Name: Tests simples et accessibles pour l’éclosion des œufs chez Caenorhabditis elegans : formats adaptables pour le dépistage de drogues (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-03T14:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 11 s
Description: Découvrez trois configurations d'essais d'éclosion d'œufs chez Caenorhabditis elegans pour le dépistage de drogues. Ces méthodes simples et adaptables facilitent la recherche anthelminthique et l'enseignement.

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	<li>Bizimenyera ES, Githiori JB, Eloff JN, Swan GE. In vitro activity of Peltophorum africanum Sond. (Fabaceae) extracts on the egg hatching and larval development of the parasitic nematode Trichostrongylus colubriformis. Vet Parasitol. 2006;142(3&#8211;4):336-43.</li>
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	<li>Zaj&#237;&#269;kov&#225; M, Nguyen LT, Sk&#225;lov&#225; L, Raisov&#225; Stuchl&#237;kov&#225; L, Matou&#353;kov&#225; P. Anthelmintics in the future: current trends in the discovery and development of new drugs against gastrointestinal nematodes. Drug Discov Today. 2020;25(2):430-7.</li>
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	<li>Mickiewicz M et al. Inhibitory effect of dimethyl sulfoxide on the development of gastrointestinal nematode larvae in the larval development test. J Vet Res. 2025;69(1):83-90.</li>
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	<li>Mir&#243; MV et al. Phytochemical-Mediated Modulation of Doramectin Pharmacology in Sheep: Exploring the Cinnamaldehyde&#8211;Pink Grapefruit Combination. Animals. 2025;15(17):2539.</li>
	<li>Kaewintajuk K et al. Anthelmintic activity of KSI-4088 against Caenorhabditis elegans. Parasitol Res. 2010;107(1):27-30.</li>
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	<li>Liu C, Chen Y, Li Z, Xu X. Design, Synthesis, Nematicidal Activity Evaluation, and Mode of Action Study of Novel Trifluorobutene Ester Derivatives as Potential Nematicides. J Agric Food Chem. 2025;73(18):10736-50.</li>
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	<li>Harlow PH et al. The nematode Caenorhabditis elegans as a tool to predict chemical activity on mammalian development and identify mechanisms influencing toxicological outcome. Sci Rep. 2016;6(1):22965.</li>
	<li>do Nascimento PM et al. Activity of essential oils against Caenorhabditis elegans: Showing anthelmintic potential for new products. Vet Parasitol. 2026;344:110766.</li>
	<li>AlOkda A, Van Raamsdonk JM. Effect of DMSO on lifespan and physiology in C. elegans: Implications for use of&#160;DMSO as a solvent for compound delivery. MicroPubl Biol. 2022;2022.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Caenorhabditis elegans neuromuscular junction: GABA receptors and ivermectin action. Phillips W, editor. PLoS One. 2014;9(4):e95072.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Rodriguez Araujo N, Pulido Carrasquero A, Bouzat C. Unraveling anthelmintic targets and mechanisms of action of trans-cinnamaldehyde from cinnamon essential oil. Sci Rep. 2025;15(1):5422.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Rodriguez Araujo N, Bouzat C. The diverse family of Cys-loop receptors in Caenorhabditis elegans: insights from electrophysiological studies. Biophys Rev. 2023;15(4):733-50.</li>
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	<li>Hernando G, Turani O, Bouzat C. Caenorhabditis elegans muscle Cys-loop receptors as novel targets of terpenoids with potential anthelmintic activity. Greenberg RM, editor. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13(11):e0007895.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Evaluating anthelmintic activity through Caenorhabditis elegans egg hatching assay. MethodsX. 2024;12:102743.</li>
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	<li>G&#252;rel G et al. Receptors and other signaling proteins required for serotonin control of locomotion in Caenorhabditis elegans. Genetics. 2012;192(4):1359-71.</li>
	<li>Rodriguez Araujo N, Hernando G, Corradi J, Bouzat C. The nematode serotonin-gated chloride channel MOD-1: A novel target for anthelmintic therapy. J Biol Chem. 2022;298(9):102356.</li>
	<li>Porta-de-la-Riva M, Fontrodona L, Villanueva A, Cer&#243;n J. Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation. JoVE. 2012;(64):e4019.</li>
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<table><tbody><tr><td>Bacteriological Agar</td><td>Britania&nbsp;</td><td>B0101406</td><td>should be prepared fresh (1.7 gr in 100 mL&nbsp;H2O)</td></tr><tr><td>Bleach solution</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>1.2 % (v/v) NaOH and 0.5 M NaOH</td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>ThermoScientific.&nbsp;</td><td>Sorvall ST16R.&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>BiofugePICO to eppendorf tube</td><td>Heraeus 75003235&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Digital camera</td><td>ToupCam&nbsp;</td><td>TP605100A</td><td>Industrial digital camera. Adjustabe focal length USB 2.0</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>BioBasic&nbsp;</td><td>RAS#7-68-5</td><td>MW: 78,13</td></tr><tr><td>Linalil Acetate&nbsp;</td><td>SIGMA</td><td>No.CAS: 115-95-7</td><td>should be prepared fresh</td></tr><tr><td>Lysogeny broth (LB) medium</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>10 g Bacto-tryptone, 5 g yeast extract, 10 g NaCl to 1 L destilled water&nbsp;</td></tr><tr><td>M9 Buffer&nbsp;</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>3 g KH2PO4, 6 g Na2HPO4, 5 g&nbsp; NaCl, 0,25 g MgSO4 to 1 L destilled water</td></tr><tr><td>Mini Rotator &nbsp;</td><td>BioSan</td><td>Bio RS-24</td><td></td></tr><tr><td>Nematode Growth Medium (NGM)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>3 g NaCl, 17 g agar, 2,5 g&nbsp; Bacto-Peptone to 1 L destilled water. Sterilize by autoclaving. Supplemented 1 mL cholesterol (5 mg/mL),&nbsp; 1 mL CaCl2 (1 M), 25 mL potassium phosphate buffer (1 M, pH 6.0) and 1 mL&nbsp; MgSO4 (1 M)</td></tr><tr><td>Petri Dish (3 - 5 mm)</td><td>ThermoScientific. Nunclon DeltaSurface&nbsp;</td><td>153066</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dish (90 mm x 15 mm)</td><td>ExtraGene&nbsp;</td><td>1026160305</td><td>For laboratory use only, Polystyrene.&nbsp;</td></tr><tr><td>Pipette</td><td>Fisherbrand</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>SigmaPlot 12.0</td><td>Systat Software</td><td>N/A</td><td>Version 12.0</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>ARCANO</td><td>ZTX-T 1:4 LED</td><td>Trinocular stereomicroscope (10x&ndash;40x total magnification; LED incident and transmitted illumination)</td></tr><tr><td>Sucrose&nbsp;</td><td>Laboratorio Cicarelli&nbsp;</td><td>Art 841</td><td>60 % (v/v) sucrose&nbsp;</td></tr><tr><td>Tissue culture plate 96 well&nbsp;</td><td>Biofil&nbsp;</td><td>TCP 012096</td><td>Polystyrene, Low Evaporation Lid.&nbsp;</td></tr><tr><td>ToupView&nbsp;</td><td>ToupTek Photonics</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Transcinnamaldehyde (TCA)</td><td>Santa Cruz Biotechnology&nbsp;</td><td>J1712</td><td>Should be prepared fresh</td></tr></tbody></table>

