הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

יצירת אורגנואידים צרבלריים בוגרים מתאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים באמצעות ביוריאקטורים חד-פעמיים

954 צפיות

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

מקור: Silva, T.P., et al. Scalable Generation of בוגרים Cerebellar Organoids מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים ואפיון על ידי Immunostaining. J. Vis. Exp. (2020)

סרטון זה מדגים טכניקה ליצירת אורגנואידים צרבלריים בוגרים מתאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים (iPSCs) באמצעות ביוריאקטור תלת-ממדי חד-פעמי. הביוריאקטור מאפשר יצירת אגרגטים iPSC, אשר לאחר מכן עובר טיפול עם סדרה של מדיה תרבית מועשרת בגורמי גדילה וכימוקינים המביאים להתמיינות של אגרגטים iPSC לאורגנואידים צרבלריים בוגרים. לאחר מכן, האורגנואידים נקצרים ונשמרים בהקפאה לניתוח נוסף.

פרוטוקול

1. זריעת תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים אנושיים בביוריאקטור

  1. יש לדגור על תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים הגדלים כחד-שכבות ב-mTeSR1 בתוספת 10 מיקרומטר של מעכב ROCK Y-27632 (ROCKi). הוסף 1 מ"ל של תוספת בינונית לכל באר מצלחת תרבית רקמה של 6 בארות ודגרה במשך שעה אחת ב 37 ° C, 95% לחות, ו 5% CO2.
    הערה: ROCKi משמש להגנה על iPSCs מנותקים מפני אפופטוזיס.
  2. לאחר שעה אחת של דגירה, לשאוף את המדיום בילה מכל באר ולשטוף 1x עם 1 מ"ל של 1× PBS לכל באר.
  3. הוסף 1 מ"ל של מדיום ניתוק התא (ראה טבלת חומרים) לכל באר של צלחת 6 בארות ודגר ב 37 ° C במשך 7 דקות עד שהתאים מתנתקים בקלות מהבארות עם רעד עדין.
  4. פיפטה, תווך ניתוק התא מעלה ומטה עם מיקרופיפטה P1000 עד שהתאים מתנתקים ומתנתקים לתאים בודדים. מוסיפים 2 מ"ל של מדיום תרבית תאים שלם לכל באר כדי להשבית את העיכול האנזימטי ומפיפטים את התאים בעדינות לתוך צינור חרוטי סטרילי.
  5. צנטריפוגה ב 210 × גרם במשך 3 דקות ולהסיר את supernatant.
  6. השהה מחדש את גלולת התא בתווך תרבית (כלומר, mTeSR1 בתוספת 10 מיקרומטר של ROCKi) וספור את iPSCs עם המוציטומטר באמצעות צבע כחול טריפאן.
  7. זרעים 15 × 106 תאים בודדים בביוריאקטור (נפח מרבי של 100 מ"ל) עם 60 מ"ל של mTeSR1 בתוספת 10 מיקרומטר של ROCKi בצפיפות תאים סופית של 250,000 תאים / מ"ל.
  8. הכנס את הכלי המכיל את iPSCs ליחידת הבסיס האוניברסלית הממוקמת באינקובטור ב- 37 ° C, 95% לחות ו- 5% CO2.
    הערה: ערבוב הביוריאקטור נשמר למשך 24 שעות על ידי הגדרת בקרת יחידת הבסיס האוניברסלית ל-27 סל"ד כדי לקדם צבירת iPSC.

2. התמיינות והבשלה של אגרגטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים (iPSC) אנושיים באורגנואידים צרבלריים

