כל ההליכים הכוללים דגימות בעלי חיים נבדקו ואושרו על ידי ועדת הבחינה האתית המתאימה לבעלי חיים.
1. הכנת גשושית
- הגברת PCR של הגשוש
- עבור הגשוש הספציפי Porphyromonas gingivalis, הגבירו קטע DNA בגודל 343 bp של P. gingivalis 16S rRNA באמצעות PCR באמצעות ה-DNA הגנומי של P. gingivalis והפריימרים הבאים: 5'- TGC AAC TTG CCT TAC AGA GG-3' ו-5'- ACT CGT ATC GCC CGT TAT TC-3'. בצע הגברות בתנאי המחזור הבאים: 35 מחזורים ב-95 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות, 60 מעלות צלזיוס ל-30 שניות, ו-72 מעלות צלזיוס למשך דקה ו-20 שניות, ואחריהם הארכה של 5 דקות ב-72 מעלות צלזיוס.
- הגביר את הגלאי האבבקטריאלי באמצעות קטע DNA באורך 70 bp (5'-CAGGTGCTGCATGGCTGTCGTGTGTGAATGTGTGTGTGTGTGTGTGTGTCCCCGCAACGAGCGCAACCC-3') שסונתז כאוליגונוקלאוטיד והפריימרים הבאים: 5'-CAG GTR CTG CMT GGY-3' ו-5'-AGG GTT GCG CTC GTT-3'. בצע הגברות בתנאי המחזור הבאים: 40 מחזורים ב-94°C למשך 30 שניות, 60°C ל-30 שניות, ו-72 מעלות צלזיוס למשך דקה ו-20 שניות, ואחריהם הארכה של 5 דקות ב-72 מעלות צלזיוס.
- השקיעו את תוצרי ה-PCR (≥500 מיקרוליטר) על ידי הוספת 3 M נתרן אצטט (pH 5.2) ו-100% אתנול (ביחס 10:1:2) ודגירה בטמפרטורה של -20°C למשך שעתיים.
- צנטריפוגה את התערובת בעוצמה של 14,000 x גרם למשך 15 דקות, החזירו את הכדור ל-100 מיקרוליטר של חומצה טריס-אתילנדיאמינטטראצטית (EDTA) או בופר TE, ומדדו את ריכוז ה-DNA לפי צפיפות אופטית ב-260 ננומטר.
- תיוג דיגוקסיגנין (DIG) באמצעות ערכת תיוג וזיהוי DNA של DIG
- מערבבים 3 מיקרוגרם מהגשוש עם מים לנפח סופי של 15 מיקרוליטר.
- דנאטורציה של ה-DNA ב-95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות וקירור במהירות על הקרח.
- מוסיפים 2 מיקרוליטר של תערובת 10x הקסנוקלאוטידים, 2 מיקרוליטר של תערובת תיוג דאוקסינוקלאוזיד טריפוספט (dNTP), ו-1 מיקרוליטר של אנזים קלנוב ל-15 מיקרוליטר מה-DNA המנוטר.
- מערבבים ודגרו בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס במשך 24 שעות עד 48 שעות, ועצרו את התגובה על ידי חימום בטמפרטורה של 65 מעלות צלזיוס.
- בדקו את רגישות הגשוש המסומן על ידי DIG באמצעות ערכת תיוג וזיהוי DNA של DIG
- טעין ידנית 1 מיקרו-ליטר של דילול סדרתי של גלאי הבקרה החיובי שסופק בערכה ו-1ng של גלאי מסומן DIG על ממברנת הניילון, וייבש אותו במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר (RT).
- השרו לזמן קצר את הממברנה בבופר של 2 מלוחות-נתרן ציטראט (SSC) (0.3 M נתרן כלוריד או NaCl, 30 mM נתרן ציטראט, pH 7.0) ודגרו את הממברנה בטמפרטורה של 80 מעלות צלזיוס למשך שעה כדי לייצב את ה-DNA.
- השרו לזמן קצר את הממברנה בבופר חומצה מלאית (MAB, 0.1 M חומצה מאבית, 0.15 M NaCl, pH 7.5) ודגרו עם נוגדן אנטי-DIG אלקליני פוספטאז (AP) מדולל (1:5,000) ב-6 מ"ל של תמיסת חסימה שסופקה בערכה ב-RT למשך 30 דקות.
