Method Article

בדיקת ספיגת שלפוחית חוץ-תאית: שיטה לדמיין ולכמת ספיגה תאית של שלפוחיות חוץ-תאיות באמצעות טכניקת הדמיה פלואורסצנטית תלת-ממדית

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Kim, C. J., et al., Extracellular Vesicle Uptake Assay via Confocal Microscope Imaging Analysis. J. Vis. Exp. (2022).

בסרטון זה, אנו מדגימים בדיקה כדי לדמיין ולכמת את הספיגה התאית של שלפוחיות חוץ-תאיות או EVs. בדיקה זו עושה שימוש בהדמיה פלואורסצנטית תלת-ממדית באמצעות מיקרוסקופ קונפוקלי ומאפשרת להבחין בין כלי רכב חשמליים מופנמים לבין רכבים חשמליים המודבקים לפני השטח של התא.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. בידוד EV ותיוג EV חיסוני-פלואורסצנטי על שבב

  1. איסוף מדיה של תרביות תאים (CCM) ועיבוד מקדים של CCM לבידוד EV
    1. זרע תאי PC3 במפגש של 30% בצלוחית תרביתתאים בגודל 75 ס"מ. אפשר לתאי הבקרה לגדול למפגש של 90% (~ 48 שעות) במדיה סטנדרטית ובתוספים ספציפיים לקו התא.
      הערה: כדי למנוע מרכיבים המכילים EV להשפיע על ספיגת התאים (כלומר, נסיוב בקר עוברי), השתמשו במדיה ובתוספים דלילי אקסוזום.
    2. קצור את CCM.
    3. צנטריפוגו את ה-CCM במהירות של 1000 x גרם למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר (RT) כדי לשלשל תאים לא מחוברים ופסולת גדולה שנקטפה עם המדיה. מעבירים את הסופרנאטנט לצינור חרוטי חדש.
    4. בצינור החדש, צנטריפוגה את הסופרנאטנט במהירות של 10,000 x גרם למשך 20 דקות ב -4 מעלות צלזיוס כדי לפלוט פסולת קטנה יותר וגופים אפופטוטיים שנותרו במדיה. חלק מכלי הרכב החשמליים הגדולים יותר ייפלטו. מעבירים את הסופרנאטנט לצינור חדש.
    5. סנן את הסופרנאטנט דרך מזרק הידרופילי פוליווינילידן פלואוריד (PVDF) 0.45 מיקרומטר מסנן ממברנה.
      הערה: אם לא מעבדים מיד CCM לבידוד EV, אחסנו את CCM המעובד מראש בטמפרטורה של -80°C עד לביצוע הבידוד. במקרה של הקפאה, הגבילו את מחזורי ההקפאה-הפשרה למחזור אחד.
  2. בידוד EV מ-CCM באמצעות התקן מיקרופלואידי מבוסס ננו-סינון
    1. אם קפואים, הפשירו לחלוטין CCM ומערבולות במשך 30 שניות לפני שלב 1.2.2.
    2. הזריקו 1 מ"ל של CCM מעובד מראש (שלב 1.1) לתוך תא הדגימה של התקן מיקרופלואידי מבוסס ננו-סינון (ראה טבלת חומרים).
      הערה: בצע את הליך ההפעלה הסטנדרטי עבור התקן מיקרופלואיד מבוסס ננו-סינון.
    3. סחרור במהירות 3000 סל"ד במשך 10 דקות במכונת הספינינג העליונה (ראה טבלת חומרים) כדי להפעיל את ההתקן המיקרופלואידי.
      הערה: אם CCM נשאר בתא הדגימה לאחר ההפעלה הראשונית, בצע סיבובים נוספים עד שכל CCM יתרוקן מתא הדגימה.
    4. הסר את הנוזל מתא הפסולת על ידי צנרת וחזור על שלבים 1.2.1, 1.2.2 ו- 1.2.3 פעמיים.
      הערה: בסך הכל, 3 מ"ל של CCM יעובדו לבידוד EV.
    5. הזריקו 1 מ"ל מלח חוצץ פוספט (PBS) לתוך תא הדגימה כדי לשטוף את כלי הרכב החשמליים המבודדים. ספין במכונת הטווייה העליונה להפעלת המכשיר המיקרופלואידי כאמור בשלב 1.2.3. אתר את כלי הרכב החשמליים הטהורים בממברנה של המכשיר.
      הערה: איכות כלי הרכב החשמליים שבודדו מהתקן מיקרופלואיד מבוסס ננו-סינון, באופן ספציפי, אושרה והושוותה לשיטת UC הקונבנציונלית על ידי מיקרוסקופ אלקטרונים תמסורת (TEM), מיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM), ניתוח מעקב אחר ננו-חלקיקים (NTA), מיקרוסקופ תאורה מובנה, בדיקת אימונוסורבנט מקושרת אנזימים ו-PCR בזמן אמת במחקר הקודם.
  3. תיוג אימונופלואורסצנטי של EV באמצעות התקן מיקרופלואידי מבוסס ננו-סינון (איור 1)
    1. בחר נוגדן ספציפי לרכב חשמלי בהתאם למטרת הבדיקה (ראה טבלת חומרים).
      הערה: נוגדנים מסוימים עלולים להפריע לאתרי קשירת ליגנדים ספציפיים למסלולי ספיגת EV (כלומר, אנדוציטוזה).
    2. יש להזריק 1 מיקרוגרם/מ"ל של הנוגדן הספציפי ל-EV לתוך חור ה-elution של המכשיר המכיל 100 μL של כלי רכב חשמליים מבודדים.
    3. יש לדגור במשך שעה אחת בחושך ב-RT על שייקר הצלחת כדי להבטיח פיזור אחיד של הנוגדן על פני הדגימה.
    4. הצמידו סרט הדבקה לחור ההדבקה. הזריקו 1 מ"ל PBS לתא הדגימה כדי לשטוף את שאריות הנוגדנים.
    5. סובב את ההתקן במהירות 3000 סל"ד עד שתא הדגימה יתרוקן. הסר כל נוזל מתא האשפה על ידי צנרת. הזריקו 1 מ"ל PBS לתא הדגימה.
      הערה: כלי רכב חשמליים בעלי תווית פלואורסצנטית ימוקמו בתא הממברנה.
    6. פיפטה של כלי רכב חשמליים המסומנים באופן פלואורסצנטי (איור 2) מתא הממברנה לצינור ענבר. יש לחסום מאור עד לשימוש.

