September 12th, 2025
Cette étude présente une méthode d’imagerie 3D utilisant des tissus intestinaux entiers et la microscopie multiphotonique pour quantifier le mucus sécrété, permettant une analyse volumétrique précise et la visualisation de la dynamique du mucus en réponse à des stimuli comme le chlorure de carbamoylcholine.
Nos recherches portent sur les mécanismes d’injection microbienne avec les tissus muqueuss, en soulignant le rôle central du mucus dans la modulation de ces interactions. La quantification traditionnelle du mucus 2D manque de détails spatiaux et volumétriques. Notre protocole permet une analyse 3D précise, révélant des changements structurels et de distribution par des interventions moléculaires négligées dans les méthodes existantes.
Ce protocole combine imagerie hormonale et quantification 3D, fournissant des mesures robustes et reproductibles de l’architecture du mucus intestinal applicables à diverses conditions expérimentales et interventions moléculaires surpassant l’évaluation 2D conventionnelle. Pour commencer, placez une souris anesthésiée de six à huit semaines sur un tapis chauffant pour maintenir sa température corporelle. Désinfectez la surface cutanée de la souris avec de l’alcool, puis faites une incision dans le bas de l’abdomen gauche pour exposer le cecum tout en maintenant l’anesthésie.
Maintenant, identifiez l’iléon ou le côlon proximal. Placez la boucle intestinale sur une gaze stérile. Rincez avec du PBS stérile et fixez les deux extrémités avec des pinces artérielles pour créer une boucle fermée de trois centimètres de long.
Sous anesthésie, injectez au maximum 200 microlitres de réactif stérile PBS ou chlorure de carbamoylcholine dans la boucle intestinale ligatue. Après 30 minutes de traitement, prélève la boucle intestinale de l’animal euthanasié. À l’aide de pinces, maintenez la boucle intestinale et rincez-la doucement dans un PBS stérile.
Ouvrez la boucle intestinale longitudinalement, avec une petite portion non coupée, puis rincez à nouveau le tissu dans un PBS stérile. Aplatir le mouchoir dans un bol de six centimètres et découper la portion restante. Utilisez des segments de fil de cuivre pour l’ancrer sur la base d’agarose.
Ajoutez maintenant 10 millilitres de solution de paraformodéhyde à 4 % dans la plaque pour fixer le tissu pendant 12 à 24 heures. Après l’incubation, retirez la solution de paraformodéhyde et lavez le tissu au moins trois fois avec du PBS pour éliminer tout paraformaldéhyde résiduel. Ensuite, immergez le tissu dans 10 millilitres de tampon de blocage composé de PBS complétés à 0,4 % de Triton X-100 et 3 % de BSA, et conservés à quatre degrés Celsius pendant 12 à 24 heures.
Retirez le tampon de blocage. Colorez le tissu avec une solution de colorant contenant des germes de blé, de l’agglutinine et de la phalloïde. Dans les tissus intestin grêle et colic traités avec PBS, le mucus WGA-positif était principalement localisé dans les cellules gobelets à la surface épithéliale.
Après un traitement au chlorure de carbamoylcholine, la quantité de mucus WGA-positif dans la lumière intestinale a augmenté de manière notable à la fois dans l’intestin grêle et le côlon, mais le mucus était dispersé sporadiquement plutôt que de former une couche continue. Le volume de mucus WGA-positif associé aux cellules caliciformes a été significativement réduit après traitement au chlorure de carbamoylcholine dans l’intestin grêle et le côlon, indiquant une sécrétion active. Tous les volumes de mucus des cellules caliciformes dans les tissus traités par PBS étaient inférieurs à 1 000 micromètres cubes.
Les objets WGA positifs dépassant 1 000 micromètres cubes ont été classés comme mucus sécrété dans la lumière. Le traitement au chlorure de carbamoylcholine a multiplié par environ cinq à vingt fois le volume total de mucus sécrété, tant dans les tissus intestin grêle que dans le côlon.
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Cette étude présente un nouveau protocole pour l'imagerie 3D du mucus intestinal en utilisant des tissus entiers et la microscopie multi-photon. Il permet une analyse volumétrique précise et la visualisation de la dynamique du mucus en réponse à divers stimuli.
Accurate three-dimensional quantification of intestinal mucus addresses a critical gap in discovery-stage gastrointestinal research by enabling absolute volumetric and spatial analysis of mucus secretion. This capability enhances predictive confidence in evaluating mucosal barrier function and the impact of molecular interventions, supporting risk-adjusted decisions in early target validation and mechanistic de-risking. The protocol's reproducibility and quantitative outputs position it as a foundational tool for pipeline advancement in mucosal biology and immunology portfolios.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, quantitative readouts, and mechanistic de-risking in gastrointestinal research workflows.