Name: Modèles murins d’épididymite induits par des motifs moléculaires associés aux agents pathogènes (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-12-12T13:50:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: Découvrez deux modèles chirurgicaux d'injection pour induire l'inflammation dans l'épididyme de souris. Ces méthodes permettent d'étudier les réponses régionales spécifiques dans le segment initial et le cauda.

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<ol><li>Hinton, B., Robaire, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Epididymis%5BTitle%5D)+AND+%22Knobil+and+Neill%27s+Physiology+of+Reproduction+Volume+1%22%5BJournal%5D)">The Epididymis.</a> Knobil and Neill's Physiology of Reproduction Volume 1. 1, 691-771 (2015).</li>
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<li>Pleuger, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+regional+distribution+of+resident+immune+cells+shapes+distinct+immunological+environments+along+the+murine+epididymis%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">The regional distribution of resident immune cells shapes distinct immunological environments along the murine epididymis.</a> eLife. 11, e82193(2022).</li>
<li>Battistone, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Region-specific+transcriptomic+and+functional+signatures+of+mononuclear+phagocytes+in+the+epididymis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Region-specific transcriptomic and functional signatures of mononuclear phagocytes in the epididymis.</a> Mol Hum Reprod. 26 (1), 14-29 (2020).</li>
<li>Mendelsohn, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+initial+segment+to+cauda%3A+A+regional+characterization+of+mouse+epididymal+CD11c%2B+mononuclear+phagocytes+based+on+immune+phenotype+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">From initial segment to cauda: A regional characterization of mouse epididymal CD11c+ mononuclear phagocytes based on immune phenotype and function.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 319 (6), C997-C1010 (2020).</li>
<li>Pleuger, C., Silva, E. J. R., Pilatz, A., Bhushan, S., Meinhardt, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+immune+response+to+infection+and+acute+inflammation+along+the+epididymis%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Immunol%22%5BJournal%5D)">Differential immune response to infection and acute inflammation along the epididymis.</a> Front Immunol. 11, 3125(2020).</li>
<li>Avellar, M. C. W., Ribeiro, C. M., Dias-da-Silva, M. R., Silva, E. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+search+of+new+paradigms+for+epididymal+health+and+disease%3A+Innate+immunity%2C+inflammatory+mediators%2C+and+steroid+hormones%5BTitle%5D)+AND+%22Andrology%22%5BJournal%5D)">In search of new paradigms for epididymal health and disease: Innate immunity, inflammatory mediators, and steroid hormones.</a> Andrology. 7 (5), 690-702 (2019).</li>
<li>Michel, V., Pilatz, A., Hedger, M. P., Meinhardt, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epididymitis%3A+Revelations+at+the+convergence+of+clinical+and+basic+sciences%5BTitle%5D)+AND+%22Asian+J+Androl%22%5BJournal%5D)">Epididymitis: Revelations at the convergence of clinical and basic sciences.</a> Asian J Androl. 17 (5), 756-763 (2015).</li>
<li>Nicholson, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Management+of+epididymo-orchitis+in+primary+care%3A+Results+from+a+large+UK+primary+care+database%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Gen+Pract%22%5BJournal%5D)">Management of epididymo-orchitis in primary care: Results from a large UK primary care database.</a> Br J Gen Pract. 60 (579), e407-e422 (2010).</li>
<li>Pilatz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+epididymitis+revisited%3A+Impact+of+molecular+diagnostics+on+etiology+and+contemporary+guideline+recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Urol%22%5BJournal%5D)">Acute epididymitis revisited: Impact of molecular diagnostics on etiology and contemporary guideline recommendations.</a> Eur Urol. 68 (3), 428-435 (2015).</li>
<li>Lang, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+functional+integrity+of+spermatozoa+is+compromised+as+a+consequence+of+acute+uropathogenic+E.+coli-associated+epididymitis%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Structural and functional integrity of spermatozoa is compromised as a consequence of acute uropathogenic E. coli-associated epididymitis.</a> Biol Reprod. 89 (59), 1-10 (2013).</li>
<li>Rusz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+urogenital+infections+and+inflammation+on+semen+quality+and+male+fertility%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Urol%22%5BJournal%5D)">Influence of urogenital infections and inflammation on semen quality and male fertility.</a> World J Urol. 30 (1), 23-30 (2012).</li>
