. Également disponible en tant que variante d’échange de support.</td></tr><tr><td>Dispositif d’imagerie à long terme L2-A</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Appareil d’imagerie à long terme pour le milieu de la L2 à l’âge adulte (éversion). Fabriqué sur place, disponible sur demande. Également disponible en tant que variante d’échange de support.</td></tr><tr><td>Dispositif d’imagerie à long terme L3-A</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Appareil d’imagerie à long terme pour le milieu de la L3 à l’âge adulte (éversion). Fabriqué sur place, disponible sur demande. Également disponible en tant que variante d’échange de support.</td></tr><tr><td>Dispositif d’imagerie à long terme L4-A</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Appareil d’imagerie à long terme pour le milieu de la L4 à l’âge adulte (éversion). Fabriqué sur place, disponible sur demande. Également disponible en tant que variante d’échange de support.</td></tr><tr><td>M9 Buffer</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Préparé sur place selon la recette standard.</td></tr><tr><td>MOSFET</td><td>Distrelec</td><td>303-41-391</td><td>Transistor à effet de champ semi-conducteur à oxyde métallique, utilisé pour commuter le 24VDC requis pour le solénoïde.</td></tr><tr><td>Plaques NGM</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Préparées sur place selon la recette standard.</td></tr><tr><td>Adaptateur en nylon Luer-Fitting</td><td>Fisher Scientific</td><td>11776048</td><td>d’un tube OD de 6 mm à une aiguille émoussée 23G.</td></tr><tr><td>Optiprep</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D1556</td><td>Liquide d’adaptation de la densité.</td></tr><tr><td>Kit élastomère PDMS</td><td>Ameba</td><td>Elastosil RT601A/B</td><td>PDMS.</td></tr><tr><td>Pluronic F-127</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P2443</td><td>Tensioactif non ionique.</td></tr><tr><td>Dihydrogénophosphate de potassium</td><td>Sigma Aldrich</td><td>1.37039</td><td>Pour&nbsp ; Production S-Basale.</td></tr><tr><td>Hydrogénophosphate de potassium</td><td>Sigma Aldrich</td><td>1.05099</td><td>Pour&nbsp ; Production S-Basale.</td></tr><tr><td>Alimentation 24VDC</td><td>Distrelec</td><td>301-63-304</td><td>Alimentation 24VDC. Sélectionnez une alimentation adaptée au solénoïde sélectionné.</td></tr><tr><td>Régulateur de pression de précision</td><td>Distrelec</td><td>154-23-578</td><td>Alternativ à ci-dessus. Régulateur de pression.</td></tr><tr><td>Manomètre G1/8</td><td>Distrelec</td><td>154-23-643</td><td>Le manomètre se fixe au régulateur de pression.</td></tr><tr><td>Tube PU OD 6mm</td><td>Distrelec</td><td>154-23-866</td><td>Tube reliant la source de pression et le régulateur, ainsi que le régulateur et l’électrovanne.</td></tr><tr><td>Raccord instantané G1/8 à 6 mm</td><td>Distrelec</td><td>301-69-330</td><td>Alternativ à supérieur. 2x Raccord instantané se fixe au régulateur de pression et se connecte au tube de 6 mm.</td></tr><tr><td>Raccord instantané M5 à 6 mm</td><td>Distrelec</td><td>301-69-459</td><td>2x Le raccord instantané se fixe au solénoïde et au tube de 6 mm.</td></tr><tr><td>S-Basal Buffer</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Préparé sur place selon la recette standard. 