Name: Un modèle chirurgical de plaie cutanée chez le rat : une approche pour les études de cicatrisation des plaies et l’évaluation des biomatériaux (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-21T13:55:00.000+00:00
Duration: 4 min 54 s
Description: Découvrez un protocole chirurgical pour créer des plaies cutanées carrées chez le rat. Cette méthode standardisée permet de personnaliser la taille et la géométrie des lésions pour étudier la cicatrisation et évaluer les biomatériaux.

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	<li>Lin X, Lai Y. Skin scarring: mechanisms and therapies. Int J Mol Sci. 2024;25(3):1458.</li>
	<li>Desjardins-Park HE, Mascharak S, Longaker MT, Wan DC. Endogenous mechanisms of craniomaxillofacial repair: toward novel regenerative therapies. Front Oral Health. 2021;2:676258.</li>
	<li>Han G, Ceilley R. Chronic wound healing: a review of current management and treatments. Adv Ther. 2017;34(3):599-610.</li>
	<li>Benito-Mart&#237;nez S, P&#233;rez-K&#246;hler B, Rodr&#237;guez M, Izco JM, Recalde JI, Pascual G. Wound healing modulation through the local application of powder collagen-derived treatments in an excisional cutaneous murine model. Biomedicines. 2022;10(5):960.</li>
	<li>Elliott S, Wikramanayake TC, Jozic I, Tomic-Canic M. A modeling conundrum: murine models for cutaneous wound healing. J Invest Dermatol. 2018;138(4):736-740.</li>
	<li>Chen JS, Longaker MT, Gurtner GC. Murine models of human wound healing. Methods Mol Biol. 2013;1037:265-274.</li>
	<li>Rowland MB, Moore PE, Bui C, Correll RN. Assessing wound closure in mice using skin punch biopsy. STAR Protoc. 2023;4(1):101989.</li>
	<li>De Moura Estev&#227;o LR, et al. Morphological evaluation of wound healing events in the excisional wound healing model in rats. Bio-protocol. 2019;9(13):e3285.</li>
	<li>Ansell DM, Campbell L, Thomason HA, Brass A, Hardman MJ. A statistical analysis of murine incisional and excisional acute wound models. Wound Repair Regen. 2014;22(2):281-287.</li>
	<li>Masson-Meyers DS, Andrade TAM, Caetano GF, Guimaraes FR, Leite MN, Leite SN, et al. Experimental models and methods for cutaneous wound healing assessment. Int J Exp Pathol. 2020;101(1-2):21-37.</li>
	<li>Chen Y, Chen X, Zhou Q. Different effects of a perioperative single dose of dexamethasone on wound healing in mice with or without sepsis. Front Surg. 2023;10:927168.</li>
	<li>Zhao J, Zhang S, Gong Z, Mao W, Bao W, Li Q, et al. NLRP3: a key regulator of skin wound healing and macrophage-fibroblast interactions in mice. Cell Commun Signal. 2025;23:55.</li>
	<li>Liu T, Qiu C, Ben C, Li H, Zhu S. One-step approach for full-thickness skin defect reconstruction in rats using minced split-thickness skin grafts with Pelnac overlay. Burns Trauma. 2019;7:19.</li>
	<li>Nayak BS, Maiya A, Kumar P. Influence of Helium-Neon laser photostimulation on excision wound healing in Wistar rats. Online J Biol Sci. 2007;7:89-92.</li>
	<li>Adhirajan N, Shanmugasundaram N, Shanmuganathan S, Babu M. Collagen-based wound dressing for doxycycline delivery: in vivo. evaluation in an infected excisional wound model in rats. J Pharm Pharmacol. 2009;61(12):1617-1623.</li>
