Name: Dissection et isolement des ganglions dorsals de la souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-03T14:55:00.000+00:00
Duration: 6 min 47 s
Description: Découvrez une méthode standardisée pour dissequer et isoler les ganglions dorsaux de la souris avec précision anatomique. Ce protocole permet d'obtenir des tissus intacts pour les études de neurosciences et de douleur.

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<table><tbody><tr><td>0.5 mL centrifuge tube</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour le stockage fixe des DRG</td></tr><tr><td>Seringue de 20 mL</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour la perfusion cardiaque</td></tr><tr><td>Solution de saccharose à 30%</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour la déshydratation des tissus avant l'inclusion OCT</td></tr><tr><td>Paraformaldéhyde à 4%</td><td>Servicebio</td><td>G1101</td><td></td></tr><tr><td>BSA à 5%</td><td>Solarbio</td><td>SW3015</td><td></td></tr><tr><td>Éthanol à 70%</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour réduire la contamination par les poils avant la dissection</td></tr><tr><td>Papier absorbant</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour enlever les poils des tissus conjonctifs</td></tr><tr><td>Souris adultes C57BL/6</td><td>Vital River</td><td>Non spécifié</td><td>mâle ou femelle; 12 semaines d'âge; 25&ndash;30 g</td></tr><tr><td>IgG anti-lapin conjugué Alexa Fluor 488</td><td>Servicebio</td><td>GB25303</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps anti-TUBB3</td><td>Proteintech</td><td>CL488-66375</td><td>Utilisé pour l'immunofluorescence de TUBB3</td></tr><tr><td>Chambre au dioxyde de carbone</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour l'euthanasie</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Servicebio</td><td>G1012</td><td></td></tr><tr><td>Planche de dissection</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour fixer la souris pendant la dissection</td></tr><tr><td>Microscope à fluorescence</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour imager les sections marquées par immunofluorescence</td></tr><tr><td>Rongeures osseuses Friedman-Pearson</td><td>RWD</td><td>S21022-14</td><td>Extrait du manuscrit: rongeur osseux (RWD, S21022-14)</td></tr><tr><td>Kit de coloration H&amp;E</td><td>Servicebio</td><td>G1005</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux courbés microchirurgicaux</td><td>ASSI</td><td>SDCT16R8</td><td>Extrait du manuscrit: ciseaux micro courbés (ASSI, SDCT16R8)</td></tr><tr><td>Pinces microchirurgicales</td><td>Fine Science Tools</td><td>11254-20</td><td>Extrait du manuscrit: pinces microchirurgicales (FST, 11254-20)</td></tr><tr><td>Composé OCT</td><td>Sakura Finetek</td><td>No. 4583</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Servicebio</td><td>G2156</td><td></td></tr><tr><td>Épingles</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour fixer les membres sur la planche de dissection</td></tr><tr><td>Sérum physiologique</td><td>Non spécifié</td><td>Non spécifié</td><td>Utilisé pour rincer le champ opératoire</td></tr><tr><td>Ciseaux</td><td>Fine Science Tools</td><td>14060-09</td><td>Extrait du manuscrit: ciseaux (FST, 14060-09)</td></tr><tr><td>Stéréomicroscope</td><td>Leica Microsystems, Wetzlar, Allemagne</td><td>10447197</td><td>Extrait du manuscrit: stéréomicroscope (Leica, 10447197)</td></tr><tr><td>Solution de récupération d'antigène Tris-EDTA</td><td>Solarbio</td><td>C1038</td><td></td></tr></tbody></table>

dissection et isolement des ganglions dorsals de la souris

Dissection and Isolation of Mouse Dorsal Root Ganglia

Dissection et isolement des ganglions dorsals de la souris

Dorsal root ganglia (DRG), which contain the cell bodies of primary sensory neurons, serve as critical relay structures for the transmission of sensory ...

