1. תרבית תאים וטרנספקציה
הערה: עבור טרנספקציה של וקטורי BiFC חשוב להשיג יעילות גבוהה וטרנספקציה הומוגנית יחסית. סביר להניח שהווקטורים יהיו תואמים לכל מגיב טרנספקציה סטנדרטי, ויש למטב את תנאי הטרנספקציה בהתאם. כדי לבצע ספקטרומטריית מסות, אנו בדרך כלל מגדלים תאים בתוך כלים של 10 ס"מ, אם כי ניתן גם להקטין זאת באופן יחסי לכלים קטנים יותר או לצלחות קטנות יותר עבור ניסויים הדורשים פחות חומר.
- זרע 1.0 × 106 HEK293T תאים בצלחת 10 ס"מ עם 10 מ"ל של מדיה DMEM, בתוספת 10% FBS ופניצילין / סטרפטומיצין (1: 100).
- לדלל 2.5 מיקרוגרם מכל וקטור BiFC לתוך 500 μL של חיץ טרנספקציה (ראה טבלה של חומרים) בצינור מיקרוצנטריפוגה 1.5 מ"ל.
- הוסף 10 μL של מגיב transfection (ראה טבלה של חומרים).
- תערובת מערבולת במשך 10 שניות, ולאחר מכן צנטריפוגה קצרה. יש לדגור במשך 10 דקות בטמפרטורת החדר.
- מוסיפים את תערובת הטרנספקציה של הדנ"א לצלחת, טיפתית. לדגור על התאים למשך זמן מספיק עבור חלבוני ההיתוך BiFC לקיים אינטראקציה ועבור קיפול ונוס והבשלה פלואורופורית, בדרך כלל ~ 8 - 24 h.
הערה: שיא העירור של נוגה הוא 515 ננומטר, ושיא הפליטה שלו הוא 528 ננומטר, אם כי ניתן לצפות בכך בקלות באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי סטנדרטי שהוקם כדי להמחיש פלואורסצנטיות GFP.
2. הכנת דוגמאות
- קציר ליזטים
- לפני איסוף הליזט, הכינו את Cell Lysis Buffer [50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1% (v/v) חומר ניקוי לא יוני (ראו טבלת חומרים)]. יש לאחסן בטמפרטורה של 4°C.
- מיד לפני הקציר, יש להוסיף 10 מ"ל של חוצץ ליזה של תאים עם מעכב פרוטאז ומעכב פוספטאז (ראו טבלת חומרים). יש לשמור את מאגר הליזה התאית על קרח.
- יש לשטוף תאים פעמיים ב-PBS קר כקרח. שאפו את PBS והוסיפו 1 מ"ל של מאגר תאים ליזה קר כקרח. הניחו את התבשיל על קרח, וודאו שהחיץ מפוזר על פני כל שטח הפנים.
- יש לדגור על קרח במשך כ-5 דקות, ולאחר מכן להשתמש במגרד תאים (ראו טבלת חומרים) כדי לגרד את התאים ולהעבירם לצינור מיקרוצנטריפוגה מקורר מראש בנפח 1.5 מ"ל.
- הסר פסולת תאית על ידי צנטריפוגה של הליזט שנאסף ב 18,000 × גרם למשך 5 דקות ב 4 ° C ולהעביר supernatant מפונה לתוך צינורות microcentrifuge טריים.
הערה: בשלב זה, הליזט יכול לשמש מיד, או מאוחסן ב -80 ° C. מומלץ גם לשמור על aliquot של ליזט גולמי, כך יעילות של transfection וטיהור זיקה ניתן לאמת.
- טיהור אהדה
הערה: שלב הבידוד של BiCAP מתבצע באמצעות ננוני GFP מצומדים לחרוזי אגרוז (ראו טבלת חומרים).
- הכינו את חרוזי האגרוז על ידי שטיפת נפח מתאים (20 מיקרוליטר לדגימה + עודף 10 מיקרוליטר) ב 1 מ"ל PBS. צנטריפוגו את החרוזים ב 300 x גרם ולהסיר את supernatant.
- הוסף 20 μL לכל דגימת ליזט.
- לדגור על הדגימות במשך 2 שעות ב 4 ° C עם סיבוב מקצה לקצה.
הערה: בשלב זה, הדגימות יכולות להיות מוכנות עבור SDS-PAGE ו blotting המערבי, או ניתוח על ידי ספקטרומטריית מסה.
- הכנת BiCAP eluent לכתמים מערביים.
- צנטריפוגו את החרוזים ב 300 x גרם ושטפו אותם שלוש פעמים במאגר התא ליזיס.
- השהה מחדש את החרוזים השטופים ב- 50 μL של מאגר דגימה מדולל כראוי (ראה טבלת חומרים) וחמם את הדגימות ב- 95 ° C למשך 2-3 דקות.
הערה: דגימות שהוכנו באופן זה ניתן לאחסן ב -20 ° C במשך מספר חודשים.
- בצע SDS-PAGE וניקוי מערבי הן עבור תג V1 והן עבור תגי V2 (ראה טבלת חומרים), כמו גם עבור חלבונים מעניינים אחרים.