$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. מיקרוסקופיה - הכנת משטח האגר
- הכינו כריות אגר כ-30 דקות עד שעה לפני שהאמבות מוכנות לערבוב עם Pseudomonas aeruginosa.
- מיקרוגל 50 מ"ל של 1% אגר (w/v) בבופר פיתוח (DB) בבקבוק של 250 מ"ל. מערבבים כל 20 שניות עד שגושי האגר נעלמים.
- קיררו את האגר המותך על ידי הנחתו באמבט מים מחומם מראש בטמפרטורה של 55°C למשך 15 דקות.
- הוסף 15 מיקרוליטר מתמיסת המאגר הקלצין-AM ל-15 מ"ל של האגר המותך בצינור קוני. ערבב על ידי הפיכת הצינור בעדינות 4-5 פעמים, וממשיך מיד לשלב הבא.
הערה: בצע את השלב הזה בצינור צנטריפוגה פוליפרופילן בנפח 15 מ"ל. אל תשתמשו במיכל זכוכית עבה, כי זה יגרום לאגר להתקשות מהר מדי. - שפכו את תערובת האגר המותכת מעל צלחת זכוכית בגודל 12 ס"מ על 10 ס"מ ותנו לאגר להתקשה במשך 10 דקות בטמפרטורת החדר. חתוך את כרית האגר המוצקה לחלקים קטנים יותר בגודל 1.5 ס"מ על 1.5 ס"מ על ידי הנחת לוח הזכוכית מעל רשת מודפסת וחיתוך לאורך הרשת באמצעות סרגל מתכתי.
- שמור על הג'ל לחים בקופסה לחה עד שהוא מוכן לשימוש.
2. מיקרוסקופיה - הכנת דגימת החיידקים-אמבה להדמיה
- כדי לבדוק את האלימות של תאי חיידקים מחוברים למשטח, הוסף 10 מיקרוליטר של תאי אמבה לחיידקים המחוברים למשטח.
הערה: שלב זה מתאר את ערבוב האמבות עם חיידקים. - כדי לבדוק את אלימות תאי הפלנקטוניים, ערבבו 10 מיקרוליטר של תאי אמבה עם 10 מיקרוליטר של חיידקים פלנקטוניים.
הערה: אין לשטוף את תאי האמבה שגדלו באקסניה (ב-OD600 של 0.2 עד 0.5) לפני ההתערבבות עם החיידקים. לא תצפה גדילה של E. coli בתרבות האמבה עקב השימוש בתמיסת אנטיביוטיקה-אנטי-מיקוטית. - מיד הניחו את כרית האגר של קלציין-AM בגודל 1.5 ס"מ על 1.5 ס"מ משלב 1.5 על תערובת החיידקים-אמבה על משטח צלחת פטרי.
הערה: הנח את כרית האגר מעל התערובת בתנועה מהירה וחלקה. אל תוריד את הכרית לאט על התערובת, שכן תנועה זו נוטה לדחוף את התאים לעבר ההיקף ולהתרחק מתחת לרפוד. שלב זה יבטיח שהחיידקים והאמבות מעורבבים באופן שווה, משתקים, וששני סוגי התאים מוגבלים לאותו מישור. - הסר נוזלים עודפים על ידי פיפיפט עדין של כל נוזל שנותר סביב כרית האגר. תן לצלחת פטרי להתייבש 20 דקות בטמפרטורת החדר.
- כסו את צלחת הפטרי במכסה ודגרו את תערובת האמבה-חיידקים המשותקת בטמפרטורת החדר למשך 40 דקות נוספות. המשך לשלב 3.1.
הערה: חשוב לדגור את כל הדגימות לאותו פרק זמן, שכן הפלואורסצנציה ברקע עולה עם הזמן. מומלץ זמן דגירה של שעה. דגירות שנמשכות יותר משעה פחות ניתנות לשכפול כאשר תאי האמבות עלולים להתחיל להתפוצץ.
3. מיקרוסקופיה - רכישת תמונות
- אמבות תמונות באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנציה המסוגל לצלם תמונות פלואורסצנציה בהירות וירוקות. לפלואורסצנציה ירוקה, השתמשו במסנני חלבון פלואורסצנציה ירוקים (GFP) עם 474/27 ננומטר ו-525/45 ננומטר לגירוי ופליטה, בהתאמה. השתמשו באובייקטיב 10X (≥0.3 נקודה מספרית) כדי לצלם את האמבות.
הערה: הקלצין-AM באגר יגרום לאמבות גוססות לזהור בערוץ הפלואורסצנציה הירוק. אמבות בריאות אינן פלואורסצנטיות. - כוונן את זמני הרכישה עבור ניגודיות פאזה, ערוצי GFP להגבלת פוטוטוקסיות ואופטימיזציה של טווח הדינמי של עוצמות התמונה. אם יש צורך להחליף את ניגודיות הפאזה של הפרעות דיפרנציאליות (DIC).
הערה: השתמש בחשיפות של 100-200 מילישניות לניגוד פאזה ופלואורסצנציה GFP אם אפשר. תשמור על החשיפה והגדרות הכלים ללא שינוי לאורך כל הניסוי. זה קריטי לחישוב מדד הריגת המארח. - לרכוש תמונות לפחות ל-100 תאי אמבה כדי לקבל סטטיסטיקות טובות לחישוב מדד השמדת המארח.