מאמר שיטה

שימוש בתצוגת פאגים לבחירת חלבונים בעלי זיקה גבוהה לחלבון מטרה

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Zhang, W., et al., שימוש בתצוגת פאגים לפיתוח אפנן גרסאות יוביקוויטין עבור ליגזות E3. J. Vis. Exp. (2021)

בסרטון זה אנו מדגימים את טכניקת תצוגת הפאגים לבידוד פאגים מהונדסים מראש המבטאים חלבונים בעלי זיקה גבוהה לחלבון המטרה.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. הכנת ספריית הפאגים

  1. הפשירו את ספריית הפאג'ים על קרח ודללו אותה עד פי 100 ממגוון הספריות ב-PBS. לדוגמה, אם מגוון הספרייה הוא 1 x 1010 וריכוז הספרייה הוא 1 x 1013, דלל את הספרייה כך שהריכוז יהיה 1 x 1012. עבור הספריות המשמשות כאן, לדלל אותם פי 10 ב- PBS על ידי שילוב של 1 מ"ל של הספרייה עם 9 מ"ל של PBS.
    הערה: גיוון הספרייה היה צריך להיקבע במהלך יצירת הספרייה ולא ניתן להעריך אותו בקלות אחרת. ניתן לקבוע את ריכוז הספרייה על ידי חיסון תאי E. coli בשלב האמצע (OD600 figure-protocol-1 0.6 - 0.8) וציפוי על LB/carb.
  2. הוסף 1/5 אמצעי אחסון של PEG/NaCl. לדוגמה, עבור 10 מ"ל של הספרייה המדוללת בעבר, הוסף 2 מ"ל של PEG/NaCl.
  3. דוגרים על קרח במשך 30 דקות.
  4. צנטריפוגה ב 11,000 x גרם למשך 30 דקות ב 4 ° C, להשליך supernatant, וצנטריפוגה מחדש במשך 2 דקות כדי למשוך למטה את supernatant הנותר.
    הערה: שים את הצינור ברוטור באותו כיוון בפעם השנייה כפי שהיה הראשון לשמור את הגלולה באותו מקום, ולכן, מה שהופך אותו קל יותר לראות.
  5. יש להשהות מחדש בעדינות את כדורית הפאג' ב-1 מ"ל PBT לכל חלבון. עבור ארבעה חלבונים, להשעות מחדש את הגלולה ב 4 מ"ל של PBT.
    הערה: נסו לא לגעת בגלולה ואל תכניסו בועות אוויר.

2. הצגת פאגים לחלבוני המטרה

  1. בקרה אופציונלית: הוסף 100 μL של ספריית פאגים לכל אחד המצופים היטב בלוח הבקרה. דוגרים בטמפרטורת החדר (~ 20-25 מעלות צלזיוס) למשך שעה אחת עם רעידות מסלוליות של 300 סל"ד ומעבירים את הספרייה מלוח הבקרה לצלחת המטרה.
  2. הסר את חיץ PB מלוח המטרה והוסף 100 μL של ספריית הפאגים לכל באר מצופה.
  3. יש לדגור בטמפרטורת החדר (~ 20-25 מעלות צלזיוס) למשך שעה אחת עם רעידות מסלוליות של 300 סל"ד.

3. לעגל פאג אחד

  1. הסר את ספריית הפאגים ושטוף את הבארות המצופות ארבע פעמים עם חיץ PT. הפוך את הצלחת והקש על מגבת נייר כדי להסיר את הטיפות האחרונות.
    הערה: אם חלבוני מטרה מרובים מצופים בצלחת אחת, נסו למזער את זרימת כל התמיסות הבאות בין הבארות.
  2. הוסיפו 100 μL של 0.1 M HCl לכל באר מצופה ודגרו בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות עם רעידות מסלוליות של 300 סל"ד.
  3. נטרל את ה- pH על ידי הוספת 12.5 μL של 1 M Tris-HCl (pH 11) לכל באר מצופה.
  4. אגרו את הפאג' המדולל מכל 8 הבארות לצינור מיקרוצנטריפוגה יחיד בנפח 1.5 מ"ל. פיפטה למעלה ולמטה במהלך ההעברה כדי להפוך את הפתרונות הומוגניים לשאוף את כל הנוזלים מהבארות.
  5. הוסף 10% BSA לפאג המדולל המאוגד לריכוז סופי של 1%. לקבלת נפח אלוציה עגול טיפוסי של 950 μL, הוסף 95 μL של 10% BSA. יש לאחסן בטמפרטורה של 4°C. זהו הפלט העגול הראשון.

