Name: Protocole d’empilement de la mise au point pour la photographie d’insectes haute résolution (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-06-02T13:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 43 s
Description: Apprenez l'empilement de mise au point pour photographier des insectes en haute résolution avec un système modulaire à faible coût. Cette méthode standardisée produit des images de qualité diffractionnelle pour la taxonomie et la numérisation de la biodiversité.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

<ol>
	<li>Aldhawi, H. A., Abulsba, K. S. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+significance+of+insect+biodiversity+on+ecosystem+functioning+and+stability:+a+review.">The significance of insect biodiversity on ecosystem functioning and stability: a review.</a> Ebers J Med Publ. 5, 140-150 (2024).</li><li>S&#225;nchez-Bayo, F., Wyckhuys, K. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Worldwide+decline+of+the+entomofauna:+a+review+of+its+drivers.">Worldwide decline of the entomofauna: a review of its drivers.</a> Biol Conserv. 232, 8-27 (2019).</li><li>Wagner, D. L. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insect+declines+in+the+Anthropocene.">Insect declines in the Anthropocene.</a> Annu Rev Entomol. 65 (1), 457-480 (2020).</li><li>Slade, E. M., Ong, X. R. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+future+of+tropical+insect+diversity:+strategies+to+fill+data+and+knowledge+gaps.">The future of tropical insect diversity: strategies to fill data and knowledge gaps.</a> Curr Opin Insect Sci. 58, 101063 (2023).</li><li>Fujisawa, T., Noguerales, V., Vogler, A. P. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Image-based+taxonomic+classification+of+bulk+insect+biodiversity+samples+using+deep+learning+and+domain+adaptation.">Image-based taxonomic classification of bulk insect biodiversity samples using deep learning and domain adaptation.</a> Syst Entomol. 48 (3), 387-401 (2023).</li><li>O'Kane, W. C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+in+insect+photography.">Methods in insect photography.</a> J Econ Entomol. 5 (1), 54-61 (1912).</li><li>Borror, D. J., White, R. E. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> A field guide to insects: America north of Mexico. 19, (1970).</li><li>Cheng, D., Wang, D., Yao, C., Liu, Y., Dai, X., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thin+and+large+depth-of-field+compound-eye+imaging+for+close-up+photography.">Thin and large depth-of-field compound-eye imaging for close-up photography.</a> Photonics. 11 (2), 107 (2024).</li><li>Brecko, J., Mathys, A., Dekoninck, W., Leponce, M., VandenSpiegel, D., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Focus+stacking:+comparing+commercial+top-end+set-ups+with+a+semi-automatic+low+budget+approach.+A+possible+solution+for+mass+digitization+of+type+specimens.">Focus stacking: comparing commercial top-end set-ups with a semi-automatic low budget approach. A possible solution for mass digitization of type specimens.</a> ZooKeys. (464), 1-23 (2014).</li><li>Mertens, J. E. J., Van Roie, M., Merckx, J., Dekoninck, W. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+low+cost+compact+cameras+with+focus+stacking+functionality+in+entomological+digitization+projects.">The use of low cost compact cameras with focus stacking functionality in entomological digitization projects.</a> ZooKeys. 712, 141-154 (2017).</li></ol>

