מאמר שיטה

המרת ביסולפיט של DNA גנומי: שיטה לחקר מתילציה של DNA בדגימות DNA גנומיות מרקמת סרטן מערכת העיכול

30 באפריל 2023

במאמר זה

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Bonetto, A. et al. עכבר נושא גידולי קרצינומה של המעי הגס-26 כמודל לחקר סרטן Cachexia. J. Vis. Exp. (2016)

סרטון זה מדגים את הליך שינוי ביסולפיט של DNA גנומי מדגימות סרטן מערכת העיכול. הטכניקה מועילה לחקר הקשר בין דפוסי המתילציה של גנים וביסוס תרומתם לסרטן.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. טיפול ביסולפיט

  1. השתמש 45 μL של תמיסת רקמה מעוכל כמו הדגימה.
  2. ביצוע הטיפול בביסולפיט באמצעות ריאגנטים בערכת המרה ביסולפיט בהתאם להוראות היצרן (ראה טבלת חומרים).
    1. הוסף 5 μL של חיץ דילול לדגימת ה- DNA ודגור ב- 37 ° C למשך 15 דקות (ראה טבלת חומרים).
    2. בזמן הדגירה, הכינו את מגיב ההמרה ביסולפיט על ידי הוספת 750 μL של dH2O ו-210 μL של חיץ דילול לצינור אחד של מגיב המרת CT (ראה טבלת חומרים). מערבבים את הצינורות על ידי ערבול במשך 10 דקות.
    3. לאחר הדגירה של 15 דקות, מוסיפים 100 μL של מגיב המרת CT מוכן לכל דגימה ומערבבים על ידי היפוך.
    4. לדגור על הדגימות בחושך ב 50 ° C במשך 12 עד 16 שעות.
    5. לאחר הדגירה, להסיר את הדגימות ולהניח אותם על קרח במשך 10 דקות.
    6. הוסף 400 μL של חיץ קשירה וערבב כל דגימה על ידי פיפטציה למעלה ולמטה (ראה טבלת חומרים). טען כל דגימה לעמודת ספין ומקם את העמודה בצינור איסוף של 2 מ"ל (ראה טבלת חומרים).
    7. צנטריפוגו כל דגימה במהירות מלאה (10,000 x גרם) למשך דקה אחת והשליכו את הזרימה.
    8. הוסף 200 μL של חיץ כביסה לכל עמודה וסובב במלוא המהירות במשך דקה אחת, תוך השלכת הזרימה (ראה טבלת חומרים).
    9. הוסף 200 μL של חיץ desulfonation לכל עמוד ולאפשר לעמוד בטמפרטורת החדר במשך 15 דקות (ראה טבלה של חומרים). לאחר הדגירה, סובבו את העמודים במלוא המהירות למשך דקה אחת והשליכו את הזרימה.
    10. הוסף 200 μL של חיץ כביסה לכל עמוד וסובב במהירות מלאה במשך דקה אחת (ראה טבלת חומרים).
    11. חזור על שלב זה פעם נוספת.
    12. הוסף 46 μL של dH2O לכל עמודה ומקם כל עמודה בצינור פוליפרופילן חד-פעמי סטרילי חדש בנפח 1.5 מ"ל (ראה טבלת חומרים). סובב כל צינור במשך 2 דקות כדי לנטרל את ה- DNA.
  3. הסר כל עמודת ספין מצינור הפוליפרופילן החד-פעמי והשלך (ראה טבלת חומרים). הדנ"א מוכן כעת לניתוח.