<li>Schuppe, H. -C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Urogenital+infection+as+a+risk+factor+for+male+infertility%5BTitle%5D)+AND+%22Dtsch+Arztebl+Int%22%5BJournal%5D)">Urogenital infection as a risk factor for male infertility.</a> Dtsch Arztebl Int. 114 (19), 339-346 (2017).</li>
<li>Andrade, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipopolysaccharide-induced+epididymitis+modifies+the+transcriptional+profile+of+Wfdc+genes+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Lipopolysaccharide-induced epididymitis modifies the transcriptional profile of Wfdc genes in mice.</a> Biol Reprod. 104 (1), 144-158 (2021).</li>
<li>Andrade, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regional+modulation+of+toll-like+receptor+signaling+pathway+genes+in+acute+epididymitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Andrology%22%5BJournal%5D)">Regional modulation of toll-like receptor signaling pathway genes in acute epididymitis in mice.</a> Andrology. 12 (5), 1024-1037 (2024).</li>
<li>Silva, E. J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipopolysaccharide+and+lipotheicoic+acid+differentially+modulate+epididymal+cytokine+and+chemokine+profiles+and+sperm+parameters+in+experimental+acute+epididymitis%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Lipopolysaccharide and lipotheicoic acid differentially modulate epididymal cytokine and chemokine profiles and sperm parameters in experimental acute epididymitis.</a> Sci Rep. 8 (1), 103(2018).</li>
<li>Cheng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toll-Like+receptors+4+and+5+cooperatively+initiate+the+innate+immune+responses+to+uropathogenic+Escherichia+coli+infection+in+mouse+epididymal+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Toll-Like receptors 4 and 5 cooperatively initiate the innate immune responses to uropathogenic Escherichia coli infection in mouse epididymal epithelial cells.</a> Biol Reprod. 94 (3), 58(2016).</li>
<li>Stammler, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epididymitis%3A+Ascending+infection+restricted+by+segmental+boundaries%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Epididymitis: Ascending infection restricted by segmental boundaries.</a> Hum Reprod. 30 (7), 1557-1565 (2015).</li>
<li>Turner, T. T., Bomgardner, D., Jacobs, J. P., Nguyen, Q. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+of+segmentation+of+the+epididymal+interstitium+with+segmented+tubule+function+in+rats+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Reproduction%22%5BJournal%5D)">Association of segmentation of the epididymal interstitium with segmented tubule function in rats and mice.</a> Reproduction. 125 (6), 871-878 (2003).</li>
<li>Barrachina, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CX3CR1+deficiency+leads+to+impairment+of+immune+surveillance+in+the+epididymis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">CX3CR1 deficiency leads to impairment of immune surveillance in the epididymis.</a> Cell Mol Life Sci. 80 (1), 15(2022).</li>
<li>Klein, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+tissue-specific+damage+caused+by+bacterial+epididymo-orchitis+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Differential tissue-specific damage caused by bacterial epididymo-orchitis in the mouse.</a> Mol Hum Reprod. 26 (4), 215-227 (2020).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Pinces chirurgicales à extrémité émoussée et anguleuses &nbsp ;</td><td>Bonther</td><td>xtycga1012</td><td></td></tr><tr><td>Pinces chirurgicales angulées</td><td>Bonther</td><td>pwghv1012</td><td></td></tr><tr><td>Solution Blue Evans</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E2129</td><td></td></tr><tr><td>Pince à pince bulldog &nbsp ;</td><td>Bonther</td><td>jtkpqs1012</td><td></td></tr><tr><td>Chlorhexidine</td><td>Rioqu&iacute ; Mica</td><td>Riohex 0,25 %</td><td></td></tr><tr><td>Pinces chirurgicales courbes</td><td>Bonther</td><td>506e6e1012</td><td></td></tr><tr><td>Forme de stylo à découpeuse électrique</td><td>-</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>Seringue Hamilton</td><td>Hamilton</td><td>80400</td><td></td></tr><tr><td>Louppeur de bandeau & nbsp ;</td><td>OptiVISOR</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>Kétamine</td><td>Venco Santé Animale</td><td>Ketalex</td><td></td></tr><tr><td>LPS&nbsp ; extrait d’E. coli 055 :B55</td><td>Invivogen</td><td>Tlrl-pb5lps</td><td></td></tr><tr><td>LTA de Staphylococcus aureus</td><td>Invivogen</td><td>Tlrl-pslta</td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguille</td><td>Bonther</td><td>8pihbf1012</td><td></td></tr><tr><td>Suture chirurgicale taille 5/0</td><td>Shalon Medical</td><td>N550CTI20</td><td></td></tr><tr><td>Solution saline stérile</td><td>-</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>Pinces chirurgicales droites</td><td>Bonther</td><td>ejaiuz1012</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Syntec</td><td>Xilazin</td><td></td></tr></tbody></table>

modèles murins d’épididymite induits par des motifs moléculaires associés aux agents pathogènes