tests simples et accessibles pour l’éclosion des œufs chez caenorhabditis elegans : formats adaptables pour le dépistage de drogues

Simple and Accessible Egg-Hatching Assays in Caenorhabditis elegans: Adaptable Formats for Drug Screening

Tests simples et accessibles pour l’éclosion des œufs chez Caenorhabditis elegans : formats adaptables pour le dépistage de drogues

Egg-hatching assays (EHA) are widely used to evaluate the effects of chemical compounds on early developmental stages of nematodes, particularly in ...

Nous développons des tests simples et évolutifs d'éclosion d'œufs de C. elegans afin d'évaluer les effets de composés sur le développement embryonnaire. Les méthodes existantes manquent d'un protocole standardisé et adaptable. Ce protocole propose une approche normalisée et reproductible, convenant aussi bien aux criblages à faible qu'à haut débit.Commencez avec trois à cinq boîtes de milieu de croissance pour nématodes contenant des cultures confluentes d'adultes gravides. Sélectionnez des boîtes contenant un grand nombre de vers gravides et des œufs visibles, indiquant une reproduction active. Ajoutez de l'eau distillée dans chaque boîte et transférez délicatement les vers dans un tube conique de 15 millilitres. Évitez de racler la surface de l'agar afin de minimiser les débris. Centrifugez à 266 g pendant trois minutes pour former un culot de vers, éliminez le surnageant contenant les bactéries et répétez l'étape de lavage trois fois. Pour isoler les œufs, remettez en suspension le culot de vers dans une solution de décoloration fraîchement préparée. Agitez vigoureusement le tube afin de favoriser la rupture des corps adultes et la libération des œufs. Ne dépassez pas cinq minut

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Biology

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Une procédure de liquides à base de culture et de la distribution...

