$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. בדיקת רעילות נוזלית של C. elegans עם Aeromonas
הערה: כדי למנוע זיהום, יש לבצע שלבים במכסה זרימה למינרי.
- ביום שלאחר זריעת תולעי L1 על צלחת ENGM (מדיום גידול נמטודות מועשר) עם E. coli OP50, קטף מושבה אחת מכל אחד מארבעת זני Aeromonas ו-E. coli OP50, ותגדל עם ציר 5 מ"ל LB כל אחד בטמפרטורה של 37°C למשך 16 שעות.
הערה: בפרוטוקול השתמשו בזני החיידקים הבאים: E. coli OP50, מקור המזון הרגיל של C. elegans. A. dhakensis AAK1, האיזול הקליני הפתוגני הראשון עם רצף מלא של A. dhakensis . A. hydrophila A2-066, A. veronii A2-007, ו-A. caviae A2-9307121 הם מבודדים קליניים מייצגים מבית החולים הלאומי צ'נג קונג.
הערה: להכנת NGM מועשר (ENGM), יש להמיס 3 גרם NaCl, 5 גרם פפטון חיידקים, 1 גרם תמצית שמרים ו-30 גרם אגר בליטר מים דה-יוניים. אוטוקלאב ב-121 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות. המתינו עד שהתקררו ל-55 מעלות צלזיוס באמבט מים, והוסיפו 1 מ"ל של 1 מ' CaCl2, 1 מ"ל של 1 מ' MgSO4, 1 מ"ל של 5% כולסטרול באתנול, ו-25 מ"ל בופר פוספט. לסובב כדי לערבב טוב. - מדד את ספיגתה-OD 600 של מרק החיידקים.
- צנטריפוגה את ציר החיידקים ב-3,500 x גרם למשך 15 דקות כדי להסיר את מרק ה-LB. החזירו את החיידקים והתאימו את מרק החיידקים ל-OD600 = 3.0 עם מדיום S. הוסיפו 195 מיקרול ציר חיידקים במדיום S לפחות ל-8 בארות של צלחת עם 96 בארות.
הערה: הרכב מדיום S: להכנת מדיום S, מערבבים 40 מ"ל בסיס S, 0.4 מ"ל 1 מ' אשלגן ציטראט, 0.4 מ"ל תמיסת מתכות עקבות, 0.12 מ"ל של 1 מ' CaCl2, 0.12 מ"ל של 1 מ' MgSO4, 40 מיקרוליטר של 5% כולסטרול באתנול ו-1 מ"ל 8 מ"מ פולט לפני השימוש. - שטוף את תולעי L4 על לוח ENGM עם E. coli OP5 עם M9 בינוני. כוונו את תמיסת התולעת לריכוז של 5 תולעים למיקרוליטר והוסיפו 5 מיקרוליטר של תמיסת התולעת לכל באר בלוח 96 הבארות. ודא שיש כ-25 תולעים בכל באר.
- דגור את פלטת 96 הבארים על שייקר ב-200 סל"ד ב-25 מעלות צלזיוס.
- ספרו את מספר התולעים החיות והמתות אחרי 24, 48 ו-72 שעות. חשב את שיעורי ההישרדות של כל באר באמצעות הנוסחה הבאה: (תולעים חיות/תולעים כוללות) × 100%.
- צייר גרף פיזור עם חישוב הנתונים היומי.