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</ol>

<table><tbody><tr><td>10% Tween-20</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1662404</td><td>NA</td></tr><tr><td>20x PBS, pH7.4</td><td>Growcells.com</td><td>MRGF-6396</td><td>2,74M NaCl, 53,7 mM KCl, 20,3 mM Na2HPO4, 29,4 mM KH2PO4&nbsp;</td></tr><tr><td>20x SSC</td><td>Quality Biological</td><td>351-003-131</td><td>3M NaCl, 0,3M Sodium Citrate</td></tr><tr><td>37 &deg;C incubator</td><td>Fisher Scientific (Isotemp)</td><td>15-015-2633</td><td>NA</td></tr><tr><td>37 &deg;C water bath</td><td>Fisher Scientific</td><td>FSGPD15D</td><td>NA</td></tr><tr><td>Aluminum foil</td><td>Reynolds Wrap/Fisher Brand</td><td>15-078-291</td><td>NA</td></tr><tr><td>Antibody: Mouse-anti-Abrupt</td><td>DSHB</td><td>Abrupt; RRID: AB_528344&nbsp;</td><td>Dilution: 1:20</td></tr><tr><td>Antibody: Chicken anti-GFP</td><td>Millipore Sigma</td><td>Catalog# 06-896; RRID: AB-619712</td><td>Dilution: 1:500</td></tr><tr><td>Antibody: Rabbit anti-GFP</td><td>Life Technologies</td><td>#11122; RRID: AB_221569</td><td>Dilution: 1:500</td></tr><tr><td>Antibody: Rabbit anti-Dll</td><td>Genscript/Desplan lab</td><td>-</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Rat anti-NCadherin</td><td>DSHB</td><td>DN-Ex #8, RRID: AB_528121</td><td>Dilution: 1:50</td></tr><tr><td>Antibody: Rabbit anti-SoxN</td><td>Genscript/Desplan lab</td><td>-</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Guinea Pig anti-Traffic jam</td><td>Gift from D. Godt</td><td>-</td><td>Dilution: 1:2 000</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Rat 405</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code # 712-475-150; RRID: AB_2340680</td><td>Dilution: 1:100</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Chicken 488</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code #703-545-155; RRID: AB_2340375</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Mouse 488</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code #715-545-151; RRID: AB_2341099</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Rabbit 488</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code #711-545-152; RRID: AB_2313584</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Rabbit A555</td><td>Thermo Scientific</td><td>Catalog #A-31572; RRID: AB_162543</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Rat Cy3</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code #712-165-153; RRID: AB_2340667</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Guinea Pig 647</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code #706-605-148; RRID: AB_2340476</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antibody: Donkey anti-Rat 647</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>Code #712-605-153; RRID: AB_2340694</td><td>Dilution: 1:200</td></tr><tr><td>Antifade mountant</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>S36940 (SlowFade Gold Antifade Mountant)</td><td>D'autres antifades fonctionneront également, y compris ceux avec DAPI (S36936)</td></tr><tr><td>Confocal Microscope</td><td>Zeiss</td><td>LSM-880</td><td>NA</td></tr><tr><td>Cover slips (22 x 30)</td><td>VWR</td><td>16004-332</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster: ab-GFP-FLAG</td><td>BDSC</td><td>38626; RRID: BDSC_38626</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster: Canton S</td><td>BDSC</td><td>64349; RRID: BDSC_64349</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster: dpp-Gal4</td><td>BDSC</td><td>1553; RRID: BDSC_1553</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster: ham-GFP.FPTB</td><td>BDSC</td><td>83660; RRID: BDSC_83660</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster: yw; 10xUAS-myr-GFP;</td><td>BDSC</td><td>32198; RRID: BDSC_32198</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster: UAS-Stinger</td><td>BDSC</td><td>84277; RRID: BDSC_84277</td><td>NA</td></tr><tr><td>Fly: D. melanogaster:&nbsp; wit-KO-Gal4</td><td>BDSC</td><td>600136; RRID: BDSC_600136</td><td>NA</td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Dumont</td><td>#5 ou #55s</td><td>NA</td></tr><tr><td>Glass slides</td><td>VWR</td><td>16005-106</td><td>NA</td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Millipore Sigma</td><td>G7126-10MG</td><td>NA</td></tr><tr><td>HCR Amplification buffer</td><td>Molecular Instruments</td><td>HCR Gold RNA-FISH Kit</td><td>NA</td></tr><tr><td>HCR-Gold Amplifiers</td><td>Molecular Instruments</td><td>HCR Gold RNA-FISH Kit</td><td>NA</td></tr><tr><td>HCR HiFi Probes</td><td>Molecular Instruments</td><td>HCR Gold RNA-FISH Kit</td><td>NA</td></tr><tr><td>HCR Probe Hybridization Buffer</td><td>Molecular Instruments</td><td>HCR Gold RNA-FISH Kit</td><td>Contient du formamide</td></tr><tr><td>HCR Probe Wash Buffer</td><td>Molecular Instruments</td><td>HCR Gold RNA-FISH Kit</td><td>Contient du formamide</td></tr><tr><td>Nail polish (clear)</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72180</td><td>NA</td></tr><tr><td>Nuclease-free water (not DEPC-treated)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM9937</td><td>NA</td></tr><tr><td>Nutating mixer</td><td>Corning/Fisher Scientific</td><td>10-320-100</td><td>NA</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde, 16% (w/v)</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>15710</td><td>Toxique</td></tr><tr><td>PCR Machine/Thermal Cycler</td><td>Bio-Rad</td><td>1851148 (C1000 Touch Thermal Cycler)</td><td>NA</td></tr><tr><td>PCR pull-apart tube strips with dome cap strips (0,2 mL)&nbsp;</td><td>USA Scientific</td><td>#1402-2400</td><td>NA</td></tr><tr><td>Petri dishes (150 x 15 mm; for making dissecting dishes)</td><td>Fisher Scientific</td><td>FB0875714</td><td>NA</td></tr><tr><td>RNase ZAP</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>AM9780</td><td>NA</td></tr><tr><td>Slide spacer stickers</td><td>SUNJin</td><td>IS016 (iSpacer stickers (0,2 mm deep))</td><td>NA</td></tr><tr><td>Sylgard elastomer kit (for making dissecting dishes)</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9285739</td><td>NA</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Merck Millipore Sigma</td><td>X100</td><td>NA</td></tr></tbody></table>

