הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

טיהור זיקה דו-מולקולרית לבידוד שני חלבונים המקיימים אינטראקציה

966 צפיות

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

מקור: Hastings, J. F. et al. Dissecting Multi-protein Signaling Complexes by Bimolecular Complementation Affinity Purification (BiCAP). J. Vis. Exp. (2018)

בסרטון זה, הדגמנו טיהור זיקה דו-מולקולרית, BiCAP, כדי לזהות ולבודד דימרים חלבוניים ספציפיים באמצעות נוגדנים ספציפיים ספציפיים לתחום יחיד.

פרוטוקול

1. תרבית תאים וטרנספקציה

הערה: עבור טרנספקציה של וקטורי BiFC חשוב להשיג יעילות גבוהה וטרנספקציה הומוגנית יחסית. סביר להניח שהווקטורים יהיו תואמים לכל מגיב טרנספקציה סטנדרטי, ויש למטב את תנאי הטרנספקציה בהתאם. כדי לבצע ספקטרומטריית מסות, אנו בדרך כלל מגדלים תאים בתוך כלים של 10 ס"מ, אם כי ניתן גם להקטין זאת באופן יחסי לכלים קטנים יותר או לצלחות קטנות יותר עבור ניסויים הדורשים פחות חומר.

  1. זרע 1.0 × 106 HEK293T תאים בצלחת 10 ס"מ עם 10 מ"ל של מדיה DMEM, בתוספת 10% FBS ופניצילין / סטרפטומיצין (1: 100).
  2. לדלל 2.5 מיקרוגרם מכל וקטור BiFC לתוך 500 μL של חיץ טרנספקציה (ראה טבלה של חומרים) בצינור מיקרוצנטריפוגה 1.5 מ"ל.
  3. הוסף 10 μL של מגיב transfection (ראה טבלה של חומרים).
  4. תערובת מערבולת במשך 10 שניות, ולאחר מכן צנטריפוגה קצרה. יש לדגור במשך 10 דקות בטמפרטורת החדר.
  5. מוסיפים את תערובת הטרנספקציה של הדנ"א לצלחת, טיפתית. לדגור על התאים למשך זמן מספיק עבור חלבוני ההיתוך BiFC לקיים אינטראקציה ועבור קיפול ונוס והבשלה פלואורופורית, בדרך כלל ~ 8 - 24 h.
    הערה: שיא העירור של נוגה הוא 515 ננומטר, ושיא הפליטה שלו הוא 528 ננומטר, אם כי ניתן לצפות בכך בקלות באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי סטנדרטי שהוקם כדי להמחיש פלואורסצנטיות GFP.