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Neurosciences

Étude génétique de la régénération des axones avec cultivées adultes dorsaux neurones ganglion de la racine

Cette vidéo présente un protocole sans enzyme pour isoler les macrophages du ganglion de la racine dorsale (DRG) de souris à l’aide d’une technique de dissociation mécanique. Lors de l’homogénéisation du tissu DRG fraîchement collecté, des anticorps dirigés contre les récepteurs de surface cellulaire sur les macrophages sont utilisés pour marquer les cellules par fluorescence, puis effectuer une cytométrie en flux pour confirmer la présence de macrophages dans l’échantillon.

Isolement des macrophages du ganglion de la racine dorsale de la souris par dissociation mécanique

Cette vidéo présente une méthode pour développer des ganglions de la racine dorsale ou une culture d’explants DRG et des modèles cellulaires dissociés de DRG à l’aide de tissus DRG de souris isolés. Ces modèles aident à étudier divers mécanismes d’interactions neurones-gliales dans un environnement contrôlé.

Génération d’un explant ganglionnaire racinaire dorsal et d’une culture cellulaire dissociée

Cet article vidéo montre l’utilisation du modèle de cellules cancéreuses et ganglions de la racine dorsale (DRG)/cancer dans l’adénocarcinome canalaire pancréatique.

In Vitro Modélisation de Cancerous Neural Invasion: Le ganglion de racine dorsale Modèle

Ici, nous présentons un protocole pour l’extrusion hydraulique de la moelle épinière ainsi que l’identification et l’isolement de ganglions spécifiques de la racine dorsale (DRG) chez le même rongeur. Par rapport aux méthodes standard d’isolement de la moelle épinière, cette méthode est nettement plus rapide et réduit le risque de lésions tissulaires.

Extrusion hydraulique de la moelle épinière et isolement de ganglions rachidiens en Rongeurs

Électroporation est une approche efficace pour livrer des gènes d’intérêts dans les cellules. En appliquant cette approche in vivo sur les neurones du ganglion de la racine dorsale de souris adulte (DRG), les auteurs décrivent un modèle pour l’étude de la régénération axonale in vivo.

Chargée de l’enquête la régénération axonale mammifères : In Vivo électroporation du Ganglion de la racine dorsale de souris adulte

Ici nous présentons un protocole mécanique de dissociation pour isoler rapidement des macrophages du ganglion de racine dorsal pour le phénotypage et l'analyse fonctionnelle.

Isolement rapide des macrophages de ganglion de racine dorsal

Ce protocole décrit l’exposition chirurgicale du ganglion radiculaire dorsal (DRG) suivi de GCaMP3 (indicateur Ca2+ codé génétiquement; Protéine fluorescente verte-calmoduline-protéine M13 3) Imagerie Ca2+ des ensembles neuronaux à l’aide de souris Pirt-GCaMP3 tout en appliquant une variété de stimuli à la patte postérieure ipsilatérale.

In vivo Imagerie calcique d’ensembles neuronaux dans des réseaux de neurones sensoriels primaires dans des ganglions radiculaires dorsaux intacts

Nous présentons ici le développement permettant d’acquérir systématiquement des coupes de cryostat ganglionnaire de racine dorsale de haute qualité.

Une procédure pour la cryosection du ganglion de la racine dorsale de la souris

Ce protocole fournit une technique pour récolter et cultiver le ganglion de la racine dorsale (DRG) explanté de rats Sprague Dawley adultes dans un dispositif à compartiments multiples (MC).

Récolte, intégration et culture de ganglions de la racine dorsale dans des dispositifs à compartiments multiples pour étudier les caractéristiques neuronales périphériques

Ce protocole décrit les méthodes d’établissement de cultures entières et dissociées de ganglions de la racine dorsale (DRG) de souris et leur utilisation pour évaluer les interactions tumeur-nerf.

Établissement de modèles in vitro de culture de ganglions de la racine dorsale : approches complémentaires pour l’étude de la diaphonie cancéreux-nerf

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Dissection et isolement des ganglions dorsals de la souris

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