  1. הגדר את יום הזריעה של תא בודד כיום 0.
  2. ביום הראשון, לאסוף 1 מ"ל של דגימת אגרגטים iPSC באמצעות פיפטה סרולוגית. שמור על הביוריאקטור תחת תסיסה כמו קודם על ידי הצבת יחידת הבסיס האוניברסלית עם הביוריאקטור המכיל את האגרגטים בזרימה סטרילית לפני איסוף הדגימה. לוחים את מתלה התא בצלחת חיבור נמוכה במיוחד של 24 בארות. בדוק שנוצרים אגרגטים הנגזרים מ- iPSC.
  3. קבל תמונות באמצעות מיקרוסקופ אופטי באמצעות הגדלה כוללת של 40x או 100x כדי למדוד את קוטר הצבירה.
  4. מדוד את שטח הצברים בכל תמונה באמצעות תוכנת FIJI.
    1. בחר "נתח | הגדר מדידות" משורת התפריטים ולחץ על "שטח" ו "אישור".
    2. בחר "קובץ | פתח" משורת התפריטים כדי לפתוח קובץ תמונה מאוחסן. בחרו בכלי בחירת קווים המוצג בסרגל הכלים וצרו קו ישר מעל סרגל קנה המידה המוצג בתמונה. בחר "נתח | הגדר קנה מידה" משורת התפריטים.
    3. ב"מרחק ידוע", הוסף את המרחב של סרגל קנה המידה של התמונה במיקרומטר. הגדר את "יחידת האורך" כמיקרומטר. לחץ על "גלובלי" כדי לשמור על ההגדרות ועל "אישור". בחר בחירה אליפסה בסרגל הכלים.
    4. עבור כל צבירה, תחמו את האזור בעזרת הכלי הסגלגל. בחר "נתח | מידה". חשב את הקוטר שלהם בהתבסס על השטח הנמדד, בהתחשב בכך שאגרגטים הם בערך כדוריים באמצעות
      figure-protocol-1
      עם A כשטח הצבירה.
  5. כאשר הקוטר הממוצע של האגרגטים הוא 100 מיקרומטר, החלף 80% מהתווך המושקע ב- mTeSR1 טרי ללא ROCKi. כאשר האגרגטים מגיעים לקוטר של 200–250 מיקרומטר, החליפו את כל המדיום המשומש ב-gfCDM (טבלה 1), והניחו לאורגנואידים להתיישב בתחתית הביוריאקטור.
    הערה: אם הקוטר המצטבר הממוצע עולה על 350 מיקרומטר, אל תתחיל את פרוטוקול ההתמיינות. חזור על הזריעה של תאים בודדים. בדרך כלל, לוקח בערך יום אחד עד שהמצרף מגיע לקוטר ממוצע של 100 מיקרומטר.
  6. הכנס את הביוריאקטור המכיל את האגרגטים ליחידת הבסיס האוניברסלית הממוקמת באינקובטור ב 37 ° C, 95% לחות, ו 5% CO2.
  7. הפחת את תסיסה bioreactor ל 25 סל"ד.
  8. ביום השני, חזור על שלבים 2.2, 2.3 ו- 2.4 כדי להעריך את הקוטר המצרפי. הוסף 30 μL של FGF2 (ריכוז סופי, 50 ng/mL) ו- 60 μL של SB431542 (ריכוז סופי, 10 μM) ל- 60 מ"ל של מדיום התמיינות gfCDM (טבלה 1). החלף את כל המדיום המשומש מהביוריאקטור עם gfCDM מתווסף. חזור על שלב 2.6.
    הערה: SB431542 חיוני כדי לעכב התמיינות mesendodermal, גרימת התמיינות עצבית. FGF2 משמש לקידום caudalization של רקמת neuroepithelial.
  9. ביום החמישי, חזור על שלבים 2.2, 2.3, 2.4 ו- 2.8.
    הערה: הגודל המצטבר אמור לגדול במהלך פרוטוקול הבידול. עם זאת, הקוטר הוא קריטי רק כאשר ההבחנה מתחילה כי פרמטר זה יכול להשפיע על יעילות הדיפרנציאציה.
  10. ביום השביעי, חזור על שלבים 2.2, 2.3 ו- 2.4. דילול FGF2 ו-SB431542 ל-2/3: הוסף 20 μL של FGF2 ו-40 μL של SB431542 עד 60 מ"ל של מדיום התמיינות gfCDM. החלף את כל המדיום המושקע מהביוריאקטור בתוספת gfCDM. חזור על שלב 2.6 והגבר את התסיסה של הביוריאקטור ל-30 סל"ד.
  11. ביום ה-14, חזור על שלבים 2.2, 2.3 ו-2.4. הוסף 60 μL של FGF19 (ריכוז סופי, 100 ng/mL) ל- 60 מ"ל של מדיום התמיינות gfCDM. החלף את כל המדיום המושקע מהביוריאקטור ב- gfCDM בתוספת FGF19. חזור על שלב 2.6.
    הערה: FGF19 משמש לקידום קיטוב של מבנים באמצע המוח האחורי.
  12. ביום ה-18, חזור על שלבים 2.2, 2.3, 2.4 ו-2.11.
  13. ביום ה-21, חזור על שלבים 2.2, 2.3 ו-2.4. החלף את כל התווך המושקע מהביוריאקטור בתווך נוירובזאלי מלא (טבלה 1). חזור על שלב 2.6.
    הערה: מדיום נוירובזאלי הוא מדיום בסיסי המשמש לשמירה על אוכלוסיית התאים העצביים בתוך האורגנואיד.
  14. ביום ה-28, חזור על שלבים 2.2, 2.3 ו-2.4. הוסף 180 μL של SDF1 (ריכוז סופי, 300 ng/mL) ל- 60 מ"ל של תווך נוירובזאלי מלא. החלף את כל התווך המשומש מהביוריאקטור בתווך נוירובזאלי מלא בתוספת SDF1. חזור על שלב 2.6.
    הערה: SDF1 משמש כדי להקל על הארגון של שכבות תאים נפרדות.
  15. ביום ה-35, חזור על שלבים 2.2, 2.3 ו-2.4. החלף את כל המדיום המושקע מהביוריאקטור בתווך BrainPhys מלא (טבלה 1). חזור על שלב 2.6.
    הערה: BrainPhys הוא מדיום עצבי התומך בנוירונים פעילים סינפטית.
  16. החלף 1/3 מהנפח הכולל כל 3 ימים בתווך BrainPhys מלא עד ליום 90 של בידול.

