Method Article

יצירה ותחזוקה של אסטרוספירות באמצעות תאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Cvetkovic, C., et al. Synaptic Microcircuit Modeling with 3D Cocultures of Astrocytes and Neurons from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (2018).

הסרטון מדגים שיטה ליצירת אסטרוספירות מאבות מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים. זה כרוך בצמיחה והתפשטות של תאי גזע עם מדיה תזונתית המכילה גורמי גדילה ומעכבי קינאז. תאים אלה מצטברים ומתמיינים לאסטרוציטים, ויוצרים אסטרוספירות.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. תרבית תאים והכנת מגיבים

  1. מכינים צלחות מצופות לתרבית תאים.
    1. יש לדלל את תמיסת הציפוי של מטריצה חוץ-תאית (ECM) במדיית DMEM/F12 להכנת תמיסת מלאי של 1 מ"ג/מ"ל. Aliquot את פתרון מלאי ECM מדולל לתוך 30 צינורות חרוטיים של 3 מ"ל כל אחד ומיד לאחסן ב -20 ° C. לפתרון עבודה, השהה מחדש 3 מ"ל של מלאי ECM ל- 33 מ"ל של מדיה DMEM/F12 מקוררת מראש, והביא את הנפח הכולל ל- 36 מ"ל לריכוז של 80 מיקרוגרם / מ"ל.
    2. מעיל 1 מ"ל לכל באר של צלחת תרבית תאים 6 בארות עם פתרון עבודה ECM. הוסף 1 מ"ל DMEM/F12 נוספים לכל באר (במידת הצורך) כדי להבטיח שפני השטח של הבאר מכוסים במלואם. אפשר לצלחות תרבית התאים המצופות 6 בארות לשבת בטמפרטורת החדר לפחות שעה אחת לפני השימוש.
      הערה: ניתן לאחסן לוחות מצופים באינקובטור או בטמפרטורה של 4°C למשך עד שבועיים.
  2. הכינו פורמולציות מדיה, גורמי גדילה ומולקולות קטנות.
    1. כדי להכין 500 מ"ל של תווך תאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים (hPSC), הוסף תוספי 20x ו- 500x בהתאם להוראות היצרן.
    2. כדי להכין 500 מ"ל של מדיום עצבי (NM), להוסיף הפרין לריכוז סופי של 2 מ"ג / מ"ל, 1x של פתרון אנטיביוטי/אנטי-מיקוטי, 1x תוסף B27 או 1x תוסף N2 לבקבוק 500 מ"ל של DMEM/F12 עם תוסף L-גלוטמין כפי שפורט קודם לכן.
    3. להכנת תמיסת מלאי של 10 מילימטר (1,000x) של מעכב רו-קינאז Y27632 (Y), יש להוסיף 10 מ"ג אבקה ל-3 מ"ל של מלח חוצץ פוספט (PBS). יש לסנן, לעקר, ליצור aliquot ולאחסן בטמפרטורה של -20°C. יש להשתמש בריכוז עבודה של 10 מיקרומטר במדיה.
    4. להכנת תמיסת מלאי של 20 מ"מ (10,000x) של SB431542, יש להוסיף 10 מ"ג אבקה ל-1.3 מ"ל של דימתיל סולפוקסיד (DMSO). להכנת תמיסת מלאי של 2 מ"מ (1,000x) של DMH1, יש להוסיף 10 מ"ג אבקה ל-13.1 מ"ל DMSO. סינון, עיקור, aliquot, ולאחסן כל פתרון ב -20 ° C. יש להשתמש בכל תמיסה בריכוז עבודה של 2 מיקרומטר במדיה (NM + SB431542 + DMH1).
      הערה: פרוטוקול זה ממליץ על ריכוזי עבודה של 2 מיקרומטר הן של SB431542 והן של DMH1 בהתבסס על התצפיות שלנו ודיווחים מאחרים הקובעים כי ריכוז זה מקדם ביעילות אינדוקציה עצבית מתאי גזע גזעיים גזעיים. כמו כן דווח על ריכוזים גבוהים יותר30. בנוסף, עם מדיה חלופית, הוכח גם כי מולקולות קטנות אינן נחוצות להמרה עצבית גבוהה. לפיכך, ריכוזי העבודה ישתנו בהתאם לסביבות תרבית תאים חלופיות, וריכוזים אופטימליים צריכים להיבדק על ידי חוקרים בודדים.
    5. כדי להכין תמיסות מלאי בודדות של 100 מיקרוגרם/מ"ל (10,000x) של גורם גדילה אפידרמלי (EGF) וגורם גדילה פיברובלסטי-2 (FGF2), יש להוסיף 1 מ"ג מכל אחד מהם ל-10 מ"ל PBS + 0.1% BSA. Aliquot EGF ו- FGF2 תמיסות מלאי לתוך 50 μL aliquots ולאחסן ב -80 ° C. להשתמש בכל אחד מהם בריכוז עבודה של 10 ננוגרם/מ"ל במדיה; לדוגמה, הוסף 5 μL EGF ו- 5 μL FGF2 עד 50 מ"ל של NM (NM + EGF + FGF2).
    6. כדי להכין תמיסת מלאי של דוקסיציקלין הידרוכלוריד (Dox), יש להמיס תחילה אבקה ב-DMSO ל-100 מ"ג/מ"ל ולאחסן בטמפרטורה של -20°C. יתר על כן, לדלל אותו כדי ליצור תמיסת מלאי של 2 מ"ג / מ"ל (1,000x) ב- PBS ולאחסן ב -20 ° C. יש להשתמש בריכוז עבודה של 2 מיקרוגרם/מ"ל במדיה; לדוגמה, הוסף 50 μL Dox ל- 50 מ"ל של NM (NM + Dox).
      הערה: אין להקפיא מחדש את התמיסות לאחר ההפשרה.

