17 juin 2025
Ici, nous présentons un protocole de prélèvement et de traitement de la biopsie conjonctivale afin d’identifier la membrane muqueuse pemphigoïde.
Nous essayons d’augmenter l’adoption de la biopsie conjonctivale pour le diagnostic de la membrane muqueuse pemphigoïde, qui est une conjonctivite cicatrisante chronique, et si elle n’est pas traitée, elle peut causer la cécité. La coloration immunofluorescente directe de la biopsie conjonctivale pour le dépôt de complexes immunitaires dans la membrane du patient est un diagnostic de MMP, mais n’est pas pratiquée dans de nombreux centres à travers le monde. L’article sur les méthodes actuelles décrit les techniques de prélèvement de la biopsie conjonctivale et de l’utilisation d’un milieu à température de coupe optimale rempli de cartouches pour le transfert d’échantillons et la préparation du sang, ce qui réduit la manipulation des échantillons.
Pour commencer, planifiez une biopsie des deux yeux du patient suspecté de pemphigoïde sous anesthésie topique ou locale à l’aide d’un microscope opératoire. Obtenez le consentement éclairé du patient et expliquez clairement les effets secondaires possibles, y compris les saignements, les cicatrices et la nécessité potentielle de commencer à prendre des stéroïdes topiques après la chirurgie. Avant de faire une biopsie, préparez les cartouches en les nettoyant à l’aide d’une solution saline normale et en les remplissant avec une température de coupe optimale, ou un milieu OCT séparément pour chaque œil.
Placez maintenant un spéculum dans l’œil sélectionné, à droite ou à gauche. Après l’application de proparacaïne topique, si le patient ressent toujours de la douleur, injectez 0,2 millilitres de lidocaïne à 2 % par voie subconjonctive à l’aide d’une seringue de 1 millilitre à la tuberculine. Après avoir soulevé la conjonctive de la sclérotique à l’aide d’une pince à membres, effectuez une excision linéaire d’environ 4 à 5 millimètres de long et 2 à 3 millimètres de large avec une paire de ciseaux Westcott.
Transférez immédiatement l’ensemble de la biopsie dans un milieu à température de coupe optimale. Congelez en un clin d’œil les échantillons incrustés à l’aide d’azote liquide ou de glace sèche. Ensuite, conservez-les à 80 degrés Celsius pendant la nuit.
Sectionnez le tissu congelé en tranches de 4 à 6 micromètres d’épaisseur à l’aide d’un cryostat maintenu à 20 à 25 degrés Celsius. Montez les sections sur des lames de microscope recouvertes de polylysine chargée positivement pour assurer l’adhérence. Enveloppez ensuite les lames dans du papier d’aluminium avant de les stocker à 80 degrés Celsius jusqu’à ce qu’elles soient tachées.
Décongelez les lames à température ambiante pendant 10 minutes. Fixez ensuite le tissu avec de l’acétone froide à 100 % pendant 10 minutes supplémentaires pour préserver les antigènes et minimiser les dommages aux tissus. Maintenant, rincez les lames avec OBS trois fois, chacune pendant cinq minutes pour éliminer les résidus de milieu OCT et d’acétone.
Appliquez des anticorps conjugués dilués, anti-IgG, anti-IgA, anti-IgM et anti-IgC3 sur les lames. N’appliquez pas les anticorps de la lame de contrôle négative. Maintenant, incubez les lames dans une chambre humidifiée à 37 degrés Celsius pendant 45 à 60 minutes.
Ensuite, lavez les lames avec du PBS trois fois pendant cinq minutes chacune pour éliminer les anticorps non liés. Contre-coloration avec un support de montage contenant du DAPI pour la visualisation nucléaire. Enfin, placez une lamelle sur chaque lame et laissez-les durcir pendant 20 minutes.
Examinez les lames à l’aide d’un microscope à fluorescence équipé des filtres appropriés, y compris un filtre d’excitation vert à 488 nanomètres pour la détection des fluorophores. La membrane basale a été confirmée par des biopsies conjonctivales à l’aide d’une coloration PAS, apparaissant comme une bande rose vif continue à la base de l’épithélium. La positivité de l’immunofluorescence directe a été visualisée sous forme de fluorescence vert vif le long de la membrane basale.
Les biopsies positives à l’immunofluorescence directe ont montré une fluorescence pour les immunoglobulines IgM, IgA et IgG, tandis que les biopsies négatives étaient sans fluorescence. Le témoin positif a montré une forte fluorescence verte au niveau de la membrane basale.
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Cet article présente un protocole de prélèvement et de traitement de biopsie conjonctivale afin de diagnostiquer le pemphigoïde des membranes muqueuses (MMP), une affection grave pouvant entraîner la cécité si elle n'est pas traitée.
L'immunofluorescence directe (DIF) de la biopsie conjonctivale fournit un outil diagnostique définitif pour le pemphigoïde des membranes muqueuses (MMP), une maladie présentant un fort besoin non satisfait en raison de son risque de cécité irréversible. Des protocoles normalisés de biopsie et de DIF permettent une détection fiable des complexes immuns, favorisant une intervention précoce et réduisant l'ambiguïté diagnostique dans les flux de travail ophtalmologiques et d'immunopathologie. L'adoption de ces méthodes améliore la confiance prédictive au moment critique du diagnostic, orientant les stratégies thérapeutiques ultérieures et la priorisation des portefeuilles.
Ce protocole de biopsie et de DIF s'intègre à l'interface entre le diagnostic et la découverte, alimentant à la fois les voies de recherche clinique et préclinique.