- שטפו את הממברנה עם MABT (MAB המכיל 1% Tween 20) ומרחו 40 מיקרוליטר של תמיסת ניטרו-כחול טטראזוליום/5-ברומו-4-כלורו-3'-אינדוליל פוספט (NBT/BCIP) מעורבבת עם בופר זיהוי של 2 מ״ל (0.1 M טריס(הידרוקסיתיל)אמינומתאן הידרוכלוריד או Tris-HCl, 0.1 M NaCl, 0.05 M מגנזיום כלוריד או MgCl2, pH 9.5) על הממברנה למשך דקה אחת. אם הרגישות של הגשוש המסומן אינה מספקת, חזור על השלבים מ-1.1.3 ל-1.3.4.
- מדדו את ריכוז ה-DNA של הגשוש המסומן (OD260) והתאימו את הריכוז ל-100 ng μl-1.
- בדוק את הספציפיות של הגשושית המסומנת על ידי DIG
- דגימות DNA גנומי דה-טבעי (25 ng3 מיקרוליטר-1 לדגימה) ממינים שונים של חיידקים, כולל החיידק המיועד על ידי הגלאי הספציפי, בטמפרטורה של 95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות ומתקררות במהירות על הקרח.
- טעין ידנית את ה-DNA המנותק על ממברנת הניילון וייבש אותו במשך 20 דקות ב-RT.
- להשרות לזמן קצר את הממברנה ב-2 בופר SSC ולדגור את הממברנה בטמפרטורה של 80 מעלות צלזיוס למשך שעתיים כדי ליתק את ה-DNA.
- חסום את הממברנה עם תמיסת חסימה ב-RT למשך שעה.
- דילל את הגשוש במהירות של 1 ng μl-1 בבופר היברידיזציה, דנאטורציה של הגשושים המדוללים, ומרחם אותם על הממברנה.
- דגרו את הממברנה בטמפרטורה של 45 מעלות צלזיוס למשך שעה.
- שטוף את הממברנה שלוש פעמים עם 2 בופר SSC.
- להשרות לזמן קצר את הממברנה ב-MAB.
- לדוג עם נוגדן אנטי-DIG מצומד AP מדולל (1:2,000) ב-6 מ"ל תמיסת חסימה ב-RT למשך שעה.
- שטוף את הממברנה עם MABT ומרח 40 מיקרוליטר של תמיסת NBT/BCIP מעורבבת עם בופר זיהוי של 2 מ"ל.
- כאשר הגשושית לא משיגת את הספציפיות הצפויה, יש להעלות את טמפרטורת ההיברידיזציה עד שנצפתה הספציפיות.
2. היברידיזציה במקום
הערה: כדי למנוע ייבוש של הדגימות והתגובות, יש לבצע את כל הדגרות בתא לחות מרופד במגבות נייר רטובות.
- דה-פרפיניזציה והידרציה מחדש של חתכי רקמה
- הכינו 4 חתכי רקמה בעובי מיקרומטר מבלוקים מוטמעים בפרפין. פורמלין, פאראפורמלדהיד ומקבע מבוסס אבץ תואמים לפרוטוקול זה.
- הכינו את כל המגיבים באמצעות מים שטופלו בדיאתיל פירוקרבונט (DEPC).
- מחממים בתנור יבש בטמפרטורה של 60 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות ומדגירות ב-RT למשך 30 דקות.
- Immerse מחליק ב-100% קסילן למשך 5 דקות שלוש פעמים; השתמש בקסילן טרי בכל פעם.
הערה: בצע את הליך הסרת השעווה הזה במכסה אדים כימי. - טבלו ב-100% אתנול במשך 5 דקות פעמיים, תוך שימוש באתנול טרי בכל פעם, והחלישו דגימות בתמיסות אתנול סדרתיות של 90%, 80% ו-70% למשך 5 דקות כל אחת.
- טבלו שקופיות במים שטופלו ב-DEPC למשך דקה אחת ושטפו שקופיות במי מלח מופטפלים ב-DEPC או PBS (pH 7.4) למשך 6 דקות.
- טיפולים מקדימים של חתכי רקמה
- טבלו סליידס בחומצה הידרוכלורית של 0.1 N למשך 20 דקות ושטיפו שקופיות במים שטופלו ב-DEPC למשך 30 שניות.
- צייר מחסום הידרופובי סביב דגימות באמצעות עט שעווה.
