מאמר שיטה

בידוד תאי מזותל: טכניקה לבידוד תאים מזותליים ראשוניים מדגימת רקמת אומנטום אנושית

30 באפריל 2023

במאמר זה

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Peters, P. N. et al. מידול השלבים הראשונים של הפצת סרטן השחלות בתרבות אורגנוטיפית של חלל הצפק האנושי. J. Vis. Exp. (2015)

סרטון זה מתאר את הפרוטוקול לבידוד תאים מזותליים אנושיים ראשוניים מדגימת האומנטום האנושי. ניתן להשתמש בתאי המזותל כדי לבסס מודל סרטן שחלות במבחנה כדי לחקור הידבקות תאי סרטן השחלות, פלישה והתפשטות.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ההליכים המערבים משתתפים אנושיים בוצעו בהתאם להנחיות המוסדיות, הלאומיות והבינלאומיות לרווחת האדם ונבחנו על ידי ועדת הבדיקה המוסדית המקומית.

1. בידוד ותרבית של תאי סטרומה ראשוניים שלא עברו טרנספורמציה

  1. איסוף רקמות אנושיות והכנתן.
    1. השיגו דגימות של אומנטום אנושי, בגודל 2 ס"מ3, שהוסרו במהלך ניתוח בטן, וטבלו מיד רקמות במי מלח חוצצי פוספט RT (PBS) (איור 1A). פיסת אומנטום בגודל 3 ס"מ x 2 ס"מ מניבה בדרך כלל מיליון תאים מזותליים אנושיים ראשוניים (HPMC) ו-200,000 פיברובלסטים אנושיים ראשוניים או פיברובלסטים אומנטליים רגילים (NOF).
    2. סובב את PBS הרקמה היה שקוע ב 0.5 x גרם במשך 3 דקות בהקדם האפשרי לאחר איסוף (< 2 שעות PBS) ולהעביר את הרקמה טרי 20 מ"ל PBS בצינור חרוטי 50 מ"ל. חתכו רקמה לחתיכות בגודל 5 מ"מ3 על-ידי טחינה עם אזמלים בצלחת תרבית סטרילית בקוטר 15 ס"מ (איור 1B).
  2. בידוד ראשוני של תאי מזותל אנושיים
    1. כדי לבודד HPMC, העבירו את הרקמה הטחונה לתוך צינורות חרוטיים של 50 מ"ל והמתינו דקה אחת עד שהחתיכות המוצקות יצופו למעלה (איור 1C ו-D). HPMC ותאי דם אדומים (RBC) יהיו נוכחים בנוזל בתחתית. השתמש פיפטה כדי להסיר את הנוזל מתחתית הצינור לתוך צינור חרוטי חדש. סובבו את הנוזל מטה ב-0.5 x גרם במשך 3 דקות ושאפו את הסופרנאטנט מכדורית HPMC/RBC.
      1. חזור על התהליך שלוש פעמים: הוסף PBS של 20 מ"ל לרקמה הטחונה, אפשר לרקמה לעלות, הסר נוזל מהתחתית עם פיפטה לתוך צינור HPMC/RBC, הסתובב כלפי מטה והסר את הסופרנטנט. לאחר השלמת כל הסיבובים ושאיפת הסופרנאטנט, הגלולה תכיל HPMC ו-RBC.
    2. צלחת את כל התאים מן הגלולה לתוך בקבוק75 ס"מ 2 ב 15 מ"ל של מדיה צמיחה מלאה (DMEM עם 10% סרום בקר עוברי [FBS],1% ויטמינים MEM [93 מ"ג / ליטר], 1% MEM חומצות אמינו לא חיוניות [81.4 מ"ג / ליטר], 1% סטרפטומיצין פניצילין [Pen-Strep, 100 U / ml פניצילין ו 100 מיקרוגרם / מ"ל סטרפטומיצין]).
    3. בצע שטיפת PBS משנית כדי לבודד HPMCs נוספים.
      1. לשטיפת PBS משנית, נערו את הרקמה המוצקה הנותרת ב-200 סל"ד, 37°C למשך 10 דקות ב-20 מ"ל PBS, ולאחר מכן המתינו דקה אחת עד שהרקמה צפה למעלה. מוציאים את הנוזל מתחתית הצינור לתוך צינור חדש, צנטריפוגה ב 0.5 x גרם במשך 3 דקות, ושאפו את supernatant.
      2. צלחת את כל HPMC / RBC מן PBS משני לשטוף נפרד 75 ס"מ2 בקבוק ב 15 מ"ל של מדיה צמיחה מלאה.