fish à réaction en chaîne d’hybridation dans le lobe optique en développement de drosophila

Hybridization Chain Reaction FISH in the Developing Drosophila Optic Lobe

FISH à réaction en chaîne d’hybridation dans le lobe optique en développement de Drosophila

Understanding neural development requires precise characterization of when and where genes are expressed. Techniques such as in situ hybridization have ...

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Utilisation Mont entier<em&gt; In situ</emHybridation&gt; Lien vers biologie moléculaire et Organismal

Les neurones sensoriels de l'arborisation dendritique...

Analyse morphologique des Drosophile Larvaires périphérique dendrites et des axones des neurones sensoriels utilisant mosaïques génétiques

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Le poisson zèbre, un petit poisson tropical, est devenu un modèle populaire pour étudier la fonction des gènes au cours du développement des vertébrés et de la maladie. L'expression spatiale et temporelle des gènes cibles peut être déterminée...

Haute Résolution Mont entier<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridation dans les embryons de poisson zèbre pour étudier l&#39;expression des gènes et la fonction

L’immunomarquage est une technique efficace pour visualiser des types de cellules et des protéines spécifiques dans les tissus. En utilisant la sonication, le protocole décrit ici réduit la nécessité de disséquer les tissus de Drosophila melanogaster des embryons et des larves à un stade avancé avant l’immunomarquage. Nous fournissons une méthodologie efficace pour l’immunomarquage des larves de montures entières fixées au formaldéhyde.

Sonication facilitée immunofluorescence de phase tardive embryonnaire et larvaire<em&gt; Drosophila</em&gt; tissus<em&gt; In Situ</em

Nous décrivons un montage entier hybridation in situ (MC-WISH) procédure chromogène multi-cible dans embryons de drosophile intactes permettant la détection simultanée et spécifique de trois modes de distribution de l'ARNm différents en comparant précipités de couleur.

Multi-cible chromogénique totalité montage<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridation pour la comparaison des gènes domaines d&#39;expression dans<em&gt; Drosophila</em&gt; Embryons

Le protocole d’ARN décrit in situ hybridation permet la détection de l’ARN dans des embryons de drosophile entiers ou tissus disséqués. À l’aide de microplaques 96 puits et amplification de signal tyramide, transcriptions peuvent être détectées à un débit, sensibilité et haute résolution et à un coût relativement faible.

Hybridation fluorescente In Situ haute résolution dans des embryons de drosophile et tissus à l’aide d’Amplification de Signal Tyramide

Ce manuscrit présente une méthode détaillée pour la génération X-sondes de bras de chromosome et performants fluorescence in situ hybridation (poisson) pour examiner l’état de sœur cohésion des chromatides sœurs en prométaphase et métaphase que j’ai arrêté  Drosophile ovocytes. Ce protocole est convenable pour déterminer si la cohésion bras méiotique est intacte ou perturbé dans différents génotypes.

À l’aide de hybridation In Situ par Fluorescence (FISH) pour surveiller l’état des bras cohésion en prométaphase et métaphase j’ai Drosophila ovocytes

L’article décrit les méthodes et les réactifs nécessaires pour effectuer l’hybridation de l’hybridation de l’ARN en fluorescence sur montage entier (HCR ARN, WM-FISH) afin de révéler des informations sur la résolution spatiale et cellulaire des gènes des récepteurs chimiosensoriels dans l’antenne du moustique et le palpe maxillaire.

Hybridation Réaction en chaîne ARN Fluorescence intégrale Hybridation in situ de gènes chimiosensoriels dans les appendices olfactifs des moustiques

L’hybridation in situ par fluorescence itérative assistée par expansion (EASI-FISH) est une technique robuste qui combine la microscopie à expansion avec l’hybridation in situ en fluorescence (FISH) pour détecter l’expression de plusieurs gènes dans les tissus épais. Ce protocole décrit les progrès récents de la méthode et son adaptation pour le marquage du système nerveux central intact de la drosophile.

Détection multiplex de l’expression génique dans le cerveau intact de la drosophile à l’aide de l’hybridation in situ par fluorescence itérative assistée par expansion

New York University.  Ce protocole décrit les étapes nécessaires pour réaliser l’hybridation par réaction en chaîne fluorescente in situ (HCR-FISH) dans les lobes optiques larvaires de Drosophila melanogaster . Les procédures de conception de la sonde, de l’hybridation, de l’amplification et du montage tissulaire sont détaillées afin de faciliter la visualisation du lobe optique en développement.

FISH à réaction en chaîne d’hybridation dans le lobe optique en développement de Drosophila

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