17 octobre 2025
Ce protocole décrit une méthode de production d’organoïdes cutanés contenant des follicules pileux à partir de cellules souches pluripotentes humaines induites à l’aide d’un système de culture planaire et physiologiquement pertinent à l’interface air-liquide pour reproduire l’architecture et la fonction de la peau.
Le champ de ma recherche est d’essayer de développer un modèle de dommages induits par les UVB afin de pouvoir étudier la pathogénicité d’une maladie rare, la xérodermie pigmentaire, ou plus précisément, la XPA. L’un des défis de ces modèles in vitro est qu’il faut un temps assez long à cultiver, environ quatre mois, et comme c’est encore un domaine assez jeune, il faut encore mieux les caractériser. Les avantages de ce modèle, soit le modèle 3D dérivé du hiPSC, la culture qui retrouve l’interface air-liquide, reproduit l’architecture de la peau humaine et possède un appendice cutané tel que la glande sébacée et les follicules pileux.
Pour commencer, préparez une solution molaire en ajoutant des granules d’hydroxyde de sodium dans un tube vide de 15 millilitres. Ajoutez de l’eau distillée aux granulés et faites un vortex sur le tube pour dissoudre les granulés. Filtrez la solution d’hydroxyde de sodium à 0,1 molaire à l’aide d’un filtre membrane de 0,2 micromètre de la taille d’un pore.
Sur glace, diluez une solution de collagène de type I avec 10 fois PBS, cinq millimolaires d’hydroxyde de sodium et de l’eau distillée pour ajuster le volume final. Distribuez 150 microlitres de cette solution de collagène dans chaque insert, placés dans une plaque standard à 12 puits. Incubez la plaque à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes pour permettre au gel de collagène de polymériser.
Ensuite, découpez des pointes P1000 avec un scalpel chauffé pour créer des pointes larges. Ensuite, utilisez les larges extrémités des orifices pour placer une structure kystique sélectionnée avec une petite quantité de médium sur le couvercle d’une boîte de Petri de 10 centimètres. Éliminez soigneusement les sous-produits de la structure à l’aide d’un scalpel stérile, tout en le stabilisant avec une pince stérile du côté opposé.
Écartez environ un millimètre des deux extrémités d’un organoïde cutané kystique adjacent à la première incision à l’aide d’un scalpel. À l’aide de pinces stériles, dépliez doucement la couche supérieure de la peau. Coupez le tissu en deux à quatre morceaux, selon la taille.
Ensuite, à l’aide de pinces stériles, déplacez chaque morceau sur un insert recouvert de collagène avec l’épiderme vers le haut. Ajoutez 600 microlitres d’OMM à chaque puits d’une plaque standard à 12 puits. Transférez l’insert sur la plaque à 12 puits contenant l’OMM.
Ensuite, placez la plaque dans un incubateur à 37 degrés Celsius contenant 5 % de dioxyde de carbone. Un seul agrégat cellulaire dense incorporant la majorité des cellules a été formé au zéro jour grâce à une manipulation soigneuse et une centrifugation. Une induction adéquate de l’épiderme de surface a conduit à la formation d’un épithélium fin et clair sur la couche externe de l’agrégat dès le troisième jour. Au 12e jour, une fine couche de cellules mésenchymates s’était accumulée à un pôle du kyste.
Les placodes et les piquettes capillaires sont devenues visibles entre les jours 50 et 80, après une co-induction épithéliale et mésenchymate. Les organoïdes dépourvus de placodes visibles présentaient un épithélium extrêmement fin et étaient exclus de la transition planaire. Seuls des kystes d’au moins cinq millimètres de diamètre avec des sous-produits polarisés ont été sélectionnés pour la génération d’organoïdes cutanés plans.
Les follicules pileux se sont allongés progressivement au cours des 27 jours de culture de l’interface air-liquide. Les glandes sébacées sont devenues visibles vers le jour 14 dans la configuration planaire. La pigmentation augmentait progressivement chez les organoïdes au fil du temps.
La coloration par hématoxyline et éosine a révélé un épithélium stratifié et une membrane basale le séparant du derme. La coloration par immunofluorescence a confirmé une architecture de type peau humaine dans des organoïdes cutanés plans.
Cette étude développe un modèle de lésion induite par les UVB afin d'explorer la xérodermie pigmentée, en mettant l'accent sur la génération d'organoïdes cutanés comprenant des follicules pileux à partir de cellules souches pluripotentes induites humaines. Les organoïdes sont cultivés en utilisant une interface air-liquide physiologiquement pertinente afin de reproduire efficacement l'architecture et la fonction de la peau humaine.
Les organoïdes cutanés plans dérivés de CIP humaines et portant des poils, cultivés à l'interface air-liquide, fournissent un système pertinent sur le plan physiologique in vitro pour étudier la biologie de la peau et la formation des annexes cutanées. Cette plateforme permet la modélisation prédictive des réponses tissulaires aux agressions environnementales et aux agents pharmacologiques, soutenant ainsi la recherche translationnelle et la réduction des risques mécanistiques dans le développement de produits dermatologiques. Cette approche renforce la confiance dans les portefeuilles de recherche en permettant la mise au point de modèles cutanés robustes et reproductibles pour la découverte précoce et l'évaluation préclinique.
Ce système d'organoïdes s'intègre de la découverte précoce à la recherche préclinique, permettant la vérification d'hypothèses, l'élucidation des voies biologiques et des analyses prédictives en biologie cutanée.