	<li>Goorani S, Zangeneh MM, Koohi MK, Seydi N, Zangeneh A, Souri N, Hosseini MS. Assessment of antioxidant and cutaneous wound healing effects of Falcaria vulgaris aqueous extract in Wistar male rats. Comp Clin Pathol. 2019;28(2):435-445.</li>
	<li>Yassine KA et al. A topical ointment formulation containing powder of Lawsonia inermis leaves accelerates excision wound healing in Wistar rats. Vet World. 2020;13(7):1280-1287.</li>
	<li>Kuma DN, et al. Wound healing properties and antimicrobial effects of parkia clappertoniana keay fruit husk extract in a rat excisional wound Model. Biomed Res Int. 2022;2022:9709365.</li>
	<li>Wu AY, et al. Comparison of skin incision healing in swine made with a cold steel scalpel, a standard electrosurgical blade, and a novel tissue dissector. Med Res Innov. 2017;1(5):1000124.</li>
	<li>Ahmadi H, et al. Photobiomodulation-preconditioned diabetic stem cell transplantation accelerates ischemic wound healing in diabetic rats. Stem Cell Res Ther. 2020;11(1):494.</li>
	<li>Zhou Q, et al. Porous sodium carboxymethylamide microspheres for hemostasis and skin wound healing. ACS Appl Bio Mater. 2025;8(4):3076-3085.</li>
	<li>Corr&#234;a JMX, et al. Treatment of surgical wounds in rats with copaiba oil-resin (Copaifera reticulata). Rev Bras Ci&#234;nc Vet. 2021;28(4):184-189.</li>
	<li>Huang L, et al. Topical administration of acyl homoserine lactone improves epithelialization of cutaneous wounds in hyperglycemic rats. PLoS One. 2016;11(7):e0158647.</li>
	<li>Dunn L, Prosser HC, Tan JT, Vanags LZ, Ng MK, Bursill CA. Murine model of wound healing. J Vis Exp. 2013;(75):e50265.</li>
	<li>Davidson JM, Yu F, Opalenik SR. Immobilization strategies to overcome wound contraction in experimental animal models. Adv Wound Care. 2013;2(4):142-148.</li>
	<li>Zhang Y, et al. Establishment and translational evaluation of animal models for skin wound healing: a systematic review. Front Physiol. 2026;17:1800001.</li>
	<li>Rizzo AE, Beckett LA, Baier BS, Isseroff RR. The linear excisional wound: an improved model for human ex vivo wound epithelialization studies. Skin Res Technol. 2012;18(1):125-132.</li>
	<li>Can H, et al. Clinical, histopathological, and immunohistochemical investigations of the effects of Aloe vera (Aloe barbadensis Miller) on open wound healing in rats. Pak Vet J. 2025;45(3):1135-1145.</li>
	<li>Shehasina KA, et al. Comparison of manual and digital planimetry techniques in full-thickness cutaneous wounds in dogs. Int J Vet Sci Anim Husb. 2024;9(2):603-607.</li>
	<li>Gill R, Poojar B, Bairy LK, Praveen KSE. Comparative evaluation of wound healing potential of Manuka and Acacia honey in diabetic and non-diabetic rats. J Pharm Bioallied Sci. 2019;11(2):116-126.</li>