2. דגירה של תאים עם סימון פלואורסצנטי של כלי רכב חשמליים לבדיקת ספיגת EV

  1. זריעת תאי יעד ותרבית על צלחות תואמות תרבית תאים.
    1. זרע 1 x 104 תאי PC3 לתוך צלחת microslide 8-well (9.4 x 10.7 מ"מ עבור כל באר) עם 0.2 מ"ל של מדיה או 4 x 104 תאי PC3 לתוך צלחת 35 מ"מ עם 1 מ"ל של מדיה. לוחצים את התאים לצלחת תואמת תרבית תאים המורכבת מכיסוי דק (עובי: 0.18 מ"מ).
      הערה: הכיסוי הדק ממזער את הפיזור השלילי של האור.
    2. אפשרו לתאים להיצמד למשך הלילה בתנאי תרבית תאים אופטימליים (37°C, ריכוזCO2 5%, 90% לחות).
    3. יש לשטוף תאים שהודבקו פעמיים באמצעות מדיה מדולדלת אקסוזום (המתוארת בשלב 1.1.1).
  2. דגירה של תאים עם כלי רכב חשמליים בעלי תווית פלואורסצנטית.
    1. מדוד את הריכוז של כלי רכב חשמליים המסומנים באופן פלואורסצנטי (שלב 1.3.5) על-ידי ניתוח מעקב אחר ננו-חלקיקים (NTA, איור 3). לקבוע את הריכוז האופטימלי של כלי רכב חשמליים המסומנים פלואורסצנטית שיש להוסיף לתאים בתרבית (שלב 2.1.2).
    2. דללו את כלי הרכב החשמליים המסומנים באופן פלואורסצנטי במדיה מדולדלת אקסוזום כדי להתאים לריכוז הרצוי שנמדד בשלב 2.2.1. (כלומר, 7.80 x 109 כלי רכב חשמליים (בערך נת"ע) ב-200 מיקרוליטר של מדיה מדולדלת אקסוזומים.)
    3. הוסף את כלי הרכב החשמליים המדוללים (שלב 2.2.2) לתאי המטרה המודבקים שהוכנו ב-2.1.2. דגירה לזמן ניסוי (כלומר, 4, 8 או 12 שעות).
    4. שטפו תאים שלוש פעמים במדיה נטולת אקסוזום כדי להסיר EVs.
      שאינם מופנמים הערה: אופציונלי: ניתן לקבע תאים לאחר שטיפה.
    5. יש לתייג את הציטופלסמה של התאים המודבקים ב-1 מיקרוגרם/מ"ל של CMTMR ((5-(ו-6)-((4-כלורומתיל (בנזואיל)אמינו) טטרמתילרודמין) (ראו טבלת חומרים) ולדגור בתנאים אופטימליים של תרבית תאים (37°C, ריכוז CO2 5%, 90% לחות).
      הערה: צבעי אזור התא צריכים להיות פלואורסטיים בנפרד מכלי רכב חשמליים מסומנים כדי לסייע בקביעת המיקום המרחבי (מופנם או שטחי) של כלי הרכב החשמליים שעברו זינוק במהלך בדיקת ספיגת הרכב החשמלי.
    6. יש לשטוף את התאים המסומנים פעמיים במדיה מרוקנת אקסוזום כדי להסיר את שאריות הצבע. הוסף מדיה טרייה מדולדלת אקסוזום לתאים כהכנה לדימות קונפוקלי של תאים חיים.