5,85 g de NaCl, 1 g de K2HPO4, 6 g de KH2PO4, 1 ml de cholestérol (5 mg/ml dans de l’éthanol), H2O pour 1 litre. Stériliser à l’autoclavage.</td></tr><tr><td>Chlorure</td><td>de sodium Sigma Aldrich</td><td>S9625</td><td>Pour la production de bouillon L et de S-Basal.</td></tr><tr><td>Hydroxite de sodium (5M)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>567530</td><td>Hydroxyde de sodium utilisé lors du blanchiment de C. elegans (préparer la solution à une concentration de 5M)</td></tr><tr><td>Hypochlorite de sodium (5 %)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>1.05614</td><td>Hypochlorite de sodium utilisé lors du blanchiment de C. elegans (préparer la solution à une concentration de 5 %)</td></tr><tr><td>Passoire 10 & micro ; m</td><td>pluriSelect</td><td>43-10010-40</td><td>Alternative pour la préparation des aliments à base de bactéries, surtout si des appareils plus petits sont utilisés.</td></tr><tr><td>Passoire 5 & micro ; m</td><td>pluriSelect</td><td>43-10005-40</td><td>Passoire utilisée pour filtrer les larves L1 après une nuit de famine et les bactéries après la préparation complète des aliments.</td></tr><tr><td>SU-8</td><td>Gersteltec</td><td>GM1050</td><td>SU-8 pour une hauteur de 1-10 &m.</td></tr><tr><td>SU-8</td><td>Gersteltec</td><td>GM1060</td><td>SU-8 pour une hauteur de 5-30 &micro ;m.</td></tr><tr><td>SU-9</td><td>Gersteltec</td><td>GM1070</td><td>SU-8 pour une hauteur de 15-200 &micro ;m.</td></tr><tr><td>Seringue 1 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>11338763</td><td>seringue de 1 mL. Si vous utilisez un autre type, assurez-vous que le corps de la seringue et le piston sont rigides, de sorte qu’ils ne soient pas déformés par le pousse-seringue.</td></tr><tr><td>Pousse-seringue</td><td>WPI</td><td>Al1000-220</td><td>Pousse-seringue (https://www.wpiinc.com/var-2300-aladdin-single-syringe-pump.html).</td></tr><tr><td>Tube 15 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-809-220</td><td>Tube utilisé pour le blanchiment des vers et la préparation des bactéries.</td></tr><tr><td>Tube de 2 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC1186931</td><td>Tube utilisé pour la préparation des vers et la préparation des bactéries.</td></tr><tr><td>Tube 50 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-465-232</td><td>Tube utilisé pour la préparation et la croissance des bactéries.</td></tr><tr><td>Pince à épiler SMD</td><td>Br&uuml ; tsch R&uuml ; egg Werkzeuge</td><td>448980</td><td>Pince à épiler utilisée pour brancher le tube 1/32" dans l’appareil.</td></tr><tr><td>Tube Tygon 1/16</td> » <td>Fisher Scientific</td><td>642002</td><td>Tube flexible 1/16 » OD reliant la plupart des composants à l’appareil.</td></tr><tr><td>Tube Tygon 1/32"</td><td>Fisher Scientific</td><td>641900</td><td>Tube flexible 1/32 » OD reliant l’alimentation en bactéries à l’appareil.</td></tr><tr><td>UV KUB-3</td><td>Kloe</td><td>NA</td><td>Aligneur de masque et système d’exposition aux UV.</td></tr><tr><td>Plaquette</td><td>Siegert Wafer</td><td>4P0/>1/525&plusmn ; 25/SSP/TTV< 10</td><td>plaquette de silicium.</td></tr><tr><td>Conteneur à déchets</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Préparé sur place à l’aide d’un tube de 2 ml ou d’un flacon cryogénique et de broches creuses en acier.</td></tr></tbody></table>

