כל ההליכים הכרוכים באיסוף דגימות בוצעו בהתאם להנחיות IRB של המכון.
1. עיקור חומרים
הערה: יש לעקר את כל החומרים והתמיסות לפני השימוש.
- יש לעקר את כל כלי הניתוח וחומר חיתוך הוויברטומים (מחזיק סכין, דיסק דגימה, מגש חיץ) בתנור חיטוי יבש למשך 4 שעות בטמפרטורה של 180°C.
- עיקור חומר או ציוד רגיש לטמפרטורה על ידי קרינת UV או גמא.
- עיקור מדיה ותמיסות על ידי אוטוקלאבציה או סינון דרך קרומי נקבוביות 0.22 מיקרומטר.
2. הכנת פתרונות
- הכן 15-20 מ"ל של תמיסת הובלה: 50% v/v תמיסת מלח מאוזנת של הנקס (HBSS) pH 7.4, 50% v/v מדיום בסיסי לתחזוקה של נוירונים במוח לאחר לידה ובוגרים (טבלה של חומרים), בתוספת 10 mM 4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES), 3 מ"ג / מ"ל גלוקוז, ו 33 מיקרוגרם / מ"ל gentamicin.
הערה: פתרון ההובלה חייב להיות מקורר ומחומצן (מבעבע בגז קרבוגן) לפחות 20 דקות לפני איסוף הדגימה.
- הכינו 300 מ"ל של תמיסת חיתוך (HBSS בתוספת 10 mM HEPES ו-3 מ"ג/מ"ל גלוקוז) וקררו אותה במקפיא עד לנקודת היווצרות הגביש הראשונית.
- הכינו 20 מ"ל של מדיום תרבית: מדיום בסיסי לתחזוקה של נוירוני מוח לאחר לידה ומבוגרים (טבלה של חומרים) בתוספת 1% נגזרת L-גלוטמין (טבלה של חומרים), 2% תוספת לתרבית עצבית (טבלה של חומרים), 1% פניצילין/סטרפטומיצין, ו 0.25 מיקרוגרם / מ"ל אמפוטריצין B.
3. הגדרת מנגנון החיתוך
הערה: פרוטוקול זה מבוצע באופן אידיאלי בסיוע עמית בשל הלוגיסטיקה של איסוף הדגימות בחדר הניתוח.
- בדלי של קרח בתוספת מלח, הניחו לתמיסת החיתוך לנוח תחת תערובת קרבוגן מבעבעת (95% O2, 5% CO2) במשך 20 דקות לפחות לפני השימוש.
- הכינו גוש של 3% אגרוז (בערך 2 ס"מ x 2 ס"מ x 2 ס"מ) והדביקו אותו על דיסק דגימת הוויברטום כדי ליצור תמיכה מכנית נוספת לדגימת הרקמה במהלך החיתוך (איור 1E).
- הגדר את הוויברטומה לחיתוך: עובי חתך של 200 מיקרומטר, תדירות רטט של 100 הרץ ומהירות חיתוך בין 0.5-1.0 מ"מ לשנייה.
- נעלו את מגש חיץ הוויברטום לבסיס הוויברטום והוסיפו קרח כדי לשמור אותו בקירור לפני קבלת תמיסת החיתוך והדגימה, ולאורך כל הליך החיתוך.
4. אוסף דוגמאות
הערה: בפרוטוקול זה, רקמה ניאוקורטיקלית אנושית נאספה בחדר הניתוח והועברה למעבדה.
זהירות: בעת התמודדות עם דגימות אנושיות, פעל בהתאם לפרוטוקולי הבטיחות המתאימים שנקבעו על ידי המכון.
- הגדר את מנגנון ההובלה (איור 1C) המורכב מ: בלון גז נייד עם תערובת קרבוגן המחובר לשסתום לחץ/שטף השולט על תפוקת הגז המחובר לצינור סיליקון המחבר את יציאת הגז לכלי ההובלה; כלי הובלה, בדרך כלל צינור צנטריפוגה חרוטי 50 מ"ל עם מכסה מחורר לכניסת גז, המכיל את פתרון התחבורה; וקרח לקירור דגימה במהלך ההובלה.