Mouse Models of Epididymitis Induced by Pathogen-Associated Molecular Patterns

Ici, deux modèles distincts d’injection chirurgicale pour les stimuli inflammatoires dans le segment initial (injection interstitielle) et l’épididymide de la queue de la queue (injection intravasale) chez la souris sont décrits. La première déclenche des réponses inflammatoires dans l’épididyme proximal, tandis que la seconde les déclenche dans l’épididyme distal.
L’injection interstitielle est réalisée par une incision dans l’...

Modèles murins d’épididymite induits par des motifs moléculaires associés aux agents pathogènes

Epididymitis is a highly prevalent disease in the outpatient urologic clinic and a relevant factor in male infertility. Bacterial infections, including ...

Nous étudions l’impact de l’inflammation sur la physiologie de l’épididyme dans la fertilité masculine. Injection compartimentée précise d’inducteurs inflammatoires sans dommage. Le canal épididymique dans les modèles murins nécessite un mélange avancé de compétences chirurgicales et de formation.Pour commencer, placez l’animal anesthésié en position couchée sur le champ chirurgical. À l’aide d’un stylo coupe-roi électrique, effectuez une trichotomie de l’abdomen de la souris pour éliminer complètement le pelage. Ensuite, utilisez du coton stérile imbibé d’une solution de chlorhexidine à 0,25 %.Et ensuite avec de l’alcool pour pratiquer l’abspsie abdominale. Avec un scalpel taille 15, réalisez une incision verticale d’environ quatre millimètres sur le côté droit de la paroi abdominale. Maintenant, séparez doucement la peau avec des pinces chirurgicales émoussées en angle.Ensuite, avec le même scalpel, réalisez une autre incision verticale d’environ quatre millimètres sur le péritoine sur le côté de la première incision. Soulevez délicatement l’épididyme dans les testicules depuis la cavité abdominale en poussant doucement le côté droit du scrotum. À l’aide de pinces chirurgicales courbées, tirez doucement le tissu adipeux blanc épididyme pour localiser le segment initial de l’épididyme.À l’aide du tissu adipeux blanc épididymaire, exposez le segment initial au site de l’incision. Ensuite, positionnez la seringue Hamilton préchargée avec la solution d’injection à un angle d’environ 90 degrés parallèle au segment numéro un du segment initial. Insérez soigneusement l’aiguille dans l’espace interstitiel avec le biseau orienté vers le bas.Ensuite, positionnez les pinces chirurgicales courbes au site d’insertion de l’aiguille et pincez doucement la capsule épididymale et l’aiguille. Appuyez lentement sur le ventouse de la seringue, jusqu’à ce que toute la solution stimulus ait été injectée. En maintenant les pinces chirurgicales courbées en place, retirez soigneusement l’aiguille et relâchez les pinces courbées après environ 30 secondes.Ensuite, en utilisant le tissu adipeux blanc épididymaire, ramenez doucement le tissu testiculaire vers la cavité abdominale. Identifiez le péritoine et fermez-le en réalisant deux points de suture à l’aide d’un porte-aiguille et d’une suture chirurgicale de taille cinq, puis fermez l’incision cutanée avec deux points de suture. Après l’opération, observez la souris pour assurer une récupération postopératoire appropriée.Après l’administration de l’anesthésie, placez la souris en position couchée sur le champ chirurgical. Placez l’index et le pouce sous le scrotum pour palper et confirmer la position des testicules et de l’épididyme. Si nécessaire, massez doucement les côtés de l’abdomen vers le scrotum pour guider les testicules et l’épididyme en position.