3. מיקרוסקופ קונפוקלי

  1. כדי לבצע הדמיה של תאים חיים, השתמש באינקובטור על הבמה כדי לשמור על תנאי תרבית תאים אופטימליים (37 ° C, ריכוז 5% CO2, 90% לחות).
  2. מניחים את התאים המוכנים באינקובטור על הבמה.
  3. הגדר את פרמטרי ההדמיה בהתבסס על דגימות בקרה.
    הערה: דגימות הבקרה המוצעות כוללות: כלי רכב חשמליים המסומנים באופן פלואורסצנטי בלבד, תאים המסומנים באופן פלואורסצנטי, כלי רכב חשמליים ללא תווית ותאים ללא תווית.
  4. קבע את עומק תאי היעד ואת טווח גודל הערימה בכיוון z כדי לקבל תמונות קונפוקליות תלת-ממדיות.
    הערה: העובי של ערימת Z הוא 1 מיקרומטר. רכישת התמונה התלת-ממדית הקונפוקלית נמשכה 2 דקות ו-34 שניות (כל רכישת תמונה במישור Z ארכה כ-8 שניות; בסך הכל עשרים תמונות מחסנית Z).
  5. הגדירו את רכישת התמונה לתמונות מרובות בערימת z של צבע ספציפי לתא (כלומר, אדום) וצבע ספציפי לרכב חשמלי (כלומר, ירוק) בו-זמנית (איור 4 ואיור 5A).