<table><tbody><tr><td>Table de soutien</td><td>De préférence 3 modules</td><td>Base stable pour l’ensemble de l’installation</td><td>150</td></tr><tr><td>Table antivibration</td><td>Coutumes</td><td>Minimise les vibrations lors de la capture d’image</td><td>3,200</td></tr><tr><td>Tunnel noir cylindrique</td><td>Coutumes</td><td>Contrôle la direction de la lumière</td><td>350</td></tr><tr><td>Réduit les réflexions pour les petits sujets</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rack de mise au point Novoflex CASTEL-MICRO (rail macro)</td><td>Moteur de marche à pas &ndash ; contrôlé, unité de contrôle, câble réseau, adaptateur Euro AC</td><td>Mise au point de précision submicronique (0,2 & micro ; m steps) ;</td><td>3,000</td></tr><tr><td>Automatise le mouvement de la caméra</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rotative XYZ</td><td>Fixation réglable</td><td>Alignement et positionnement méticuleux des sujets</td><td>500</td></tr><tr><td>Caméra</td><td>Sony Alpha 7R IV (61 MP plein format)</td><td>Capture d’image haute résolution</td><td>3,000</td></tr><tr><td>Éclairage</td><td>2 et fois ; Godox SK300II</td><td>Éclairage uniforme, sans ombre ;</td><td>400</td></tr><tr><td>Éclairage</td><td>2 et fois ; Godox QT600II</td><td>Haute vitesse avec courte durée de flash</td><td>1400</td></tr><tr><td>Supports flash</td><td>3 supports réglables</td><td>Positionnement flexible des lumières</td><td>100</td></tr><tr><td>Modificateur de lumière</td><td>Diffuseur</td><td>Adoucit la lumière et réduit les ombres agressives</td><td>50</td></tr><tr><td>Contexte</td><td>&ldquo; Trou noir » velours</td><td>Élimine les reflets, offre un arrière-plan uniforme</td><td>200</td></tr><tr><td>Objectifs de microscope</td><td>Mitutoyo Plan Apo Infinity Corrigé : 5 fois ;</td><td>Grossissement de haute qualité pour microstructures</td><td>1,000</td></tr><tr><td>Mitutoyo Plan Apo Infinity corrigé : 7,5 & fois ;</td><td>2,000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mitutoyo Plan Apo Infinity Corrigé : 10 et fois ;</td><td>1,400</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mitutoyo Plan Apo Infinity Corrigé : 20 et fois ;</td><td>5,000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Système de tubes d’objectif</td><td>Utilisation directe de la caméra avec objectifs Mitutoyo M-Plan (2x, 5x, 7,5x, 10x, 20x)</td><td>Couplage des objectifs de microscope à la caméra</td><td>400</td></tr><tr><td>Adaptateur</td><td>Monture Sony E vers baïonnette universelle NOVOFLEX A</td><td>Connexion mécanique de la caméra et du système optique</td><td>300</td></tr><tr><td>Objectif macro</td><td>Venus Optics Laowa 100 mm f/2.8 2 fois ; Ultra Macro APO (monture Sony E-mount)</td><td>Imagerie de spécimens plus grands à fort grossissement</td><td>550</td></tr><tr><td>Déclencheur</td><td>Détenteur flash</td><td>Synchronise le flash avec l’obturateur de l’appareil photo</td><td>50</td></tr><tr><td>Ordinateur</td><td>Ordinateur portable ASUS ou Alienware, &ge ; 128 Go de RAM, processeur haute performance</td><td>Traitement et stockage d’images</td><td>3,000</td></tr><tr><td>Supports de stockage</td><td>2 et fois ; SD 256 Go, lecteur de carte SD rapide</td><td>Stockage et transfert d’images sécurisés à grand volume</td><td>200</td></tr><tr><td>Accessoires</td><td>Souris de jeu</td><td>Précision lors du montage et de la navigation</td><td>50</td></tr><tr><td>Accessoires</td><td>Wacom One (tablette graphique)</td><td>Contrôle fin lors du nettoyage et de l’édition d’images</td><td>500</td></tr><tr><td>< fort > coût total </fort ></td><td></td><td></td><td>< fort > 26 800< par rapport ></td></tr></tbody></table>

protocole d’empilement de la mise au point pour la photographie d’insectes haute résolution

Focus Stacking Protocol for High-Resolution Insect Photography

Protocole d’empilement de la mise au point pour la photographie d’insectes haute résolution

Here, we present a protocol to acquire high resolution, extended depth of field images of insect specimens by photographic focus stacking using a modular ...

focus-stacking-protocol-for-high-resolution-insect-photography

Research

Recherche

JoVE Journal

Environment

Environnement

Ce document illustre l'utilisation d'un balayage rapide microscope confocal à un comportement cellulaire de l'image directement à travers la pupe. En laissant la coque de nymphose intacte, cette méthode permet l'observation et la mesure des processus dynamiques de cellule à un stade de développement de la drosophile qui est difficile à étudier directement.

Imagerie à travers le cas de la nymphe<em&gt; Drosophila melanogaster</em

La microscopie à fluorescence à base de feuilles de lumière est l’outil le plus précieux en biologie du développement. Un problème majeur dans les études comparatives est la variance ambiante. Notre protocole décrit un cadre expérimental pour l’imagerie en direct simultanée de plusieurs spécimens et, par conséquent, aborde cette question de manière proactive.

