כל הנהלים הנוגעים למודלים של בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.
1. הכנה
- יצירת עכברי מחיקת Raptor ספציפיים לאוסטאוקלסט (Raptorfl/fl; Ctsk-cre, להלן RapCtsk) על ידי הזדווגות עכברי Raptorfl/fl עם עכברי Ctsk-cre. השתמש בעכברי Raptor fl/fl כבקרת WT במחקר זה.
- יש מיכל עם קרח כדי לשמור על עצם מבודדת.
- הכינו מדיום תרבות.
- הכינו מדיום תרבית α-MEM על ידי תוספת אלפא בינונית חיונית מינימלית (α-MEM) עם 1x גלוטמין, פניצילין-סטרפטומיצין וסרום עגל עוברי 10%.
- הכינו מדיום השראת מקרופאגים של מח עצם המורכב מ-50 מ"ל של מדיום α-MEM ו-M-CSF ב-20 ננוגרם/מ"ל.
- הכינו מדיום אינדוקציה אוסטאוקלסט המורכב מ-M-CSF ו-RANKL ב-20 ננוגרם/מ"ל, בהתאמה, ב-50 מ"ל של מדיום α-MEM.
- הכינו את המאגרים הבאים לפני צביעת TRAP.
- הכן תמיסת תיקון המורכבת מ 6.5 מ"ל של אצטון, 2.5 מ"ל של תמיסת ציטראט ו 0.8 מ"ל של 37% (vol/vol) תמיסת פורמלדהיד.
- הכינו תמיסת צביעת TRAP.
- מים דה-יוניים חמים מראש ל 37 °C (75 °F).
- הוסף 100 μL של תמיסת בסיס GBC מהירה של גארנט ו- 100 μL של תמיסת נתרן ניטריט למיקרו-צינורית של 1.5 מ"ל וערבב בהיפוך עדין במשך 30 שניות. השאירו את התערובת לעמוד למשך 2 דקות.
- חימום מראש של 9 מ"ל מים נטולי יונים, עד 37°C. הוסף 200 μL של תמיסת בסיס GBC מהירה של גארנט דיאזוטי משלב 1.4.2.2, 100 μL של תמיסת פוספט AS-BI naphthol, 400 μL של תמיסת אצטט ו- 200 μL של תמיסת טרטרט.
- יש לשמור את תמיסת תערובת הכתמים TRAP באמבט מים בטמפרטורה של 37°C.
2. דיסקציה (יום-1)
- הרדימו 3 עכברי WT ו-Rap Ctsk נקבות בנות חודש על ידי CO2 בנפרד. בצע שאיפת CO2 עם ציוד מתאים על ידי צוות מיומן.
- יש לטבול 6 עכברים בכד עם 100 מ"ל אתנול 75% (vol/vol) למשך 5 דקות כדי למנוע זיהום חיידקי ולאחר מכן להניח על לוח דיסקציה במצב שכיבה. בצע חתך ב distal של השוקה אנכית לנתח את העור לאורך הגפה האחורית עם מספריים אופתלמיים.
- חותכים את הרצועה המפרקית של מפרק הירך במספריים ומנתקים את הגפיים האחוריות מתא המטען.
- חותכים את הרצועה המפרקית של מפרק הברך ומנתקים בזהירות את השוקה ועצם הירך ממפרק הברך. מוציאים בעדינות את הרקמה הרכה בעזרת מספריים.
- מניחים את כל העצמות של גנוטיפ אחד בתוך עכבר אחד בכל באר של צלחת שש בארות עם 2 מ"ל של α-MEM על קרח.
הערה: כדי לשמר את יכולת הקיום של התא, העצם צריכה להישמר בתנאים אלה פחות משעה אחת.
3. בידוד (יום-1)
- מלא באר אחת של צלחת שש בארות עם 75% אתנול (3 מ"ל) ואת 5 בארות אחרות עם α-MEM בינוני (3 מ"ל).
- שים את כל העצמות של גנוטיפ אחד באתנול לשטוף במשך 15 שניות ולשטוף עצמות 5 פעמים עם מדיום α-MEM במשך 10 שניות בכל פעם.
- חותכים את האפיפיזה עם המספריים ומחדירים מחט מזרק בקוטר 0.45 מ"מ לחלל העצם ומוציאים מח מוח עם מדיום α-MEM לתוך צינור צנטריפוגה בנפח 50 מ"ל.
- יש לשטוף את חלל העצם באותה שיטה מהקצה השני של העצם. חזור על הפעולה לפחות פעמיים כדי לשטוף היטב את חלל העצם עד שהעצם חיוורת.