4. עיבוד תמונה

  1. השתמש בתוכנה אוטומטית לעיבוד תמונה כדי לנתח את התמונות הקונפוקליות הגולמיות בערימת z ולקבוע את ספיגת הרכב החשמלי לפי תאים (ראה טבלת חומרים).
  2. הגדר פרמטרי סף לאות הפלואורסצנטי של התאים ולצבעים ספציפיים לרכב חשמלי. בנו את המשטחים הווירטואליים של התאים (איור 5A,B).
    1. כדי לבנות את המשטחים הווירטואליים של תאים, לחץ על הלחצן הוסף משטחים חדשים.
    2. בחר חישוב המרחק הקצר ביותר כ"הגדרות אלגוריתם" כדי להשתמש באלגוריתם שסופק על-ידי התוכנה ולאחר מכן לחץ על הבא: ערוץ מקור.
    3. בחר ערוץ 2 - CMTMR כ"ערוץ מקור" בניסוי זה.
    4. בחר Smooth והכנס את הערך המתאים ל- "Surfaces Detail" להחלקת משטחים.
      הערה: 0.57 מיקרומטר בניסוי זה מאחר שפיקסל אחד מייצג 0.57 מיקרומטר בנתוני הדמיה גולמיים.
    5. בחר עוצמה מוחלטת בתור "סף".
    6. לסף אוטומטי של התמונה הפלואורסצנטית באמצעות האלגוריתם שסופק, לחצו על 'סף' (עוצמה מוחלטת): הערך נקבע אוטומטית.
    7. בחר הפעל כ"פיצול עצמים נוגעים (אזור גדל)" והכנס את הערך של גודל התא המשוער ל"קוטר נקודות זרע", 10.0 מיקרומטר בניסוי זה. לאחר מכן לחץ על הבא: סינון נקודות זרע.
    8. כדי להגדיר את משטחי התא הווירטואליים, לחץ על + לחצן הוסף ולאחר מכן בחר איכות כ"סוג סינון". סף את הערך המתאים (210 בניסוי זה) עבור הגבול הנמוך על-ידי בדיקה חזותית ואת הערך המרבי (1485) עבור הגבול העליון, ולאחר מכן לחץ על לחצן סיום.
      הערה: בדיקה חזותית פירושה שחוקר יכול להבחין בין האזור התאי לבין תמונת פלורסנט גולמית.
    9. לאחר מכן, כדי לבנות את הנקודות הווירטואליות של כלי רכב חשמליים, לחץ על הלחצן הוסף נקודות חדשות.
    10. בחר גדלי ספוט שונים (הגדלת אזור) וחישוב המרחק הקצר ביותר כ"הגדרות אלגוריתם" ולאחר מכן לחץ על הבא: ערוץ מקור.
    11. בחר ערוץ 1 - Alexa Fluor 488 כ"ערוץ מקור" בניסוי זה.
    12. הכנס את הערך המתאים ל"קוטר XY משוער" לזיהוי נקודתי, 1 מיקרומטר בניסוי זה. לאחר מכן, לחץ על הבא: סינון כתמים.
    13. כדי להגדיר את נקודות ה-EV הווירטואליות, לחץ על כפתור + הוסף, בחר איכות כ"סוג סינון" והגדר "סף תחתון" על ידי בדיקה חזותית, 100 בניסוי זה. לאחר מכן, לחצו על הלחצן הבא: סוג אזור ספוט.
    14. בחרו 'עוצמה מוחלטת' בתור 'סוג אזורי ספוט' ולאחר מכן לחצו על 'הבא: אזורי ספוט'.
    15. כדי לסף, האזור של נקודות EV, הכנס את הערך המתאים ל"סף אזור" על ידי בדיקה חזותית, 100 כ"סף אזור" בניסוי זה.
      הערה: בדיקה חזותית פירושה שחוקר יכול להבחין בין אזור הרכב החשמלי לבין תמונת פלורסנט גולמית.
    16. בחר/י ״אמצעי אחסון באזור״ כ״קוטר מ״ ולאחר מכן לחץ/י על ״סיום״.
  3. השתמשו באלגוריתמים שסופקו על ידי התוכנה כדי לפצל את הנקודות המקובצות בתוך המשטח הבנוי בשלב 4.2 (איור 5C, i-iv).
    1. לחץ/י על הנקודות המובנות ועבור/י אל ״מסננים״.
    2. לחץ/י על הכפתור + הוסף, ואז בחר/י ״המרחק הקצר ביותר למשטחים״ משטחים = משטח 1 כ״סוג מסנן״, ואז לחץ/י על הכפתור ״שכפל בחירה למשטחים״ חדש. הסף הנמוך ביותר (-7.0 בניסוי זה) עבור הגבול הנמוך והערך המתאים (-0.5) עבור הגבול העליון.
      הערה: הגדר את הגבול העליון עם הרדיוס המשוער של כתמים. בניסוי זה, הקוטר המשוער של כתמים, כלומר נקודות EV, הוגדר ל -1 מיקרומטר בשלב 4.2.11.; לכן, הגבול העליון יכול להיות 0.5.
  4. ספירה אוטומטית של כלי רכב חשמליים בתוך התאים
    הערה: התוכנה תספור באופן אוטומטי את מספר כלי הרכב החשמליים בתוך התאים, ותציין את המספר שהופנם על ידי תאי היעד.
    1. לחץ על הבחירה הבנויה 'כתמים 1' [המרחק הקצר ביותר למשטחים: משטחים = משטחים 1, בין -7.00 ל- -0.500].
    2. עבור אל סטטיסטיקה, וייצא את הערך מ "מספר כולל של כתמים"
      הערה: האלגוריתמים המסופקים על ידי התוכנה יחשבו באופן אוטומטי את מספר התאים ונפחם.
  5. קבע את התפוקה של ספיגת רכב חשמלי לכל תקופת דגירה בהתבסס על הערכים המחושבים לעיל (איור 6).
    1. כדי להשיג את מספר התאים, לחץ על המשטחים הבנויים 1 ולאחר מכן עבור אל סטטיסטיקה וייצא את הערך של "מספר כולל של משטחים" מתוך כולל.
    2. עבור אל מפורט לסטטיסטיקה כדי לייצא את אמצעי האחסון ממפורט.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
איור 1: המחשה סכמטית של בידוד EV ותיוג על שבב באמצעות התקן מיקרופלואיד מבוסס ננו-סינון. (A) בידוד כלי רכב חשמליים מ-CCM. (B) תיוג אימונופלואורסצנטי על שבב של כלי רכב חשמליים. (C) הסרת נוגדנים לא קשורים.