À l’aide d’un stylo coupe-eau électrique, effectuez une trichotomie du scrotum pour éliminer complètement les poils et désinfectez la zone avec du coton stérile imbibé dans une solution de chlorhexidine à 0,25 %, puis à l’alcool. Avec l’index et le pouce sous le scrotum, étirez doucement la peau du scrotum. À l’aide d’un scalpel taille 15, réalisez une incision verticale d’environ deux millimètres sur la partie médiale du scrotum.Maintenant, déplacez doucement le testicule et l’épididyme gauches vers la cavité abdominale, tout en gardant le testicule droit et l’épididyme dans le scrotum. Avec l’index et le pouce positionnés sous le testicule droit et l’épididyme, maintenez la peau scrotale délicatement étirée. Ensuite, à l’aide de pinces chirurgicales à extrémité émoussée en angle, ouvrez et fermez soigneusement les extrémités au-dessus du fascia spermatique interne pour rompre le fascia spermatique interne et la tunique vaginale.Ensuite, soulager la pression sur l’index et le pouce et insérer la pince chirurgicale inclinée par l’ouverture de la tunique vaginale vers la base du scrotum. À l’aide de la pince, tirez délicatement la graisse épididymale distale pour localiser l’épididyme de la queue. Localisez maintenant le canal déférent et positionnez les pinces chirurgicales droites en dessous.Placez la pince à pince bulldog sur le canal déférant, en assurant suffisamment d’espace entre l’épididyme de la queue et la pince. Ensuite, positionner la seringue Hamilton préchargée avec la solution d’injection à un angle d’environ 10 à 15 degrés parallèle au canal déférant, et insérer l’aiguille dans le canal déférent avec le biseau orienté vers le haut. Pressez doucement les pinces chirurgicales droites pour libérer le canal déférent et appuyez lentement sur le plongeur de la seringue pour injecter toute la solution stimulus.Maintenant, retirez les pinces chirurgicales droites. À l’aide de pinces chirurgicales courbes, pincez doucement la zone autour du site d’insertion de l’aiguille, puis retirez délicatement l’aiguille de la seringue. Après environ 30 secondes, retirez les pinces chirurgicales courbes et la pince à pince bulldog, puis remettez doucement le canal déférent sur le scrotum.Ensuite, identifiez la tunique vaginale et refermez-la d’un point de suture à l’aide d’un porte-aiguille et d’une suture chirurgicale taille cinq-zéro. À l’aide de l’index, poussez doucement le testicule droit et l’épididyme vers l’abdomen et déplacez le testicule et l’épididyme gauches dans le scrotum. Enfin, fermez l’incision cutanée scrotale avec deux points de suture à l’aide d’un porte-aiguille et des points chirurgicaux de taille 5-0, puis observez la souris pour assurer une bonne récupération postopératoire.L’injection interstitielle dans le segment initial a conduit à limiter le colorant bleu Evans injecté principalement au premier segment pendant jusqu’à 30 minutes après l’injection, puis à se diffuser dans les segments voisins du segment initial et de l’épididyme capule. L’injection intravasale dans le canal déférent a confiné le colorant bleu Evans dans la lumière du segment 10 pendant jusqu’à 30 minutes après l’injection. Des photomicrographies histologiques ont confirmé que les injections de sérum sérum contrôle n’ont pas modifié la morphologie de l’épididyme 72 heures après le traitement.L’injection interstitielle de LPS dans le segment initial a induit un œdème interstitiel et des infiltrations intenses de cellules immunitaires interstitielles, intraépithéliales et intraluminales 72 heures après le traitement. L’injection intervasale de LPS ou de LTA dans l’épididyme de la queue a produit un œdème interstitiel et des infiltrations de cellules immunitaires dans les compartiments interstitiels et intraluminaux 72 heures après le traitement. Manque de modèles animaux reproductibles étudiant l’inflammation épididymale localisée et son impact sur la fertilité masculine.L’injection régionale directe de substances chimiques inflammatoires permet une analyse précise des réponses immunitaires spécifiques à la région dans les résultats de l’épididyme.