    4. כדי לבודד את שאריות HPMC, נער את הרקמה הטחונה במהירות 200 סל"ד, 37 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות ב-20 מ"ל של תמיסת טריפסין 1:1 0.25% 25 mM EDTA:PBS לפי נפח. אפשרו לרקמה לעלות, אספו את הנוזל שבתחתית הצינור לתוך צינור חדש של 50 מ"ל, והסתובבו מטה ב 0.5 x גרם במשך 3 דקות.
      1. שואפים את הסופרנאטנט וצלחת את כל HPMC/RBC בבקבוק נפרד בגודל 75 ס"מ2 ב-15 מ"ל של מצע צמיחה מלא.
    5. תרבית את התאים המצופים בטמפרטורה של 37°C ו-5%CO2 בסביבה לחה. הזנה של תאים מצופים על ידי הוספת 15 מ"ל של מצע צמיחה מלא בימים 3 ו -5 מבלי להסיר את המדיה בילה. HPMC ניתן לתרבית במשך 5-7 ימים לפני פיצול.
      1. השתמש HPMC במעבר נמוך (עד מעבר 2) בכל הניסויים כדי למזער דיפרנציאציה ושינוי של פנוטיפ מקורי. השתמש במיקרוסקופ רחב שדה רצוי עם מטרה 20x עם יכולות ניגודיות דיפרנציאליות פלסטיות או 4-20x אובייקטיבי עם יכולות ניגודיות פאזה (מסנני ניגודיות פאזה במיקרוסקופ) לצילום כל התמונות של תאים, ומטרה 10x () בשדה בהיר כדי לנתח צביעה אימונוהיסטוכימית 3,3'-Diaminobenzidine (DAB).
    6. אשרו שה-HPMC הם קובואידים ומבטאים ציטוקרטין 8 ווימנטין על-ידי ביצוע אימונוהיסטוכימיה (איור 2A, C, E).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
איור 1. בידוד של תאים אומנטליים אנושיים ראשוניים. (A) חתיכת omentum נאספת בניתוח PBS ומועברת למעבדה. הרקמה נפלטת ב 0.5 x גרם x 3 דקות ומועברת PBS טרי. (B) חתיכת האומנטום מועברת לצלחת פטרי בקוטר 10 ס"מ, נשטפת ב-PBS, ואזמלים משמשים לחיתוך האומנטום לחתיכות קטנות (0.5 סמ"ק). (ג-ד) חתיכות הרקמה נאספות באמצעות פיפט...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
PBSפישר סיינטיפיקSH3001304
סכיני גילוח בעלי קצוות בודדיםפישר סיינטיפיק12-640
כלי תרבות בקוטר 15 ס"מBD Biosciences353025
סרום בקר עוברי (FBS)לייף טכנולוגיות16000044_3616914956
DMEM עם L-גלוטמיןקורנינג10-013-CV
ויטמינים MEMקורנינג25-020-CL
MEM חומצות אמינו לא חיוניותקורנינג25-025-CI
פניצילין-סטרפטומיצין קורנינג30-002-CI
שאכרתרמו-פישרMaxQ 4450
צנטריפוגהאפנדורף5702
אינקובטורתרמו-פישרפורמה סדרה II חממת CO2 עם מעיל מים דגם 3100
צלוחיות T-75BD Biosciences353136
צלוחיות T-175BD Biosciences353112
טיפים לפיפטרייניןP2, P10, P20, P200 ו-P1000
מיקרוסקופזיסאקסיוברט 200 מ'
נוגדן αVβ3 נגד אינטגרין, שיבוט LM609EMD MilliporeMAB1976
בטא 1אונקוסינרגיהOS2966
אלפא 5 [CD49e]מזהה Pharmingen555615
בטא 4 [CD104]EMD MilliporeMAB 2058
טיפים לפיפטקורנינגעצות מסוננות P2, P10, P20, P200 ו- P1000
בקבוק זכוכית

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Mesothelial Cell IsolationHuman Omentum TissuePrimary Mesothelial CellsTissue MincingDensity SeparationCell CentrifugationGrowth Medium IncubationLight Microscopy ObservationCytokeratin 8 ExpressionVimentin Expression

מאמרים קשורים