Imagerie en direct simultanée d’embryons d’insectes multiples dans des microscopes à fluorescence à feuille de lumière à base de chambre d’échantillonnage

Ce protocole décrit les applications de l’immobilisation de l’échantillon à l’aide de caillots de Fibrine, limitant la dérive et permettant l’ajout et le lavage de réamen pendant l’imagerie en direct. Les échantillons sont transférés à une goutte de Fibrinogen contenant du milieu de culture à la surface d’un coverslip, après quoi la polymérisation est induite par l’ajout de thrombine.

Applications de l’immobilisation des tissus drosophiles avec caillots de fibrine pour l’imagerie en direct

Le protocole décrit ici la mesure de l’organisation spatiale des axes visuels des yeux des mouches domestiques, cartographiés par un dispositif automatique, en utilisant le phénomène pseudopieux et le mécanisme pupillaire des cellules photoréceptrices.

Cartographie automatisée de l’espace visuel des yeux composés de mouches domestiques

La membrane basale est essentielle à la morphogenèse des tissus et des organes pendant le développement. Pour mieux comprendre les mécanismes conduisant à un placement correct de cette structure, le protocole présenté décrit des méthodes pour visualiser et caractériser le trafic intracellulaire et la sécrétion de protéines de la membrane basale dans les cellules épithéliales en utilisant la microscopie confocale et super-résolution.

Imagerie confocale et super-résolution du trafic intracellulaire polarisé et de la sécrétion de protéines de la membrane basale au cours de l’oogenèse de la drosophile

Ici, nous présentons un flux de travail rapide et peu coûteux pour l’imagerie haute résolution des yeux de la drosophile adulte afin de quantifier les motifs et les défauts de croissance. Nous décrivons notre protocole de préparation d’échantillons par montage ponctuel, acquisition d’images haute résolution et analyse d’images.

Un flux de travail simple et rapide pour la quantification des structures externes de la drosophile adulte

Ce protocole décrit l’imagerie microfluidique de C. elegans tout au long du développement post-embryonnaire.

Imagerie haute résolution de C. elegans à tous les stades larvaires

Le blanchiment itératif spectral étend la multiplexité (IBEX) s’appuie sur la technique IBEX de base en ajoutant un blocage de l’héparine pour minimiser la liaison non spécifique et en exploitant la détection spectrale avec démélange informatique pour supprimer l’autofluorescence. Cette approche accélère l’acquisition d’images tout en réduisant les sources d’arrière-plan, ce qui permet des analyses protéomiques spatiales robustes et multi-rondes à paramètres élevés.

Imagerie High-Plex à l’aide de la microscopie confocale spectrale pour minimiser la fluorescence tissulaire non spécifique

Ce protocole détaille les applications avancées d’imagerie et la gestion des ressources partagées d’un système de microscope confocal à balayage laser intégré à un détecteur à réseau multiplexé pour l’imagerie cellulaire et subcellulaire à haute résolution. Ce flux de travail permet l’imagerie multimodale de la confocale à la super-résolution (~120 nm) sur une seule plateforme, rendant la visualisation à l’échelle nanométrique plus accessible.

Imagerie à super-résolution et gestion partagée : un protocole pour la microscopie confocale avec détection multiplex

Maladie corticale du hêtre est initiée par l'alimentation des activités de la cochenille du hêtre qui créent des points d'entrée fongiques dans l'écorce. Les arbres qui sont résistantes à l'insecte d'échelle sont également résistantes aux maladies. Ici, nous présentons le protocole que nous avons développé pour dépister hêtres individuels pour la résistance à la cochenille.

Une technique à l&#39;écran hêtre américain pour la résistance à la cochenille Hêtre (<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Apprenez l'empilement de mise au point pour photographier des insectes en haute résolution avec un système modulaire à faible coût. Cette méthode standardisée produit des images de qualité diffractionnelle pour la taxonomie et la numérisation de la biodiversité.

Protocole d’empilement de la mise au point pour la photographie d’insectes haute résolution

Explorer plus de vidéos