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<table><tbody><tr><td>Alcohol (ethanol 70%)</td><td>Din&acirc;mica</td><td>P.01.0024.006.06.81</td><td>Antisepsis</td></tr><tr><td>Anatomical forceps</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F3892</td><td>Acier inoxydable</td></tr><tr><td>Bandage</td><td>N'importe quel</td><td>Non applicable</td><td>protection des plaies</td></tr><tr><td>Caliper</td><td>Mitutoyo</td><td>530-104</td><td>Délimitation de la plaie</td></tr><tr><td>Chlorhexidine 0.2% aqueous antiseptic solution</td><td>Riohex</td><td>Non applicable</td><td>Antisepsis</td></tr><tr><td>CO2 chamber</td><td>Bonther</td><td>D149F1LYSZ</td><td>Anesthetic induction&nbsp;</td></tr><tr><td>Crepe bandage&nbsp;</td><td>Cremer</td><td>818765</td><td>15 cm x 1,25 m</td></tr><tr><td>Disposable latex gloves</td><td>Descarpak</td><td>e0530101</td><td>Non stérile</td></tr><tr><td>Gauze pad&nbsp;</td><td>Cremer</td><td>819342</td><td>7,5 x 7,5 cm</td></tr><tr><td>Hypodermic syringe</td><td>Dercarpack&nbsp;</td><td>e0324201</td><td>1 mL avec aiguille</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>Image J</td><td>https://imagej.net/ij/</td><td>Mesure planimétrique</td></tr><tr><td>ImitoWound&nbsp;</td><td>ImitoWound</td><td>https://imito.io/pt/imitowound</td><td>Mesure planimétrique</td></tr><tr><td>Interfolded paper towel&nbsp;</td><td>Scott Smart</td><td>48260</td><td>Nettoyage général</td></tr><tr><td>Isoflurane&nbsp;</td><td>Crist&aacute;lia</td><td>7.89668E+12</td><td>Anesthésie par inhalation</td></tr><tr><td>Latex gloves for procedure</td><td>Latex gloves for procedure Latex gloves for procedure</td><td></td><td>Équipement de protection individuelle</td></tr><tr><td>Liquid soap</td><td>N'importe quel</td><td>Non applicable</td><td>Nettoyage de la zone de la plaie</td></tr><tr><td>Mayo scissors, straight, sharp/sharp</td><td>Fine Science Tools</td><td>14001-12</td><td>Acier inoxydable</td></tr><tr><td>Millimeter ruler</td><td>N'importe quel</td><td>Non applicable</td><td></td></tr><tr><td>Morphine sulfate&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8777</td><td>Solution injectable 1 mg/mL</td></tr><tr><td>Paper sheet&nbsp;</td><td>N'importe quel</td><td>Non applicable</td><td></td></tr><tr><td>Permanent marker</td><td>N'importe quel</td><td>Non applicable</td><td>Marquage cutané</td></tr><tr><td>Povidone-iodine</td><td>Rioquimica</td><td>ZK48BN72E</td><td>Antiseptique</td></tr><tr><td>Scalpel blade no. 23</td><td>Descarpak</td><td>740801</td><td>Acier inoxydable</td></tr><tr><td>Scalpel handle no. 4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Non applicable</td><td>Acier inoxydable</td></tr><tr><td>Stainless steel razor blade</td><td>Wilkinson</td><td>N/A</td><td>Épilation</td></tr><tr><td>Sterile surgical glove</td><td>Descarpak</td><td>e0212101</td><td>Stérile</td></tr><tr><td>Surgical mask</td><td>N'importe quel</td><td>Non applicable</td><td>Non stérile</td></tr><tr><td>Tramadol hydrochloride</td><td>Uni&atilde;oQu&iacute;mica</td><td>7.89601E+12</td><td>Solution injectable 50 mg/mL</td></tr><tr><td>Transparent film dressing</td><td>Vital derme&nbsp;</td><td>1503</td><td>15 cm x 10 m</td></tr><tr><td>Transparent polypropylene adhesive tape</td><td>Transparent polypropylene adhesive tape Transparent polypropylene adhesive tape</td><td></td><td>protection des plaies</td></tr><tr><td>Veterinary thermal blanket with PVC cover</td><td>Prevtech</td><td>MSO2VT001</td><td>Maintien de la température corporelle&nbsp;</td></tr><tr><td>Waterproof adhesive tape</td><td>Cremer</td><td>819113</td><td>10 cm x 4,5 m</td></tr></tbody></table>