טבלה 1: פתרונות מלאי והכנת מדיה. ברשימה מפורטים כל הרכיבים והנפחים המשמשים להכנת מדיה לפרוטוקול התחזוקה והבידול של iPSCs, כמו גם פתרונות מלאי של גורמי גדילה ומולקולות קטנות. עבור פתרונות מלאי, כל ריכוזי המניות והפרוטוקולים להקמה מחדש רשומים.

הכנת מדיהmTeSR1
נפח סופי: 500 מ"ל
1. הפשירו תוסף mTeSR1 5× בטמפרטורת החדר (RT) או בטמפרטורה של 4°C למשך הלילה וערבבו עם בינוני
בסיסי 2. אחסן mTeSR1 בינוני שלם ב 4 ° C עד שבועיים או להכין 40 מ"ל aliquots ולאחסן ב -20 ° C
3. חימום מראש של mTeSR1 מלא ב-RT לפני השימוש
gfCDM (מדיום מוגדר כימית ללא גורם גדילה)
נפח סופי: 60 מ"ל
30 מ"ל Ham's F12 30 מ"ל IMDM 600 מיקרוליטר תרכיז שומנים מוגדר כימית (1% v/v) 2.4 מיקרוליטר מונותיגליצרול (450 מיקרומטר) 30 מיקרוליטר אפו-טרנספרין (תמיסת מלאי ב-30 מ"ג/מ"ל במים, ריכוז סופי: 15 מיקרוגרם/מ"ל) 300 מ"ג BSA מטוהר התגבשות (5 מ"ג/מ"ל) 42 מיקרוליטר אינסולין (ריכוז מלאי ב-10 מ"ג/מ"ל, ריכוז סופי: 7 מיקרוגרם/מ"ל) 300 מיקרוליטר P/S (0.5% V/V, 50 U/ml פניצילין/50 מיקרוגרם/מ"ל סטרפטומיצין)
Neurobasal
נפח סופי: 60 מ"ל
60 מ"ל של Neurobasal בינוני 600 μL N2 תוספת 600 μL Glutamax I 300 μL P/S (0.5% v/v).
BrainPhys
שלם נפח סופי: 60 מ"ל
60 מ"ל של BrainPhys 1.2 מ"ל NeuroCult SM1 תוסף עצבי 600 μL תוסף N2 12 μL BDNF (ריכוז סופי: 20 ng/mL) 12 μL GDNF (ריכוז סופי: 20 ng/mL) 300 μL Dibutyryl-cAMP (ריכוז במלאי: 100 מ"ג/מ"ל במים, ריכוז סופי: 1 mM) 42 μL חומצה אסקורבית (ריכוז במלאי: 50 מיקרוגרם/מ"ל במים, ריכוז סופי: 200 ננומטר)
Stock פתרונות של גורמי גדילה ומולקולות קטנותגורם גדילה פיברובלסט בסיסי (bFGF/FGF2)
ריכוז במלאי: 100 מיקרוגרם/מ"ל
1. לבנות מחדש ב 5 mM Tris, pH 7.6, בריכוז של 10 mg/mL
2. לדלל עם 0.1% BSA ב-PBS (v/v) לריכוז מלאי סופי של 100 מיקרוגרם/מ"ל
גורם הנגזר מתאי סטרומה 1 (SDF1)
ריכוז במלאי: 100 מיקרוגרם/מ"ל
1. יש להרכיב מחדש במים בריכוז של 10 מ"ג/מ"ל
2. לדלל עם 0.1% BSA (v/ v) ב- PBS לריכוז מלאי סופי של 100 מיקרוגרם / מ"ל.
גורם נוירוטרופי מוחי (BDNF)
ריכוז במלאי: 100 מיקרוגרם/מ"ל<
גורם נוירוטרופי הנגזר מתאי גליה (GDNF)
ריכוז במלאי: 100 מיקרוגרם/מ"ל
גורם גדילה פיברובלסט 19 (FGF19)
ריכוז במלאי: 100 מיקרוגרם/מ"ל
1. לבנות מחדש 5 mM נתרן פוספט, pH 7.4, בריכוז של 10 מ"ג / mL < br / > 2. לדלל עם 0.1% BSA ב-PBS (v/v) לריכוז מלאי סופי של 100 מיקרוגרם/מ"ל
מעכב סלעים Y-27632
ריכוז במלאי: 10mM
Rebuild ב- DMSO בריכוז של 10 mM.
SB431542<בר/> ריכוז במלאי: 10mM
אינסולין
ריכוז במלאי: 10 מ"ג/מ"ל
1. להחזיר 10 מ"ג אינסולין ב 300 μL של 10 mM NaOH
2. מוסיפים בזהירות 1 M NaOH עד שהתמיסה הופכת לברורה-שקופה
3. מלאו עד 1 מ"ל במים סטריליים