imagerie haute résolution de c. elegans à tous les stades larvaires

High-Resolution C. elegans Imaging Across All Larval Stages

Imagerie haute résolution de C. elegans à tous les stades larvaires

Caenorhabditis elegans has become one of the most widely studied and best-understood animal models in biology. Three features are key to C. elegans' ...

high-resolution-c-elegans-imaging-across-all-larval-stages

Research

Recherche

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologie du développement

Hémocytes drosophile se dispersent sur ​​l'ensemble de l'embryon en développement. Ce protocole démontre comment monter et à l'image de ces migrations à partir d'embryons avec les hémocytes marqués par fluorescence.

En direct de l&#39;imagerie Drosophila melanogaster Migrations hémocytaires embryonnaires

Imagerie C. elegans Les embryons en utilisant un microscope à épifluorescence et de logiciels Open Source

Cet article décrit une technique pour la visualisation des événements précoces de l'embryogenèse chez le...

Time-lapse de microscopie du début de l&#39;embryogenèse dans les Caenorhabditis elegans

Un dispositif simple microfluidique a été développé pour effectuer anesthésie...

Simple Dispositifs microfluidiques pour<em&gt; In vivo</em&gt; Imagerie des<em&gt; C. elegans</em&gt;,<em&gt; Drosophila</em&gt; Et le poisson-zèbre

Ce protocole décrit comment l'image des cellules en division dans un tissu en Caenorhabditis elegans embryons. Bien que de nombreux protocoles décrivent comment la division cellulaire de l'image dans l'embryon précoce, ce protocole décrit comment l'image de la division cellulaire dans un tissu en développement au cours de l'embryogenèse tardive milieu.

Visualisation neuroblaste Cytocinèse cours<em&gt; C. elegans</em&gt; Embryogenèse

L’imagerie du comportement et de l’activité neuronale sur de longues échelles de temps sans immobilisation de l’animal est une condition préalable à la compréhension du comportement. L’imagerie des chambres microfluidiques à l’agarose (IAM) peut être utilisée pour imager l’activité neuronale et le comportement à tous les stades de la vie de Caenorhabditis elegans.

Microchambres agarose à long terme de l&#39;imagerie calcique<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Le transparent c. elegans intestin peut servir comme une «en vivo tissu chambre » pour l’étude des apicobasal la biogenèse membranaire et lumen au niveau unicellulaire et subcellulaire pendant tubulogenèse multicellulaires. Ce protocole décrit comment combiner un étiquetage standard, perte de fonction génétique/ARNi et approches microscopiques de disséquer ces processus au niveau moléculaire.

Le c. elegans intestin comme un modèle intercellulaires Lumen morphogenèse et In Vivo polarisé la biogenèse membranaire au niveau unicellulaire : marquage par des anticorps, RNAi perte de fonction analyse et imagerie

Ici, nous présentons une approche combinatoire utilisant la microscopie à haute résolution, les outils de calcul, et l’étiquetage à une seule cellule dans les embryons vivants de C. elegans pour comprendre la dynamique de cellule unique pendant le neurodéveloppement.

Microscopie isotrope en feuilles légères et analyse automatisée de la lignée cellulaire au catalogue Caenorhabditis elegans embryogenèse avec résolution subcellulaire

Ce travail décrit un protocole semi-haut débit qui permet l'imagerie simultanée en time-lapse 3D de l'embryogenèse dans 80-100 embryons d'élegans de C. dans une seule course de nuit. En outre, des outils de traitement d'image et de visualisation sont inclus pour rationaliser l'analyse des données. La combinaison de ces méthodes avec des souches de reporter personnalisées permet une surveillance détaillée de l'embryogenèse.

Une méthode d'imagerie semi-haut débit et une boîte à outils de visualisation de données pour analyser C. elegans Embryonic Development

Le protocole décrit une conception simple de puces microfluidiques et une méthodologie de microfabrication utilisées pour cultiver C. elegans en présence d’un approvisionnement alimentaire continu jusqu’à 36 heures. Le dispositif de croissance et d’imagerie permet également une imagerie intermittente à haute résolution à long terme des processus cellulaires et sous-cellulaires pendant le développement pendant plusieurs jours.

Une puce microfluidique simple pour la croissance à long terme et l’imagerie de Caenorhabditis elegans

La microscopie à super-résolution peut fournir un aperçu détaillé de l’organisation des composants au sein du complexe synaptonémique dans la méiose. Ici, nous démontrons un protocole pour résoudre les protéines individuelles du complexe synaptonemal Caenorhabditis elegans .

Microscopie à super-résolution du complexe synaptonémique dans la lignée germinale de Caenorhabditis elegans

Découvrez une méthode microfluidique pour l'imagerie longue durée de C. elegans à haute résolution. Cette approche permet d'observer les processus développementaux in vivo tout en maintenant la viabilité des animaux.

Imagerie haute résolution de C. elegans à tous les stades larvaires

Explorer plus de vidéos