- צנטריפוגה את מח העצם כדי לקבל גלולת תא ב 800 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות. שאפו את supernatant.
- הוסף 3 מ"ל של חיץ ליזה של תאי דם אדומים לתוך צינור הצנטריפוגה פיפטה בעדינות כדי להשעות מחדש את מח העצם. שמור את צינור הצנטריפוגה על קרח במשך 8 דקות כדי ליזה תאי דם אדומים.
- הוסף 6 מ"ל של תווך α-MEM לצינור הצנטריפוגה כדי לעצור את ליזה התא. צנטריפוגה ב 500 x גרם ו 4 ° C במשך 10 דקות ולשאוף את supernatant.
- יש להשהות מחדש ב-3 מ"ל של מדיום תרבית α-MEM ולמקם את התאים בצלחת בעלת שש בארות (בדרך כלל עכבר אחד לכל באר).
- יש לדגור בטמפרטורה של 37°C באינקובטור של 5% CO2 למשך הלילה.
4. ציפוי (יום 0)
- העבירו את הסופרנאטנט לצינור צנטריפוגה בנפח 15 מ"ל כדי לאסוף את התאים הלא מחוברים למחרת בבוקר.
- צנטריפוגה ב 800 x גרם ו 4 ° C במשך 5 דקות ולשאוף את supernatant.
- השהיה מחדש ב-4 מ"ל של מדיום תרבית α-MEM.
- קח 20 μL של תמיסת התא ולערבב עם 20 μL של Trypan כחול. הוסף 10 μL של התערובת לתא הספירה ולקבל את ספירת התאים לכל מ"ל של תמיסה.
- הוסף נפח מתאים של מדיום תרבית α-MEM כדי לקבל תמיסה תאית של 500,000 תאים/מ"ל.
- הוסף 500 μL ו- 50 μL של מדיום השראת מקרופאגים של מח עצם לכל באר של צלחת 24 בארות וצלחת 96 בארות, בהתאמה.
- הוסף 500 μL ו- 50 μL של תמיסת תאים לכל באר של צלחת 24 באר וצלחת 96 בארות, בהתאמה.
- דגירה ב 37 ° C באינקובטור 5% CO2 במשך 3 ימים.
5. בידול (ימים 3-7)
- שלושה ימים לאחר הציפוי, לאסוף 50 μL בינוני מכל באר של צלחת 96-באר ולהקפיא ב -20 ° C, ולאחר מכן לשאוף את התווך השיורי
.
- הוסף 1 מ"ל ו 100 μL אוסטאוקלסט אינדוקציה בינוני לתוך כל באר של צלחת 24 באר צלחת 96 באר, בהתאמה.
- לדגור ב 37 ° C במשך 2 ימים.
- לאסוף 50 μL של מדיום מכל באר ולשאוף את התווך השיורי.
- הוסיפו מדיום אינדוקציה אוסטאוקלסטים לכל באר.
- דגירה ב 37 °C למשך יום אחד.
הערה: בנקודת הזמן הזו יש לראות אוסטאוקלסטים גדולים ומרובי גרעינים תחת מיקרוסקופ הפוך (איור 1A).
- אם לא רואים אוסטאוקלסטים, שנו את מדיום השראת האוסטאוקלסטים והתבוננו מדי יום עד שיראו אוסטאוקלסטים.
- אספו 50 מיקרוליטר של מדיום מכל באר של צלחת 96 בארות לאחר שנוצרו אוסטאוקלסטים.
6. צביעת פוספטאז חומצה עמידה לטרטרט (TRAP)
הערה: אוסטאוקלסטים בוגרים עשויים להיות נוכחים לאחר 6-7 ימים של תרבית חוץ גופית (שלב 4).
- יש לשאוף בינוני ולשטוף בעדינות 3 פעמים עם PBS אחד.
- תקן את התאים בכל באר של צלחת 96 באר עם 100 μL של פתרון לתקן עבור 30 s בטמפרטורת החדר.
- לאחר הקיבוע, יש לשאוף את תמיסת התיקון ולשטוף בעדינות 3 פעמים במים נטולי יונים, שחוממו מראש ל-37°C. יש לשאוף מים נטולי יונים.
- הוסיפו 100 μL של כתם TRAP לכל באר של צלחת 96 בארות והניחו את הצלחת באינקובטור בטמפרטורה של 37°C למשך 30 דקות והגנו מפני אור.
- לאחר הצביעה, יש לשאוף את כתם ה-TRAP ולשטוף בעדינות 3 פעמים במים נטולי יונים.
- תמונה אוסטאוקלסטים באמצעות מיקרוסקופ הפוך בהגדלה של פי 40.