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Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Source : Conover, M. S., et al., J. Établissement et caractérisation des infections urinaires et de la maladie des urines dans un modèle murin. J. Vis. Exp. (2015)Cette vidéo montre la procédure pour assembler et implanter un cathéter transurétral chez une souris femelle, suivie d’une inoculation bactérienne pour établir une infection urinaire associée au cathéter et étudier les interactions hôte-pathogène médiées par biofilm.

Infection urinaire associée au cathéter dans un modèle murin

Infection de la prostate peut être un facteur contribuant à la médiation douleur pelvienne chez la prostatite chronique. Nous décrivons la procédure de préparation de l'inoculum bactérien standardisé, l'instillation de bactéries dans l'urètre chez les souris mâles et une méthodologie pour mesurer l'allodynie tactile chez la souris au fil du temps.

Mesure de l&#39;allodynie tactile dans un modèle murin de la prostatite bactérienne

Citrobacter rodentium infection constitue un modèle précieux pour l'étude des infections bactériennes entériques ainsi que l'hôte réponses immunitaires et la colite chez la souris. Ce protocole décrit la mesure du intégrité de la barrière, la charge de pathogènes et les dommages histologiques permettant la caractérisation approfondie des contributions pathogène et de l'hôte à la colite infectieuse murin.

La<em&gt; Citrobacter rodentium</emModèle de souris&gt;: Étudier Contributions des agents pathogènes et l&#39;hôte de la colite infectieuse

Neisseria meningitidis est un agent pathogène humain spécifique qui infecte les vaisseaux sanguins. Dans ce protocole, les microvaisseaux humains sont introduites dans une souris par greffage de peau humaine sur les souris immunodéprimées. Les bactéries adhèrent largement aux navires humains, entraînant des dommages et le développement vasculaire du purpura généralement observée dans des cas humains.

Souris humanisée modèle pour étudier les infections bactériennes Cibler la microvascularisation

Les modèles animaux se sont révélés être des outils précieux dans la définition de mécanismes spécifiques hôtes et pathogènes qui contribuent au développement de l'inflammation chronique. Nous décrivons ici un modèle murin d'infection par voie orale avec l'agent pathogène humain Porphyromonas gingivalis et méthodologies de détail pour évaluer la progression de l'inflammation au niveau des sites locaux et systémiques.

Un modèle de souris pour l&#39;inflammation chronique induite par pathogène sur les sites locaux et systémiques

La capacité à modéliser les infections des voies urinaires (IVU) est cruciale pour pouvoir comprendre la pathogenèse bactérienne et favoriser le développement de nouvelles thérapies. L’objectif de ce travail est de démontrer des modèles murins d’infections urinaires expérimentales et d’infections urinaires associées à un cathéter qui récapitulent et prédisent les résultats observés chez l’homme.

Création et caractérisation de l&#39;UTI et Cauti dans un modèle de souris

Nous mesurons activation périgénitale mécanique de la sensibilité et des mastocytes dans la prostate des hommes C57BL / 6 qui a subi un début de paradigme du stress de la vie - la séparation maternelle néonatale, afin d'induire un modèle préclinique de syndrome chronique de la prostatite chronique / de douleurs pelviennes.

Évaluation de la sensibilité et de la prostate péri-Mast Cell Activation dans un modèle murin de la séparation maternelle néonatale

Le modèle d’inoculation de la carte de pied est un outil précieux pour caractériser les réponses neuroinflammatoires induites par le virus in vivo. En particulier, il fournit une évaluation claire de la cinétique virale et des processus immunopathologiques associés initiés dans le système nerveux périphérique.

Modèle d’inoculation de tapis de souris pour étudier les réponses neuroinflammatoires virales induites

L’encéphalomyélite auto-immune expérimentale est l’un des modèles murins les plus utilisés de la sclérose en plaques. Dans le protocole actuel, les souris C57BL/6J des deux sexes sont immunisées avec le peptide glycoprotéique oligodendrocytaire de myéline, ce qui entraîne principalement une parésie ascendante de la queue et des membres. Nous discutons ici du protocole d’induction et d’évaluation de l’EAE.

Modélisation de la sclérose en plaques chez les deux sexes : encéphalomyélite auto-immune expérimentale induite par MOG35-55

La naissance prématurée (accouchement &lt; 37 semaines) est un problème de santé mondial urgent, avec des options de prévention et de traitement sous-optimales. Nous présentons un modèle murin d’accouchement prématuré induit par une infection bactérienne vaginale ascendante et décrivons comment analyser la morbidité et la mortalité néonatales qui en résultent.

Modélisation de l’infection vaginale ascendante, de l’accouchement prématuré et de la morbidité néonatale chez la souris

Ce protocole décrit la génération d’un modèle murin à base d’organoïdes prostatiques cultivé en 2D. Elle comprend la dissociation organoïde, l’ensemencement cellulaire, la différenciation, l’évaluation de l’intégrité épithéliale et l’infection in vitro par Escherichia coli uropathogène. Le modèle offre une accessibilité apicale et convient à l’étude des interactions hôte-pathogène, surmontant ainsi les limites des systèmes organoïdes 3D traditionnels.

Génération d’un modèle à base d’organoïdes prostatiques de souris pour étudier les interactions hôte-pathogène

Découvrez deux modèles chirurgicaux d'injection pour induire l'inflammation dans l'épididyme de souris. Ces méthodes permettent d'étudier les réponses régionales spécifiques dans le segment initial et le cauda.

Modèles murins d’épididymite induits par des motifs moléculaires associés aux agents pathogènes

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