טבלה 2: פתרונות להכנת אורגנואידים להקפאה ולאימונוסטיין. ברשימה מפורטים כל המרכיבים והנפחים המשמשים להכנת התמיסות המשמשות להכנת אורגנואידים להקפאה ו immunostaining.

ג'לטין/סוכרוז<בר/> ריכוז סופי: 7.5%/15% w/w1. שוקלים 15 גרם סוכרוז ו-7.5 גרם ג'לטין בבקבוק זכוכית סטרילי של שוט ומערבבים היטב
2. לחמם מראש את PBS 1× ב 65 ° C < br / > 3. מוסיפים PBS שחומם מראש 1× למשקל סופי של 100 גרם ומערבבים היטב
4. מניחים את בקבוק הזכוכית שוט בצלחת חימום בטמפרטורה של 65°C ומנערים עד שהג'לטין נמס
5. לדגור על 37 מעלות צלזיוס עד לתמיסה מתייצבת

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
ערכת BrainPhys Neuronal Medium N2-A ו-SM15793 - 500 מ"לטכנולוגיה של תאי גזע
תרכיז שומנים מוגדר כימית11905031תרמופישר
BSA מטוהר התגבשות 5470סיגמא
DMEM-F1232500-035תרמופישר
סרום בקר עובריA3840001תרמופישר
ג'לטין מעור בקרG9391סיגמא
גלוטמקס I10566-016תרמופישר
דיבוטיריל cAMP SC- 201567B -500 מ"ג פרילאבו
F12 של האם21765029תרמופישר
קו iPSC אפיזומלי אנושיA18945תרמופישרiPSC6.2
IMDM12440046תרמופישר
אינסולין91077גסיגמא
iPS DF6-9-9T.Bויסל
איזו-פנטאןPHR1661-2 מ"לסיגמא
L-חומצה אסקורביתA-92902סיגמא
מטריג'ל354230קורנינגמטריצת קרום מרתף
מונותיוגיצרולM6154סיגמא
mTeSR185,850 -500 מ״לטכנולוגיות תאי גזע
תוספת N217502048תרמופישר
נוירובזל12348017תרמופישר
פרפורמאלדהיד158127סיגמא
PBS-0.1 כלי שיט חד-פעמימק"ט: IA-0.1-D-001PBS ביוטק
יחידת בסיס PBS-MINI MagDriveמק"ט: IA-UNI-B-501PBS ביוטק
BDNF אנושי רקומביננטי450-02פפרוטק
bFGF/FGF2 אנושי רקומביננטי100-18 ב'פפרוטק
FGF19 אנושי רקומביננטי100-32פפרוטק
GDNF אנושי רקומביננטי450-10פפרוטק
SDF1 אנושי רקומביננטי300-28אפפרוטק
מעכב רוקY-27632 72302טכנולוגיות תאי גזע
SB431542S4317סיגמא
סוכרוזS7903סיגמא
תרכובת O.C.T. רקמות-טק25608-930VWR

תגיות

ביוראקטור לשימוש חד-פעמידיפרנציאציה עצביתטיפול בגורמי גדילההיווצרות אגרגטיםתאי אב של המוח הדגיניתוח צביעה אימונוהיסטוכימיתציטומטריה זרימתיתמיקרוסקופיה קונפוקלית