הערה: גודל המחסום ההידרופובי תלוי בגודל הדגימות. לכן, נפחי המגיבים בשלבים הבאים משתנים בהתאם לגודל הדגימות, אך חייבים למלא את המחסום ההידרופובי (50 מיקרוליטר לדגימות קטנות ו-400 מיקרוליטר לדגימות גדולות). - לטפל בדגימות ב-50 עד 400 מיקרוליטר של פרוטנאאז K (1 עד 10 מיקרוגרם מ"ל-1 ב-PBS מטופל ב-DEPC) בתנור יבש בטמפרטורה של 37°C למשך 30 דקות ושטוף ב-1x PBS מטופל ב-DEPC למשך דקה אחת.
- השריה ב-4% פרפורמלדהיד ב-PBS מטופל ב-DEPC למשך 10 דקות, ואז שטוף את הסליידס ב-PBS מטופל ב-DEPC למשך דקה אחת.
- השרה של סליידס ב-0.1 מטר טריאתנולאמין-HCl (pH 8.0) המכיל 0.5% אנדריד אצטי למשך 20 דקות ומגלשי שטיפה במים מטופלים ב-DEPC למשך 30 שניות.
- היברידיזציה עם הגשוש והשטיפה
- הטמעה ב-2 זיכרון SSC ל-20 דקות.
- דילל את הגלאי ב-1 ng μl-1 בבופר היברידיזציה (4x SSC, 50% פורמיד [vol/vol], 1x תמיסת דנהארט, 10% [משקל לנפח] דקסטרן סולפט, 0.1% [משקל לנפח] סודיום דודציל סולפט, 0.4 מ"ג DNA זרע סלמון). לבקרות שליליות, מערבבים את הגשוש המסומן עם כמות עודפת פי 10 של גלאי לא מסומן.
- דנאטורציה של הגששים המדוללים ומרח 50 עד 400 מיקרוליטר על חלקי רקמה. הניחו כיסוי על הסלייד ואטמו אותו עם לק.
- מחליק בחום במכשיר ה-PCR בטמפרטורה של 90°C למשך 10 דקות ומדגיר שקופיות בתא לח למשך הלילה (O/N) בטמפרטורה של 45°C או טמפרטורה אופטימלית שנקבעה בשלב 1.4.11.
- קיררו את הסליידס בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות, הסרו את הכיסוי, וטבלו את הסליידס בבופר SSC סדרתי כדלקמן: 4 פעמים SSC ל-10 דקות, 2x SSC מחוממים מראש (45 °C) 2x SSC ל-20 דקות, 2x SSC ל-10 דקות, ו-0.2x SSC ל-10 דקות.
- זיהוי באמצעות נוגדן קונוגטי AP אנטי-DIG
- שטוף שקופיות ב-MABT למשך 5 דקות.
- חסום עם 50 עד 400 מיקרוליטר של תמיסת חסימה עם 1% Tween 20 למשך 20 דקות.
- הוסיפו 50 עד 400 מיקרול של נוגדן אנטי-DIG-AP מדולל בתמיסת חסימה (1:1,000) ודגרו בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 90 דקות.
- לשטוף את המחסניות ב-MABT למשך 10 דקות.
- הטמינו שקופיות בזיכרון זיהוי שמכיל 1% טווין 20 למשך 5 דקות.
- לטפל ב-50 עד 400 מיקרוליטר של 1 מ"מ לבמיזול (בבופר זיהוי המכיל 1% Tween 20) למשך 5 דקות כדי להשבית פוספטאז אלקליני אנדוגני.
- פזר 50 עד 400 מיקרוליטר של תמיסת NBT/BCIP המעורבת מראש (מדוללת בבופר זיהוי ב-1:100) על כל דגימה ודחף את הסליידס בתא לח ב-RT למשך 2 עד 3 שעות עד שהאות המפותח יהיה מספק.
- שטוף את הסליידים במים דה-יוניים כדי לעצור את הוויזואליזציה ומרח 50 עד 400 מיקרוליטר של 0.05% מתיל ירוק כצבע נגד ב-37 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות.
- שטפו שקופים במים דה-יוניים, ייבשו ב-100% אתנול, וטבלו בקסילן.
- מרחו 80 מיקרוליטר של תמיסת התקנה על כל סלייד ומכסים עם מחסני כיסוי.