Method Article

הכנת דגימת מיקרוסקופ גיליון אור: הרכבת עוברים חיים של דגי זברה להדמיה ארוכת טווח

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Icha J., et al. שימוש במיקרוסקופ פלואורסצנטי של גיליון אור כדי לדמות התפתחות עיניים של דגי זברה. J. Vis. Exp. (2016).

מאמר זה מתאר הכנת דגימות למיקרוסקופ פלואורסצנטי של יריעות אור. הוא גם מדגים שיטה להרכיב עוברים חיים של דגי זברה לצורך הדמיה ארוכת טווח, המאפשרת הקלטה של סרטים בהילוך ארוך של עוברים חיים בתנאים כמעט פיזיולוגיים.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. הכנת דוגמאות

  1. הכנת תערובת האגרוז
    1. 15 דקות לפני הכנת תערובת האגרוז, המיסו אליקוט אחד של 1 מ"ל של 1% נקודת התכה נמוכה אגרוז (מומס במדיום E3) בבלוק חימום המוגדר ל-70°C. ברגע שהאגרוז מותך לחלוטין, מעבירים 600 μl לצינור טרי של 1.5 מ"ל, מוסיפים 250 μl של E3 בינוני, 50 μl של 0.4% MS-222 ו- 25 μl של תמיסת מלאי חרוזים מעורבלת.
      הערה: זה עושה 925 μl של התערובת, בעוד 75 μl נוסף מחושב עבור הנוזל הוסיף מאוחר יותר יחד עם העוברים.
    2. שמור את הצינור בבלוק חימום שני ב 38-40 מעלות צלזיוס או לוודא כי האגרוז קרוב מאוד לנקודת הג'ל שלה לפני הכנסת עוברים מדגם לתוכו.
  2. הרכבת העוברים
    1. לוקחים חמישה נימי זכוכית בנפח 20 μl (עם סימן שחור, ~ 1 מ"מ קוטר פנימי) ומכניסים לתוכם את בוכנות קצה הטפלון התואמות. דוחפים את הבוכנה דרך הנימים כך שקצה הטפלון נמצא בתחתית הנימים.
    2. להעביר חמישה עוברים (מספר שניתן להרכיב בבת אחת) עם פיפטה זכוכית או פלסטיק לתוך צינור של מערבולת 37 ° C תערובת אגרוז חם.
      הערה: נסו לשאת כמות מינימלית של נוזלים יחד עם העוברים.
    3. הכניסו את הנימים לתערובת ומצצו עובר אחד פנימה על ידי משיכת הבוכנה למעלה. ודא כי ראש העובר נכנס נימים לפני הזנב. הימנעו מבועות אוויר בין הבוכנה לדגימה. צריך להיות ±2 ס"מ של אגרוז מעל העובר ו ±1 ס"מ מתחתיו. חזור על הפעולה עבור העוברים הנותרים.
    4. המתן עד האגרוז מתמצק לחלוטין, מה שקורה תוך מספר דקות ולאחר מכן אחסן את הדגימות במדיום E3, על ידי הדבקתן לקיר של עם פלסטלינה או קלטת. הפתח התחתון של הנימים צריך להיות תלוי חופשי בתמיסה המאפשרת חילופי גז לדגימה.
      הערה: פרוטוקול דומה לסעיפים 1.1 ו-1.2 ניתן למצוא גם בדף הוויקי של OpenSPIM http://openspim.org/Zebrafish_embryo_sample_preparation.

2. מיקום לדוגמה

  1. אסיפת מחזיקי מדגם
    1. הכנס 2 שרוולי פלסטיק בגודל הנכון (שחור) זה כנגד זה לתוך גזע מחזיק הדגימה. צידי החריץ שלהם צריכים לפנות החוצה. חבר את בורג המהדק באופן רופף על ידי סיבובו 2-3 סיבובים. הכנס את הנימים דרך בורג המהדק ודחוף אותו דרך המחזיק עד שרצועת הצבע השחורה הופכת גלויה בצד השני. הימנע מלגעת בבוכנה.
    2. הדקו את בורג המהדק. לדחוף את עודף 1 ס"מ של agarose מתחת לעובר מתוך הנימים לחתוך אותו. הכנס את הגבעול לדיסק מחזיק הדגימה.
    3. אשר בתוכנה כי שלב המיקרוסקופ נמצא במצב עומס. השתמש במסילות הנחיה כדי להחליק את כל המחזיק עם הדגימה אנכית כלפי מטה לתוך המיקרוסקופ. סובב אותו, כך שדיסק המחזיק המגנטי יינעל למקומו.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
מיקרוסקופ Lightsheet Z.1קרל זיס מיקרוסקופיה
נקודת התכה נמוכה agaroseרוט6351.1
נקודת התכה נמוכה agaroseסיגמאA4018 או A9414
אתיל 3-אמינובנזואט מתאן-סולפונט (MESAB/ MS-222/טריקאין)סיגמאE10521
20 μl (קוטר פנימי של 1 מ"מ, מסומן בשחור) נימיםמותג701904נמכר כחלק חילוף עבור Transferpettor
בוכנות קצה טפלון עבור 20 μl נימיםמותג701932נמכר כחלק חילוף עבור Transferpettor

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Light Sheet MicroscopyZebrafish EmbryoSample PreparationAgarose MountingCapillary HolderFluorescent ProteinsE3 MediumMS222 AnesthesiaLong Term ImagingGas Exchange

Related Articles