כל הנהלים הנוגעים למודלים של בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.
הערה: כל ההליכים חייבים להיעשות בארון בטיחות ביולוגית Class II עם המפוח דולק והאורות כבויים.
1. הכנת חומרים
הערה: כל החומרים מפורטים בטבלת החומרים.
- הכן מדיום 1, צנטריפוגה בינונית 2, ופתרונות אחסון ועבודה של פלואורסצנטי 2-deoxy-2-[(7-nitro-2,1,3-benzoxadiazol-4-yl) amino]-D-glucose (2-NBDG או FD-glucose) על פי טבלה 1 בארון בטיחות ביולוגית Class II. הגן על גלוקוז FD מפני אור לאורך כל הניסוי על ידי כיבוי כל האורות מתחת למכסה המנוע.
- השתמשו בריאגנטים מוכנים לשימוש של תרביות תאים: טריפסין-EDTA, מלח חוצץ פוספט (PBS), ומדיום הנשר המעובד של Dulbecco ללא גלוקוז וללא פנול אדום (להלן, DMEM ללא גלוקוז).
2. מדידת Ex vivo של דלדול גלוקוז FD חוץ-תאי באיברים
- לטפל בעכברים עם תרכובות הממריצות את חילוף החומרים של גלוקוז לפני נתיחת האיברים, כדלקמן.
- השתמש בעכברי Lepob זכרים בני תשעה שבועות (n = 11). האכילו את כל העכברים בתזונת צ'או קבועה לפני הניסוי.
- הקצו עכברים באופן אקראי לשלוש קבוצות עבור זריקות intraperitoneal (i.p.).
- הזריקו עכברים מקבוצת הביקורת Lepob עם 0.1 מ"ל של PBS סטרילי (n = 4).
- הזריקו עכברים מקבוצת האינסולין Lepob עם 0.1 מ"ל PBS סטרילי, המכיל 12 IU אינסולין אנושי לכל גרם של משקל גוף (BW) (n = 3).
- הזריקו עכברים מקבוצת AAC2 Lepob עם 0.1 מ"ל PBS סטרילי, המכיל 0.1 nmol AAC2 לגרם משקל גוף (BW) (n = 4).
- לאחר 15 דקות, יש לשאוף עכברים לשאיפה של 5% איזופלורן ולהוציא דם על ידי ניקוב לב מבעלי החיים המורדמים.
- יש לנתח רקמת שומן לבן אפידידימלי ויסצרלי (200 מ"ג), כבד (200 מ"ג) ומוח שלם מכל חיה. השתמש במכסה מנוע בטיחות ביולוגית Class II לטיפול ברקמות.
- הכן פתרון עבודה FD-גלוקוז (0.29 mM) ב- DMEM ללא גלוקוז בארון בטיחות ביולוגית Class II ללא אור.
- מדוד את הפלואורסצנטיות של תמיסת עבודה FD-גלוקוז (0.29 מילימול) באורכי גל עירור ופליטה של 485 ו- 535 ננומטר, בהתאמה, באמצעות קורא מיקרו-לוחות.
- דגרו על הרקמות/איברים שנקטפו בצלחת בת 6 בארות המכילה PBS למשך דקה אחת. טפלו בכל רקמה או איבר בבאר נפרדת.
- לאחר דקה, הניחו כל טישו על מגבת נייר סטרילית כדי לספוג PBS. מעבירים רקמות/איברים לצלחת נפרדת בת 6 בארות המכילה 4,000 מיקרוליטר DMEM נטול גלוקוז ודגרים למשך 2 דקות.
- לאחר 2 דקות, להסיר ולהעביר את הרקמות לתוך בארות של צלחת 6 בארות המכילה 0.29 mM FD גלוקוז פתרון עבודה (1 מ"ל / באר). לדגור על צלחות 6 בארות המכילות רקמות בתמיסת עבודה FD-גלוקוז ב 37 ° C (5% CO2 ו 95% לחות).
- אספו 100 מיקרוליטר של תמיסת עבודה של גלוקוז FD מכל באר לאחר 0, 10, 20, 30, 40, 60, 90 ו-120 דקות של דגירה, כדי לנתח את הקינטיקה של דלדול גלוקוז FD חוץ-תאי. יש לנער לפני ואחרי האיסוף.
- העבר 100 μL של תמיסת עבודה FD-גלוקוז ללוחות 96 בארות כדי למדוד את הפלואורסצנטיות באורכי גל עירור ופליטה של 485 ו- 535 ננומטר, בהתאמה, באמצעות קורא מיקרו-לוחות.
- נרמלו פלואורסצנטיות לערך של 0 דקות (100%) עבור כל איבר בכל חיה (איור 1).
טבלה 1: הכנת מדיה תרבותית ותמיסות גלוקוז FD.
| פתרון/בינוני | רכיבים |
| אתנול:DMSO (1:1/v/v) | אתנול (200 μL) ו- DMSO (200 μL) בצינור 1-1.5 מ"ל; השתמש אתנול כיתה תרבית תאים DMSO |
| בינוני 1 | DMEM (89 מ"ל), פניצילין/סטרפטומיצין (1%) (1 מ"ל) וסרום עגל (10%) (10 מ"ל) בצינור סטרילי של 50 מ"ל |
| אמצעי צנטריפוגה 2 | DMEM (89 מ"ל), פניצילין/סטרפטומיצין (1%) (1 מ"ל) וסרום בקר (10%) (10 מ"ל) בצינור סטרילי של 50 מ"ל |
| אחסון תמיסת גלוקוז FD 5 מ"ג / מ"ל (14.5 mM) | גלוקוז FD (1 מ"ג) ואתנול:DMSO (1:1/v/v) (200 μL) בצינור 0.5 מ"ל; יש לאחסן בטמפרטורה של -80°C, רצוי תחת ארגון או אטמוספירת חנקן |
| תמיסת FD-גלוקוז עובדת 5 מיקרוגרם/מ"ל (14.5 מילימול) | אחסון תמיסת גלוקוז FD 5 מ"ג / מ"ל (1 μL), DMEM ללא גלוקוז (999 μL); להכין מיד לפני הניסוי. |