2. הכנת דוגמאות

  1. קציר ליזטים
    1. לפני איסוף הליזט, הכינו את Cell Lysis Buffer [50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1% (v/v) חומר ניקוי לא יוני (ראו טבלת חומרים)]. יש לאחסן בטמפרטורה של 4°C.
    2. מיד לפני הקציר, יש להוסיף 10 מ"ל של חוצץ ליזה של תאים עם מעכב פרוטאז ומעכב פוספטאז (ראו טבלת חומרים). יש לשמור את מאגר הליזה התאית על קרח.
    3. יש לשטוף תאים פעמיים ב-PBS קר כקרח. שאפו את PBS והוסיפו 1 מ"ל של מאגר תאים ליזה קר כקרח. הניחו את התבשיל על קרח, וודאו שהחיץ מפוזר על פני כל שטח הפנים.
    4. יש לדגור על קרח במשך כ-5 דקות, ולאחר מכן להשתמש במגרד תאים (ראו טבלת חומרים) כדי לגרד את התאים ולהעבירם לצינור מיקרוצנטריפוגה מקורר מראש בנפח 1.5 מ"ל.
    5. הסר פסולת תאית על ידי צנטריפוגה של הליזט שנאסף ב 18,000 × גרם למשך 5 דקות ב 4 ° C ולהעביר supernatant מפונה לתוך צינורות microcentrifuge טריים.
      הערה: בשלב זה, הליזט יכול לשמש מיד, או מאוחסן ב -80 ° C. מומלץ גם לשמור על aliquot של ליזט גולמי, כך יעילות של transfection וטיהור זיקה ניתן לאמת.
  2. טיהור אהדה
    הערה: שלב הבידוד של BiCAP מתבצע באמצעות ננוני GFP מצומדים לחרוזי אגרוז (ראו טבלת חומרים).
    1. הכינו את חרוזי האגרוז על ידי שטיפת נפח מתאים (20 מיקרוליטר לדגימה + עודף 10 מיקרוליטר) ב 1 מ"ל PBS. צנטריפוגו את החרוזים ב 300 x גרם ולהסיר את supernatant.
    2. הוסף 20 μL לכל דגימת ליזט.
    3. לדגור על הדגימות במשך 2 שעות ב 4 ° C עם סיבוב מקצה לקצה.
      הערה: בשלב זה, הדגימות יכולות להיות מוכנות עבור SDS-PAGE ו blotting המערבי, או ניתוח על ידי ספקטרומטריית מסה.
  3. הכנת BiCAP eluent לכתמים מערביים.
    1. צנטריפוגו את החרוזים ב 300 x גרם ושטפו אותם שלוש פעמים במאגר התא ליזיס.
    2. השהה מחדש את החרוזים השטופים ב- 50 μL של מאגר דגימה מדולל כראוי (ראה טבלת חומרים) וחמם את הדגימות ב- 95 ° C למשך 2-3 דקות.
      הערה: דגימות שהוכנו באופן זה ניתן לאחסן ב -20 ° C במשך מספר חודשים.
    3. בצע SDS-PAGE וניקוי מערבי הן עבור תג V1 והן עבור תגי V2 (ראה טבלת חומרים), כמו גם עבור חלבונים מעניינים אחרים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
DMEMגיבקו11995-073תרבית תאים
פ.ב.ס.לייף טכנולוגיות אוסטרליה10099-141תרבית תאים
פניצילין/סטרפטומיציןלייף טכנולוגיות אוסטרליה15070-063תרבית תאים
מאגר טרנספקציה jetPRIMEפוליפלוס114-15תרבית תאים
מגיב טרנספקציה jetPRIMEפוליפלוס114-15תרבית תאים
PhosSTOP (מעכב פוספטאז)סיגמא-אולדריץ'4906837001תרבית תאים
קוקטייל מעכבי פרוטאז שלם, מיני ללא EDTAרוש11873580001כלי פלסטיק
מגרד תאיםזארשטדט83.1832
GFP-Trap_AChromotek GmbhGTA-100GFP nanobody מוצמד לחרוזי אגרוז
N-terminal GFP נוגדן חד שבטיקובנסMMS-118Pיזהה את התג V1 בתוך וקטורי BiFC
C-terminal GFP נוגדן חד שבטירוש11814460001יזהה את התג V2 בתוך וקטורי BiFC
מאגר לדוגמהInvitrogenNP0008בתוספת 1 מ"ל β-מרקפטואתנול.
טריפסין מעובד בדרגת ריצוףחברת PromegaV5117hתרבית תאים
צינורות מיקרוצנטריפוגות LoBindאבחון נקודת טיפול0030 108 116כלי פלסטיק
יודואצטמידסיגמא-אולדריץ'I1149-5Gמוכן במינון 5 מ"ג/מ"ל במים טהורים במיוחד
LTQ Orbitrap Velos Proתרמו פישר
תאי DH5αתרמו פישרתאים בעלי יכולת הלם חום

תגיות

זיהוי אינטראקציית חלבוניםמיקרוסקופיה פלואורסצנטיתחרוזי אגרוזWestern BlottingSDS-PAGEליזיס של תאיםריאגנט טרנספקציהתאי HEK293T