Criblage à haut débit et de biodétection avec fluorescent C. elegans Souches

Le comportement de ponte de C. elegans peut fournir des informations importantes dans les études de développement, de reproduction et d’anatomie. Cette vidéo présente les étapes importantes d’un test de ponte d’œufs et montre un exemple d’expérience dans lequel un médicament est testé pour sa toxicité pour la reproduction.

Essai de ponte : une méthode pour quantifier le comportement de ponte de C. elegans

Source : Anderson, Q. L. et al. Un système pathologique de C. elegans à haut débit, à haute teneur et à base de liquide. J. Vis. Exp. (2018)Cette vidéo présente une méthode de criblage à haut débit utilisant Caenorhabditis elegans pour étudier les inactivations de gènes lors d’interactions hôte-pathogène. Il décrit la procédure de préparation des vers neutralisés et de leur transfert sur des plaques d’essai afin d’évaluer les effets de l’élimination des vers induite par les agents pathogènes.

Un test liquide multipuits pour le dépistage des renversements de C. elegans

Procédé d'évaluation quantitative de la réponse chimiotactique...

C. elegans Chemotaxis Assay

Nous décrivons les étapes détaillées d’un dosage chimique à haut débit chez le nématode Caenorhabditis elegans utilisé pour évaluer la toxicité germinale. Dans cet essai, la perturbation de la fonction germinale suite à une exposition à un produit chimique est surveillée à l’aide d’un rapporteur fluorescent spécifique aux embryons aneuploïdes.

Évaluation complète de la lignée germinale toxicité chimique Utilisation du nématode<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Nous présentons une configuration et un protocole d'enregistrement du comportement qui permettent une analyse automatisée du nématode, la préférence de Caenorhabditis elegans pour les composés solubles dans un dosage basé sur la population. Cet article décrit la construction d'une chambre de comportement, du protocole d'analyse comportementale et de l'utilisation d'un logiciel d'analyse vidéo.

Analyse automatisée d&#39;un essai de préférence chimiosensible basée sur la population à base de nématodes

Nous décrivons ici un protocole simple pour produire rapidement des centaines de gélose de croissance nématode de médias, des plaques de 96 puits de culture avec un nombre uniforme de Caenorhhabditis elegans / puits. Ces cultures sont utiles pour le dépistage phénotypique des organismes entiers. Nous nous concentrons ici sur l’utilisation de ces cultures de produits chimiques pour des effets Pro-longévités.

Une méthode Simple pour le criblage à haut débit chimique chez Caenorhabditis Elegans

Pour étudier les interactions chaperon-chaperon et chaperone-substrat, nous effectuons des écrans d’interaction synthétique chez Caenorhabditis elegans en utilisant l’interférence ARN en combinaison avec des mutations légères ou une sur-expression des chaperons et surveillons le dysfonctionnement protéique spécifique des tissus au niveau de l’organisme.

Utilisation de Caenorhabditis elegans pour dépister les interactions tissulaires spécifiques des chaperons

Le nématode génétiquement traitable Caenorhabditis elegans peut être utilisé comme modèle simple et peu coûteux pour la découverte de médicaments. Décrit ici est un protocole pour identifier les thérapies anticancéreux qui inhibent la signalisation en aval des protéines RAS et EGFR.

Identification des inhibiteurs de l’EGFR et du SRA à l’aide de Caenorhabditis elegans

Nous présentons ici une méthode générale pour déterminer la viabilité embryonnaire et le nombre total d’embryons produits (couvée) à l’aide de l’organisme modèle C. elegans.

Mesure de la viabilité embryonnaire et de la taille du couvain chez Caenorhabditis elegans

Ce protocole propose une procédure simple et peu coûteuse pour quantifier le taux de létalité embryonnaire chez Caenorhabditis elegans. Il permet une détection simple des anomalies embryonnaires à travers les populations sans équipement spécialisé ni expertise en cueillement de vers. Le protocole peut être utilisé pour quantifier les effets des mutations génétiques, des dégradations génétiques médiées par l’interférence ARN et de l’alimentation.

Quantification du taux de létalité embryonnaire chez Caenorhabditis elegans

Découvrez trois configurations d'essais d'éclosion d'œufs chez Caenorhabditis elegans pour le dépistage de drogues. Ces méthodes simples et adaptables facilitent la recherche anthelminthique et l'enseignement.

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