1. הקלטת זרמי קטיון המושרים על ידי מדרגת מתח מתאי DSM באמצעות טכניקת תיקון מתח תא שלם מחורר Amphotericin-B
- פיפטה 0.25-1 מ"ל של תרחיף תאים על תא תחתית זכוכית יושב על במה של מיקרוסקופ הפוך ומאפשר לתאים להיצמד לתחתית הזכוכית.
- לאחר הדגירה של 45 דקות לפחות, יש להסיר את תמיסת העיכול (DS) מהאמבטיה ולהחליף בתמיסת E (טבלה 1) באיחוי כאשר זרימת התמיסה בעזרת כוח הכבידה באמצעות צינורות כניסה מחליפה באיטיות את DS בתמיסה החדשה, בעוד צינורות יציאה המחוברים לכלי פסולת ואקום מסירים את תמיסת התא ומונעים הצפה.
הערה: תמיסת E מכילה יוני טטראתילמוניום (TEA+) וצזיום (Cs+) לעיכוב זרמי K+.
- הכן תמיסת מלאי עבודה של amphotericin-B ב dimethyl sulfoxide (DMSO) (1 מ"ג לכל 10 μL של DMSO). כדי להמיס לחלוטין אבקת אמפוטריצין, סוניקציה (לפחות 15 דקות) ולערבל את התמיסה היטב.
הערה: שלב זה אורך בדרך כלל פחות מ-10 דקות. המסת 3-4 מ"ג של אמפוטריצין-B ב-30-40 מיקרוליטר של DSMO בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מ"ל עובדת היטב. כמויות גבוהות יותר של אמפוטריצין-B דורשות יותר ממס DSMO בדרך כלל וכתוצאה מכך מרווח זמן ארוך יותר לערבוב ומסיסות חלקית של חלקיקי מוצק אמפוטריצין-B הנמצאים בצינור.
- יש להמיס תמיסת מלאי של אמפוטריצין-B בתמיסת פיפטה (תמיסה P, טבלה 1) לקבלת ריכוז סופי של 200-500 מיקרוגרם/מ"ל. שלב זה דורש סוניקציה נרחבת ומערבולות במהירות גבוהה (8-10/10) במשך ~30 עד 60 דקות לכל צעד כדי להבטיח ערבוב אופטימלי ומניעה של היווצרות משקעים אמפוטריצין-B בתמיסת פיפטה.
הערה: אמפוטריצין-B יזרז עם הזמן והוא רגיש לאור. תמיסת פיפטה עובדת המכילה Amphotericin-B נבדקת למסיסות, מעורבבת ידנית לפני מילוי פיפטה, ונשמרת בחושך.
- משכו אלקטרודות טלאי מרובות, קצוות אלקטרודות ללק אש, ובמידת הצורך צפו את הקצוות בשעווה דנטלית.
- מלא את קצה אלקטרודת המדבקה בתמיסת פיפטה (תמיסה P, טבלה 1) ללא אמפוטריצין-B על ידי טבילה קצרה של האלקטרודה בתמיסה.
- מלאו את האלקטרודה באותה תמיסת פיפטה המכילה אמפוטריצין-B.
- הרכיבו את האלקטרודה על מחזיק המחובר לראש מגבר מהדק טלאי.
- באמצעות מיקרומניפולטור, מקם את האלקטרודה ממש מתחת לפני השטח של התמיסה החוץ תאית כך שקצה האלקטרודה פשוט שקוע.
- במצב מהדק מתח, הגדר את פוטנציאל ההחזקה ל- 0 mV וכוונן את הזרם ל- 0 pA באמצעות חוגת היסט פיפטה במגבר המסחרי (Table of Materials).
- קבע את התנגדות האלקטרודות באמצעות חלון בדיקת הממברנה/הפונקציה של תוכנת הרכישה המסחרית (Table of Materials). כדי להפעיל, לחץ על Tools>Membrane Test>Play או על סמל קיצור דרך בתוכנה. התנגדות האלקטרודה שנקבעה צריכה להיות בטווח של 2 עד 5 MΩ.
הערה: ניתן להשתמש בפונקציית בדיקת ממברנות המסופקת בתוכנת הרכישה המסחרית או באפשרות בדיקת האטימה במגבר כדי לנטר את התנגדות האלקטרודה על ידי הפעלת מדרגות מתח באופן חוזר.
- המשיכו לעקוב אחר התנגדות האלקטרודות תוך כדי קידום האלקטרודה לעבר תא DSM נבחר בעזרת מיקרומניפולטור (איור 1A).
הערה: כדי להיחשב לתא DSM בר קיימא, התא חייב להראות מורפולוגיה מוארכת בצורת ציר, הילה מוגדרת היטב סביב התא, קצוות חדים ומראה חצי מתכווץ (סרפנטין).
