Method Article

בדיקת צבירת תאים לזיהוי אינטראקציות טרנס בין מולקולות היצמדות תאים

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Restrepo, S., et al., מדידת אינטראקציות טרנס-תאיות באמצעות צבירת חלבונים במערכת תאים הטרולוגית. J. Vis. Exp. (2020)

בסרטון זה אנו מדגימים את הטכניקה למדידת אינטראקציות טרנס-תאיות בין מולקולות היצמדות תאים סינפטיים באמצעות בדיקת צבירת תאי HEK. בבדיקה זו, מספר שווה של תאי HEK המבטאים מולקולת היצמדות תאים קדם-סינפטית רצויה וחלבון פלואורסצנטי מעורבבים עם תאי HEK המבטאים מולקולת היצמדות תאים פוסט-סינפטית וחלבון פלואורסצנטי נוסף. האינטראקציה בין מולקולות ההיצמדות התא מאלצת את התאים להצטבר, דבר שניתן למדוד באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. תרבית תאים וטרנספקציה

  1. הפוך מדיה סלולרית HEK עם DMEM, 1x (שינוי של Dulbecco של Eagle's Medium) בתוספת 4.5 גרם / ליטר גלוקוז, L-גלוטמין ונתרן פירובט, ו 10% FBS. מסנן סטרילי.
  2. לקבוע מראש ליגנדות וקולטנים מתאימים לבדיקת צבירה.
    הערה: Neurexin3α SS4+/- ואחד הליגנדים הידועים שלו, LRRTM2, שימשו במחקר זה. ליגנדות וקולטנים בעלי עניין בוטאו מ-cDNA ב-pcDNA3.1. מכלול גיבסון שימש להחדרת Neurexin3α לתוך pcDNA3.1. Neurexin3α F/R:
    TTTAAACTTAAGCTTGGTACCGAGCTCGGATCCGCCACCATGAGCTTTACCCTCCACTC/
    GAGCGGCCGCCACTGTGCTGGATATTGCAGAATTCTTACACATAATACTCCTTGTCCTT.
  3. הכינו HEK293T תאים.
    1. לגדל HEK293T תאים למפגש בצלוחית T-75 אחת.
    2. לאחר המפגש, להשתמש 2 מ"ל של טריפסין ומניחים באינקובטור 37 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות. הוסף 6 מ"ל של מדיה HEK לבקבוק כדי להשעות תאים ולהעביר את כל 8 מ"ל לצינור חרוטי 15 מ"ל.
    3. גלולה ב 500 x גרם במשך 5 דקות והשהיה מחדש במדיה התאית HEK עבור סך של 8 מ"ל.
    4. ספרו תאים והוסיפו 735,000 תאים לכל באר של צלחת בת 6 בארות. התאם את עוצמת הקול הסופית ל -2 מ"ל עבור כל באר באמצעות מדיה סלולרית HEK.
    5. מניחים באינקובטור של 37 מעלות צלזיוס ומאפשרים לתאים לגדול בן לילה או עד שהם מגיעים למפגש של 50-60%.
  4. להדביק תאי HEK293T בשיטת סידן פוספט.
    1. Transfect well-1 עם 3 מיקרוגרם של חלבון עניין co-transfect עם 1 מיקרוגרם של חלבון פלואורסצנטי (3 מיקרוגרם של pcDNA3.1-Neurexin3αWT SS4- ו 1 מיקרוגרם של mCherry).
    2. Transfect well-2 כמו בשלב 1.4.1. אבל עם חלבון מוטציה של עניין (pcDNA3.1-Neurexin3αA687T SS4-).
    3. Transfect well-3 עם 3 מיקרוגרם של ליגנד עניין ו co-transfect עם 1 מיקרוגרם של חלבון פלואורסצנטי אחר (3 מיקרוגרם של pcDNA3.1 LRRTM2 ו 1 מיקרוגרם של GFP).