4. הכנה לסבבי הבחירה הבאים

  1. הכינו תרבית זרעים לתרבית קלט הפאגים לסבב הבחירה הבא כמו בשלב 1.1.
  2. צפו את הצלחת בסבב הבחירה השלישי כמו בשלב 1.2 עם השינויים המפורטים להלן.
    1. יש לצפות רק ארבע בארות לכל חלבון בצלחת קשירה של 96 בארות. השתמש במחצית התוכן של צינורות "עגול 2/3" או "עגול 4/5" עבור הסיבוב המתאים. יש לדלל את תכולת הצינורות לפי הצורך, על מנת למנוע שקיעה של חלבונים מחוץ לתמיסה.
  3. הכינו את קלט הפאגים לסבב הבחירה הבא.
    1. השתמש במחצית מהפלט העגול כדי לחסן 3 מ"ל של תאי שלב אמצע לוג. לקבלת פלט עגול טיפוסי, יש לחסן עם 500 μL מהפלט.
    2. דגירה ב-37°C למשך 30 דקות עם רעידות מסלוליות של 200 סל"ד.
    3. הוסף פאג עוזר M13K07 לריכוז סופי של 1 x10 10 PFU/mL.
    4. דגירה בטמפרטורה של 37°C למשך שעה אחת עם רעידות מסלוליות של 200 סל"ד.
    5. העבר את כל 3 מ"ל התרבית ל- 30 מ"ל של 2YT / פחמימות / קאן. גדל בן לילה ב 37 ° C עם 200 סל"ד רעידות מסלוליות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מערכת שפופרת מיני Axygen (0.65 מ"ל, סטרילי, 96/ארון תקשורת, 10 ארונות תקשורת/אריזה)פישר סיינטיפיק14-222-198כלי פלסטיק
BD Difco מדיה תרבות מיובשת: LB מרק, מילר (לוריא-ברטני)פישר סיינטיפיקDF0446-17-3הכנת צלחות לטירינג
אלבומין בסרום בקר (BSA), חלק VBioShop קנדהmichal_1977רכיב חיץ
מלח דיסודיום קרבניצלין 89.0-100.5% נטול מיםמיליפור-סיגמאC1389-5Gגידול תאים נגועים בפאגמיד
שייקר Microplate דיגיטלי קומפקטיפישר סיינטיפיק11-676-337מכשיר
סרט איטום אלומיניום Corning Microplateפישר סיינטיפיק07-200-684איטום מלאי גליצרול פאגים
אגר מיובשפישר סיינטיפיקDF0140-01-0הכנת צלחות לטירינג
DS-11 ספקטרופוטומטר/פלואורומטרDeNovixDS-11 FX+מכשיר
גריינר Bio-One CellStar 96-ובכן, לא מטופל, בצורת U תחתיתפישר סיינטיפיק7000133כלי פלסטיק
חומצה הידרוכלוריתפישר סיינטיפיקA144-500כימי
Invitrogen ירייה אחת OmniMAX 2 T1R כשיר כימית E. coliפישר סיינטיפיקC854003זן חיידקי לזיהום פאגים
קנמיצין סולפטפישר סיינטיפיקAAJ1792406גידול M13K07 עוזר תאים נגועים בפאגים
פאג עוזר M13KO7מעבדות ביולוגיות של ניו אינגלנדN0315Sהתרת אריזה והפרשה פגמידיים
MaxQ 4000 Benchtop Orbital Shakerפישר סיינטיפיק11-676-076מכשיר
Nunc MaxiSorp 96-well microplate, תחתית שטוחהלייף טכנולוגיות44-2404-21כלי פלסטיק
תמיסת מלח חוצצת פוספט (PBS) 10Xפישר סיינטיפיקBP3994רכיב חיץ/מדיום מתלה פאגים
סרטי פוליאסטר עבור ELISA ואינקובציהVWR60941-120כיסוי המיקרו-צלחות במהלך הדגירה
פוליאתילן גליקול 8000 (PEG)פישר סיינטיפיקBP233-1משקעי פאג
נתרן כלורימיליפור-סיגמאS3014משקעי פאג
צינורות תרבות פלסטיק סטריליים: פוליפרופילן שקוףפישר סיינטיפיק14-956-1Dתרבית תשומות פאגים
טטרציקלין הידרוכלורידפישר סיינטיפיקBP912-100גידול תאי E. coli OmniMax
בסיס טריספישר סיינטיפיקBP1525נטרול תמיסת פאגים מדוללים
אבקת טריפטוןפישר סיינטיפיקBP1421-2רכיב מדיה לצמיחת תאים
טווין 20פישר סיינטיפיקBP337500רכיב חיץ
תמצית שמריםפישר סיינטיפיקBP1422-2רכיב מדיה לצמיחת תאים
microplate

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

E coli

מאמרים קשורים