- כאשר נוגעים במשטח התא עם האלקטרודה – המסומנת על ידי עלייה מהירה בהתנגדות האלקטרודה הנמדדת באמצעות פונקציית בדיקת הממברנה – יוצרים חותם ג'יגה על ידי הפעלת לחץ שלילי מהיר עדין על מחזיק האלקטרודה באמצעות צינור. התוצאה היא לחץ שלילי שנוצר בקצה האלקטרודה שמושך את קרום התא לתוך האלקטרודה, מה שמסייע להיווצרות חותם ג'יגה, או מגע הדוק מאוד בין האלקטרודה לקרום הפלזמה (איור 1B).
- ברגע שחותם הג'יגה נוצר, פצה על קיבול פיפטה על ידי התאמת חוגות מהירות ואיטיות, במגבר המסחרי ונטר יציבות ג'יגה-אטם (זרם דליפה) באמצעות פונקציית בדיקת הממברנה.
- תנו זמן, בדרך כלל 30-60 דקות, לאמפוטריצין-B להתפזר במורד פיפטה ולהיות מוכנס לתוך קרום הפלזמה וליצור נקבוביות סלקטיביות בעיקר לקטיון חד-ערכי. במהלך שלב זה, המשך לעקוב אחר חותם הג'יגה עם פונקציית בדיקת הממברנה. ככל שניקוב התא גדל, כך גדלה המשרעת של מעברי הקיבול (השוו את איור 1B לעומת איור 1C המציג ניקוב תאים ללא ניקוב יעיל, בהתאמה) שנמדדה באמצעות פונקציית בדיקת הממברנה.
- כאשר ניקוב התיקון הוא אופטימלי (נשפט על פי התנגדות סדרה יציבה בדרך כלל מתחת ל- 50 MΩ), בטל את מעברי הקיבול על ידי התאמת החוגות לקיבול התא והתנגדות הסדרה במגבר. פיצוי התנגדות סדרתי יכול להתבצע גם בשלב זה (איור 1D).
- לאחר שנצפו זרמי קטיון המושרים על ידי שלב מתח יציב המתעוררים על ידי הפרוטוקול שצוין, יש להחיל תרכובת או מצב פיזיולוגי לבדיקה על ידי עירוי ולתעד את התגובות לשליטה, למצב הבדיקה ולשטיפה (במידת האפשר) באמצעות תוכנת הרכישה המסחרית.
- הקלט זרמים באמצעות פרוטוקול מתח שלב שגרתי הכולל החזקת תאי DSM ב -64 או -74 mV והגברת המתח במרווחים של 10 mV במשך 400 או 500 מילישניות מ -94 ל +96 או +106 mV וחזרה לפוטנציאל ההחזקה.
הערה: ערכי פוטנציאל הממברנה מותאמים לפוטנציאל צומת נוזלי של 14 mV (באמצעות פתרונות P ו- E, טבלה 1). פוטנציאל הצומת הנוזלי מתקבל בתוכנת הרכישה המסחרית (Table of Materials) על ידי לחיצה על Tools>Junction Potentials והזנת ריכוזי רכיבי יוני התמיסה. פרוטוקול רמפה יכול לשמש גם כדי להשיג הקלטות נוכחיות.
- הפעל את פרוטוקול המתח במרווח רציף ~ 1 דקות במהלך ניסוי הקלטת זרמים לבקרת טרום חיבור, מצב הבדיקה ושטיפה
| סוג הפתרון | הרכב (ב mM) |
| DS (דיסקציה/תמיסת עיכול) | 80 Na-גלוטמט, 55 NaCl, 6 KCl, 10 HEPES, 2 MgCl2 ו-11 גלוקוז, pH מותאם ל-7.4 (עם 10M NaOH) |
| DS-P (DS המכיל פפאין) | DS המכיל 1-2 מ"ג/מ"ל פפאין, 1 מ"ג/מ"ל דיתיותרייטול ו-1 מ"ג/מ"ל אלבומין בסרום בקר |
| DS-C (DS המכיל Collagenase) | תמיסת DS המכילה 1-2 מ"ג/מ"ל קולגנאז סוג II, אלבומין בסרום בקר במינון 1 מ"ג/מ"ל, מעכב טריפסין 0 או 1 מ"ג/מ"ל ו-100-200 מיקרומטר Ca2+ |
| P (פיפטה) | 110 CsOH, 110 חומצה אספרטית, 10 NaCl, 1 MgCl2, 10 HEPES, 0.05 EGTA ו-30 CsCl, pH מותאם ל-7.2 עם CsOH, בתוספת אמפוטריצין-B (300-500 מיקרוגרם/מ"ל) |
| E (חוץ-תאי) | 10 טטראתילמוניום כלוריד (TEA), 6 CsCl, 124 NaCl, 1 MgCl2, 2 CaCl2, 10 HEPES ו-10 גלוקוז, pH מותאם ל-7.3-7.4 עם NaOH או CsOH, ו-0.002-3 (2-3 מילימטר) ניפדיפין |
טבלה 1: הרכבי תמיסת דיסקציה/עיכול (DS), ותמיסות פיפטה ותמיסות חוץ-תאיות המשמשות בניסויי מהדק טלאי מחורר.