- אספו והעבירו את הדגימה (איור 1B) מיד למעבדה. לטבול את הדגימה בתמיסת הובלה קרה (כל הזמן מבעבע עם תערובת קרבוגן).
5. חיתוך
- העבירו את הדגימה לצלחת פטרי (100 מ"מ x 20 מ"מ) המכילה תמיסת חיתוך, ובעזרת כלי ניתוח עדינים הסירו בזהירות כמה שיותר מקרומי המוח שנותרו בדגימה (איור 1D).
- בחר את כיוון הדגימה הטוב ביותר לייצור פרוסות עם המאפיינים הספציפיים של העיצוב הניסיוני, ועם להב אזמל מס '24, חתוך משטח שטוח כדי להיות הבסיס המודבק לדיסק הדגימה.
- בעזרת כף פלסטיק חד פעמית ומברשות צבע עדינות, אוספים את השבר מצלחת הפטרי ומייבשים את עודפי התמיסה בעזרת נייר פילטר (מייבשים בנימים ונמנעים מלגעת בשבר הרקמה בנייר).
- באמצעות דבק-על, חברו את הרקמה לדיסק דגימת הוויברטומה עד שהיא נצמדת היטב לדיסק ובמגע עם גוש האגרוז (איור 1E).
- הניחו את דיסק דגימת הוויברטום (עם רקמה מחוברת כראוי) במגש חיץ הוויברטומה המלא בתמיסת חיתוך שחייבת להיות מבעבעת במהלך כל התהליך.
- נעל את מחזיק הסכין במקומו כאשר סכין הגילוח קבועה היטב.
- תמיסת החיתוך חייבת לכסות גם את הדגימה וגם את הלהב, ורק אז להתחיל לחתוך (איור 1F).
- חותכים את הדגימה לפרוסות של 200 מיקרומטר.
הערה: למרות שחלק מהוויברטומים חותכים את הדגימות באופן אוטומטי, התצפית הצמודה וההתאמות הקלות במהירות החיתוך במהלך התהליך עשויות לסייע בהפקת פרוסות טובות יותר. השליכו פרוסות ראשוניות לא סדירות.
- מעבירים את הפרוסות ממגש החיץ לצלחת פטרי עם תמיסת חיתוך וחותכים קצוות רופפים ועודפי מאטר לבן ליחס של כ-70% קליפת המוח/30% חומר לבן.
6. תרבות
הערה: בצע שלב זה בארון זרימה למינרית בסביבה סטרילית.
- מוסיפים 600 מיקרוליטר תרבית בינונית לבאר (בצלחת של 24 בארות) ודגרים לפחות 20 דקות בטמפרטורה של 36°C ו-5% CO2 לפני ציפוי הפרוסות.
- מקציפים פרוסה אחת לכל באר בעזרת מברשת צבע (איור 1G).
- אם יש בארות שאינן בשימוש בצלחת, למלא אותם עם 400 μL של מים סטריליים.
- לדגור על הצלחת ב 36 ° C, 5% CO2.
הערה: החלפה בינונית ראשונה חייבת להיעשות בין 8-16 שעות לאחר הציפוי, תלוי בגודל הפרוסה.
- תוספת 10 מ"ל של מדיום התרבית שהוכן בעבר עם 50 ng/mL מוח נגזר גורם נוירוטרופי (BDNF).
הערה: במהלך 8-16 השעות הראשונות, הפרוסות מודגרות ב 600 μL של מדיום כדי למנוע חסך תזונתי והחמצה, שכן הצריכה הבינונית בשלב זה מואצת. מן השלב הבא, נפח בינוני לכל באר מותאם ל 400 μL.
- הסר 333 μL של המדיום המותנה מכל באר והוסף 133 μL של מדיום טרי בתוספת BDNF.
- חזור על תהליך ההחלפה הבינונית כל 24 שעות על ידי החלפת שליש מהתווך המותנה בתווך טרי בתוספת BDNF.