    4. Transfect well-4 ו well-5 לשמש בקרות שליליות: well-4 עם 1 מיקרוגרם של GFP ובאר-5 עם 1 מיקרוגרם של mCherry.
    5. הכן צלחת נוספת (כמו בשלבים 1.4.1-1.4.4) אם נדרשים תנאים או פקדים נוספים (Neurexin3αWT/A687T SS4+).
      הערה: יעילות הטרנספקציה מנותחת 24 שעות לאחר הטרנספקציה תחת מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי ומכומתת כמספר התאים המבטאים את החלבון הפלואורסצנטי בו נדבקו. גישה יעילה יותר תכלול טרנספקציה של תאי HEK עם קידוד וקטור ביסיסטרוניק עבור חלבון פלואורסצנטי והליגנד המעניין, והיא מומלצת מאוד מעל טרנספקציה משותפת. במקרה של מחקר זה, אלפא נוירוקסינים הם ~ 4.3 kb ועוצמת פלואורסצנטיות נמוכה נצפתה באמצעות מערכת bicistronic הדורשת co-transfection.
  5. 48 שעות לאחר ההדבקה, קציר תאים לצבירה.
    1. לשטוף כל באר פעמיים עם PBS.
    2. הוסף 1 מ"ל של 10 mM EDTA ב- PBS לכל באר כדי לנתק בעדינות אינטראקציות בין תאים ולדגור על הצלחת ב- 37 ° C למשך 5 דקות
      הערה: טריפסין אינו מומלץ לשלב 1.5.b בשל הפיצול הפרוטאוליטי הפוטנציאלי של מולקולות הידבקות במחקר. בנוסף, לאחר הוספת EDTA ייתכן שהפרוטוקול לא יופסק עד להשלמתו מכיוון שהתאים יהיו חשופים כעת לתנאי הסביבה.
    3. טפחו בעדינות על הצלחת כדי לנתק את התאים, וקצרו כל באר לצינורות חרוטיים נפרדים של 15 מ"ל.
    4. צינורות חרוטיים צנטריפוגות ב 500 x גרם ובטמפרטורת החדר במשך 5 דקות.
  6. בזמן שהתאים הם כדוריות, הכינו 6 צינורות דגירה על ידי סימון החלק העליון של כל צינור מיקרוצנטריפוגה עם כל מצב.
    הערה: יש להשתמש בכל פרמוטציה של תנאי GFP ו-mCherry כדי להקיף את כל תנאי הניסוי והבקרות המתאימות. לדוגמה: 1. GFP/mCherry, 2. mCherry/LRRTM2-GFP 3. GFP/Neurexin3αWT SS4-—mCherry, 4. GFP/Neurexin3αA687T SS4- –mCherry, 5. Neurexin3αWT SS4-—mCherry/LRRTM2—GFP, 6. Neurexin3αA687T SS4- –mCherry/LRRTM2—GFP. צור צינורות נוספים כדי להתאים לתנאים ובקרות נוספים.
  7. הסר את תאי הסופרנאטנט וההשהיה מחדש במדיה של 500 μL HEK עם 10 mM CaCl2 ו- 10 mM MgCl2 מחוממים ל- 37 ° C.
    הערה: התוספת של CaCl2 ו-MgCl2 מאפשרת למולקולות היצמדות ליצור מחדש את הקשירה ונדרשת רק אם השותפים לאינטראקציה הטרנס-תאית המדוברים זקוקים לקטונים דו-ערכיים להידבקות.
  8. ספור את התאים בכל צינור חרוטי של 15 מ"ל באמצעות המוציטומטר ואליקוט 200,000 תאים מכל מצב לצינור מתאים משלב 1.6 לקבלת תערובת של 1:1 בנפח כולל של 500 μL.
    הערה: זה אמור לקחת רק 5 דקות לכל תנאי כדי לספור כמויות aliquot.
  9. דוגרים על צינורות בטמפרטורת החדר במסובב צינור איטי.