2. PCR כמותי ספציפי למתילציה (qMSP)

  1. השתמש ב- DNA ששונה על ידי ביסולפיט משלב 1.3 כתבנית עבור PCR בזמן אמת מבוסס פלואורסצנטיות ב- qMSP כדי להעריך מתילציה של האזור המקדם בכל ניתוח גנים.
  2. בצע qMSP באמצעות מכשיר PCR בזמן אמת של 96 בארות (ראה טבלת חומרים).
    1. בדוק את מצב המתילציה של המקדם של גן המטרה על ה- DNA שעבר שינוי ביסולפיט באמצעות פריימר קדמי של 200 ננומטר, פריימר הפוך של 200 ננומטר ובדיקות של 80 ננומטר. הכן את תערובת האב עם 16.6 mM (NH4)2SO4, 67 mM Tris pH 8.8, 10 mM β-mercaptoethanol, 10 nM fluorescein, 0.166 mM של כל deoxynucleotide triphosphate, ו 0.04 U/μl של DNA פולימראז (ראה טבלה של חומרים). נפח התגובה הסופי בכל באר עבור כל הבדיקות הוא 25 μL.
    2. בצע מחזור של qMSP באופן הבא: 95 ° C במשך 5 דקות, ואחריו 55 מחזורים של 95 ° C במשך 15 שניות, 60 ° C במשך דקה אחת, ו 72 ° C עבור 1 min.
      הערה: יש לבחור את גן היעד על סמך הקריטריונים של ערכי בטא גדולים יותר, להיות קשור לאיי CpG באזור המקדם, ולהיות מתאים לפריימר ועיצוב בדיקה עבור qMSP.
  3. השתמש בגנומי אנושי שטופל ב- CpG Methylase (M.SssI) כבקרת מתילציה חיובית (ראה טבלת חומרים).
    הערה: הכימות הסופי של מתילציה מוגדר כערך המתילציה היחסי (RMV) ומחושב כ-2-ΔΔCt עבור כל העתק של זיהוי מתילציה בהשוואה לממוצע Ct עבור β-Actin (ACTB). רצפי פריימר ובדיקה מוצגים בטבלה 1. Ct של 100 משמש עבור עותקים משוכפלים שלא זוהו, אשר נותן ערך של 2-ΔΔCt קרוב לאפס. נעשה שימוש בנוסחה הבאה:
    ממוצע 2–ΔΔCt (RMV) = (2–ΔΔ Ct_replicate_1 + 2–ΔΔ Ct_replicate_2 + 2–ΔΔ Ct_replicate_3)/3.
TT
גןקדימה 5' - 3'הפוך 5' - 3'בדיקה
בי-אקטיןתג GGA GTA TAT AGG TTG GGG AAG TTAAC ACA CAA TAA CAA ACA CAA ATT CAC\56-FAM\ TGT GGG GTG \ZEN\ GTG ATG GAG GAG GTT TAG \3IABkFQ\
EPB41L3GGG ATA GTG GGG TTG ACG CATA AAA ATC CCG ACG AAC GAAAA TTC GAA AAA CCG CGC GAC GCC GAA ACC A

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
(NH4)2SO4סיגמא-אולדריץ'14148
10% נתרן דודציל סולפט (SDS)351-032-721 EA
100% אתנולסיגמא-אולדריץ'24194
מערכת PCR בזמן אמת ABI StepOnePlusאפלייד ביוסיסטמס4376600 מכשיר PCR בזמן אמת 96 בארות
מגיב המרת CTמחקר זימוD5001-1
דאוקסינוקלאוטיד טריפוספט (dNTP)Invitrogen10297-018
מים שטופלו ב-DEPCמים שטופלו ב-DEPC351-068-131
חומצה אתילאנדיאמיןטטראצטית (EDTA)קורנינג46-034-CL
ערכת מתילציה של EZ DNAמחקר זימוD5002
דנ"א גנומי אנושימעבדות ביו של ניו אינגלנדN4002S
בדיקת Infinium Human Methylation 450אילומינהWG-314פלטפורמת מערך להערכה מורכבת של מתילציה של DNA להערכת מצב המתילציה של >450,000 אתרי CpG בגנום
מחזור אור 480רוש5015278001
מאגר כריכת Mמחקר זימוD5002-3
M-Desulphonation Bufferמחקר זימוD5002-5
M-Dilution Bufferמחקר זימוD5002-2
M-Wash Bufferמחקר זימוD5002-4
פרוטאינאז Kמעבדות ביולוגיות של ניו אינגלנדP8107S
צינור פוליפרופילן חד-פעמי (Eppendorf)אפנדורף24533495
טריס הידרוכלוריד (Tris-HCL) 2 M pH 8.8איכות ביולוגית351-092-101
Zymo ספין 1 עמודהמחקר זימוC1003
β-מרקפטואתנולסיגמא-אולדריץ'M3148
פלואורסצאיןביו-ראד#1708780
פלטינום Taq פולימראזתרמופישר סיינטיפיק10966-034

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Methylation AnalysisSpin Column PurificationQuantitative MSPReal time PCRMethylation ProfileCytosine Residues

מאמרים קשורים