figure-results-2

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Alexa Fluor 488 נוגדן CD63 אנטי אנושיביואגדה353038צבע פלואורסצנטי מצומד נוגדן ספציפי ל-EV
CellTracker צבע CMTMR כתוםתרמו פישר סיינטיפיקC2927מגיב תיוג פלואורסנטי של תאים חיים (ציטופלסמה)
CFI Apo Lambda S 40XC WIניקוןMRD77400מטרה לדימות קונפוקלי, NA=1.25
תוכנית CFI Apo VC 20XניקוןMRD70200מטרה לדימות קונפוקלי, NA=0.75
אקסודיסקLabspinner Inc.EX-D1001התקן מיקרופלואידי מבוסס ננו-סינון לבידוד EV
אקסודיסקבריLabspinner Inc.EX-R1001התקן הפעלה עבור Exodisc
FBS מדולדל אקסוזוםתרמו פישר סיינטיפיקA2720801חומר מזין של מדיה תרבית תאים עבור קו תאים PC3 נגזר EV אוסף
סרום בקר עוברי (FBS)VWR1500-500חומר מזין לגידול תאים
עיזים נגד עכבר IgG H&L preadsorbedABCAMdorit_19999נוגדן IgG עכבר לשליטה negatvie של תיוג EV
Ibidi ארה"ב צלחת U μ-צלחת 35 מ"מאיבידי81156צלחת תרבית להדמיה קונפוקלית
אימריס 9.7.1אוקספורד אינסטרומנטס9.7.1תוכנה לעיבוד לאחר תמונה
מערכת אינקובטור + מערבל גז CO2/O2/N2מכשיר תא חיטו-או-20מערכת אינקובטור להדמיית תאים חיים
Nikon A1 HD25 / A1R HD25 מצלמהניקוןנהמצלמה להדמיה קונפוקלית
מיקרוסקופ Nikon Eclipse Tiניקוןנהמיקרוסקופ הפוך לדימות קונפוקלי
שקל-אלמנטס AR 4.50.00ניקון4.50.00תוכנה לעיבוד תמונה עבור מיקרוסקופ Nikon
NTA, NanoSight NS500מלוורן פנאליטיNS500מכשיר מדידה לריכוז EV
אוריג'יןפרו 2020OriginLab9.7.0.185תוכנת גרפים
פניצילין-סטרפטומיציןתרמו פישר סיינטיפיק15140122אנטיביוטיקה לגידול תאים
RPMI 1640תרמו פישר סיינטיפיק21875034מדיה לתרבית תאים לטיפוח קו תאים PC3
SYTO RNASאלקט כתם תא פלואורסצנטי ירוק - תמיסה של 5 mM ב- DMSOתרמו פישר סיינטיפיקS32703צבע פלואורסצנטי מכתים RNA לסימון EV

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Extracellular Vesicle UptakeConfocal Microscopy Imaging3D Fluorescence ImagingEV Internalization AssayCell Surface AdhesionZ Stack Image AcquisitionVirtual Surface ReconstructionSpot Detection AnalysisCytoplasm Labeling TechniqueAutomated Image Processing

Related Articles