2. רכישת תמונות

  1. מטב פרמטרים של רכישת מיקרוסקופ עבור דגימות ספציפיות. בדוגמה זו, התמונות צולמו במיקרוסקופ רחב שדה. השתמש במטרה אווירית 5x (NA: 0.15; WD: 20000 מיקרומטר) כדי לקבל שדה גדול מספיק לניתוח.
  2. הערך צבירה בסיסית מיד לאחר ערבוב שני התנאים של תאי HEK בשלב 1.8. אלה עכשיו תמונות 'זמן אפס'.
    1. פיפטה 40 μL של כל תערובת דגימה על גבי שקופית מיקרוסקופ טעונה ותמונה תחת פלואורסצנטיות בשני ערוצי 488 ו- 561.
    2. קבל שלושה שדות ראייה שונים במישור מיקוד אחד לכל טיפת דגימה.
  3. קבל תמונות סופיות ב- 60 דקות כתמונת 'זמן 60'.
    1. כדי לקבל את תמונת 'זמן 60' של התערובת לאחר דגירה של 60 דקות, קח דגימה נוספת של 40 μL מכל מצב מצינוריות מסתובבות ופיפטה כל דגימה לשקופית טעונה. תמונה כמו בשלב 2.2.
      הערה: יש לבדוק את צבירת התאים כל 15 דקות עד להתרחשות רוויה. עיתוי הצבירה יהיה תלוי בחלבונים הנבדקים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
5 מ"ל מיקרו-צינורות חד פעמיים עם כובעי הצמדהVWR89000-028דגירה של אוכלוסייה מעורבת של תאי HEK
1000 מ"ל מהיר - יחידת מסנן זרימה, קרום 0.2 um aPESתרמו פישר567-0020עיקור מדיה HEK
15 מ"ל צינורות צנטריפוגות SpectraTubeהמדע של וורד470224-998קצירת תאי HEK
צלחות תרבית רקמה סטריליות 6 בארותVWR100062-892טיפוח תאי HEK
סידן כלוריסיגמא223506-500זהעברת סידן פוספט, תרחיף תאי HEK
צנטריפוגה - Sorvall Legend RTמוצרי מעבדה של Kendro75004377קצירת תאי HEK
אינקובטור תאי CO2תרמו סיינטיפיקHERACELL 150iדגירה של תאי HEK במהלך הצמיחה
DMEM, 1x (Dulbecco's Modification of Eagle's Medium) עם 4.5 גרם/ליטר גלוקוז, L-גלוטמין ונתרן פירובטקורנינג10-013-CVתחזוקת תאי HEK
PBS מלוחים חוצצי פוספט של Dulbecco (1X)גיבקו14190-144עובר/קציר תא HEK
חומצה EthylenediaminetetraaceticסיגמאED-500Gקצירת תאי HEK
צלוחיות תרבית מאווררות בז, שטח גידול של 75 סמ"רקורנינג9381M26טיפוח תאי HEK
סרום בקר עובריסיגמא17L184תחזוקת תאי HEK
HEK293T תאיםATCCמערכת דגמים
ImageJNIHV: 2.0.0-rc-69/1.52pניתוח תמונות
מגנזיום כלוריד הקסהידראטסיגמאM9272-500Gהשעיית תאי HEK
נתרן פוספט דו-בסיסי נטול מיםפישר ביוריאגנטיםBP332-500טרנספקציה של סידן פוספט
טריפסין 0.25% (1X) פתרוןGE Healthcare מדעי החייםSH30042.01העברת תאי HEK
מסובב צינורדגירה של אוכלוסייה מעורבת של תאי HEK
שקופיות מיקרוסקופ UltraClear. לבן קפוא, חיובי טעוןדנוויל סיינטיפיק בע"מM1021רכישת תמונות
מיקרוסקופ שדה רחבזיסAxio Vert 200 מטררכישת תמונות

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Cell Aggregation AssayTranscellular InteractionsCell Adhesion MoleculesHEK293T CellsFluorescence MicroscopyFluorescent ProteinsCalcium IonsEDTA TreatmentCell CentrifugationHemocytometer Counting

Related Articles