un modèle chirurgical de plaie cutanée chez le rat : une approche pour les études de cicatrisation des plaies et l’évaluation des biomatériaux

A Rat Surgical Skin Wound Model: An Approach for Wound Healing Studies and Biomaterial Evaluation

Un modèle chirurgical de plaie cutanée chez le rat : une approche pour les études de cicatrisation des plaies et l’évaluation des biomatériaux

Skin wound healing is a complex biological process involving coordinated phases of inflammation, proliferation, and remodeling. Given the need to better ...

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Biology

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Nous avons développé une technique mini-invasive pour créer un lapin modèle ischémique plaie oreille en divisant l'artère centrale et le nerf et le paquet vasculo-nerveux crânienne. Un tunnel sous-cutané coupe alors tous les tissus sous-cutanés. Cette procédure entraîne des perturbations minimes et la peau peut être utilisé sans danger chez les animaux diabétiques.

Une technique simplifiée pour produire un modèle de plaie ischémique

Un outil utile pour analyser les effets des drogues, des facteurs de croissance et / ou des cellules manipulées dans un modèle animal de la cicatrisation des plaies est décrite. Cette technique utilise les propriétés d'un alcool de polyvinyle (PVA) éponge à livrer et contiennent le traitement désiré et également fournir une plate-forme d'être excisée et analysées.

L&#39;alcool polyvinylique Modèle éponge Implantation

Un modèle murin de la cicatrisation cutanée qui peut être utilisé pour évaluer les composés thérapeutiques dans des contextes physiologiques et physiopathologiques.

Modèle murin de la cicatrisation

Le rat, en raison de sa taille, la disponibilité et le comportement plutôt docile, a été utilisé comme un modèle de recherche depuis de nombreuses années. L'objectif de ce protocole est d'utiliser le rat comme un modèle de cicatrisation de la peau de la plaie ischémique de fournir de précieux renseignements sur la physiopathologie des plaies chroniques.

Démonstration de la peau plaies Modèle Rat ischémique

Ici, deux modèles murins de guérison de blessure sont décrits, l’un conçu pour évaluer les réponses cellulaires et de guérison de blessure de cytokine et l’autre pour quantifier le taux de fermeture de blessure. Ces méthodes peuvent être utilisées avec des modèles complexes de maladies telles que le diabète pour déterminer les mécanismes de divers aspects de la mauvaise cicatrisation des plaies.

Évaluation de la guérison aigue des plaies à l’aide de l’implantation d’éponge d’alcool polyvinyl subcutanée et des modèles excisionaux de blessure de peau de queue.

Le but de cette étude était de développer un modèle murin de la cicatrisation des brûlures. Une brûlure thermique a été induite sur la peau dorsale des souris à l’aide d’un modèle de laiton préchauffé. Le tissu brûlé a été débrided et recouvert d’une greffe de peau récoltée à partir de la queue d’une souris de donneur génétiquement similaire.

Un modèle murine d’une blessure de brûlure reconstruite avec une greffe de peau allogénique

Ce protocole décrit comment générer des blessures excisionnelles bilatérales et pleine épaisseur chez la souris et comment surveiller, récolter et préparer les plaies pour l’analyse morphométrique. On y trouve une description détaillée de la façon d’utiliser les sections histologiques périodiques pour définir, quantifier et détecter avec précision les défauts morphométriques.

Modèle de cicatrisation des plaies excisional murine et analyse histologique des plaies morphométriques

Nous démontrons ici une technique optimisée pour évaluer la réparation des plaies à l’aide de peau humaine ex vivo combinée à une approche de coloration à montage complet. Cette méthodologie fournit une plate-forme préclinique pour l’évaluation des thérapies potentielles des plaies.

Modèle de plaie ex vivo humaine et approche de coloration à montage entier pour évaluer avec précision la réparation de la peau

Cette étude présente deux techniques expérimentales cruciales : la construction d’un modèle de plaie murine pour évaluer la fermeture de la plaie et la préparation de suspensions unicellulaires à partir de peau murine pour préserver la viabilité cellulaire.

Modèles de plaies chez la souris et préparation de suspensions de cellules uniques

Un des protocoles pour un système de cerveau de rat culture embryonnaire agrégat est décrite. Progéniteurs multipotentes dans les agrégats peuvent se développer et se différencier en neurones, astrocytes et des oligodendrocytes.

Préparation des cultures de cerveau de rat d&#39;agrégation pour Neuron et études sur le développement Glia

Découvrez un protocole chirurgical pour créer des plaies cutanées carrées chez le rat. Cette méthode standardisée permet de personnaliser la taille et la géométrie des lésions pour étudier la cicatrisation et évaluer les biomatériaux.

Un modèle chirurgical de plaie cutanée chez le rat : une approche pour les études de cicatrisation des plaies et l’évaluation des biomatériaux (Vidéo) | JoVE Journal

Un modèle chirurgical de plaie cutanée chez le rat : une approche pour les études de cicatrisation des plaies et l’évaluation des biomatériaux

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