2. יצירת תת-סוגים עצביים מתאים פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hPSCs)

הערה: כל תרביות התאים צריכות להישמר באינקובטור עם 5% CO2 ב 37 ° C. תרביות אלה נשמרות ברמות חמצן בחדר, אם כי ניתן להשתמש ברמות נמוכות יותר.

  1. צור ותחזק אבות אסטרוציטים (hAstros) מ- hPSCs.
    הערה: סעיף זה מספק פרוטוקול בידול קצר ופשוט. לתיאור מפורט (עם היווצרות גוף עוברי, בחירת רוזטה ושלבי דפוסים אזוריים), עיינו בפרוטוקול שתואר קודם לכן (איור 1A, תיבה ירוקה מנוקדת).
    1. אשכולות זרעים של hPSCs (איור 1B) על לוחות 6 בארות מצופי ECM (ראו שלב 1.1) עם 2 מ"ל של hPSC בינוני + Y לכל באר. יש להאכיל את תאי הגזע מדי יום עד שהם מתלכדים בכ-50% ומתפצלים לפי הצורך.
      1. כדי לפצל hPSCs, הוסף 1 מ"ל של מגיב עובר לבארות ולשאוף לאחר 1 דקה. לדגור על תאים בטמפרטורת החדר במשך 5 דקות, להוסיף 1 מ"ל של hPSC בינוני, ולפצל אגרגטים 1:10 על בארות מצופות ECM חדשות ב 2 מ"ל של hPSC בינוני + Y לכל באר.
    2. שמור על תאי הגזע עד שהם כ 50% confluent, ולאחר מכן לשנות מדיה NM + SB431542 + DMH1 כדי לגרום התמיינות עצבית (יום 0). כאשר התאים נפגשים בכ-95%, יש לפצל ביחס של 1:6 לבארות חדשות מצופות ECM באותו תווך.
    3. ביום ה -14, נתקו את התאים עם תמיסת הניתוק והעבירו אותם לבקבוק לא מצופה עם Y כדי לקדם את היווצרות האגרגטים.
      הערה: התוספת של Y משמשת לקידום הישרדות התא ויצירת כדורים, אך אינה נכללת במהלך כל הזנה.
    4. עבור הדור של אבות עצביים ונוירונים (hNeurons), להשתמש אלה יום 14 תאים כמתואר להלן. לחלופין, השתמש בתאים אלה בנקודות זמן מאוחרות יותר מתרביות חד-שכבתיות או כדוריות לפני שמתרחשת הבשלה עצבית או גליוגנזה מתחילה.
      הערה: כברירת מחדל, פרוטוקול זה מייצר אסטרוציטים גביים-קורטיקליים. עם זאת, ניתן להגדיר תת-סוגים של אסטרוציטים באופן אזורי על ידי הוספת מורפוגנים בעלי תבניות במידת הצורך. חומצה רטינואית (RA) עשויה להיות מוסיפה כדי להפוך תאים לפנוטיפים של חוט השדרה, בעוד שקיפוד קולי (SHH), אגוניסט מוחלק (SAG) או פורמורפמין ייצרו פנוטיפים גחונים.
    5. ליצירת אבות אסטרוציטים ואסטרוציטים בצברים תלת-ממדיים שנוצרו באופן ספונטני (hAstrospheres), עברו ל-NM + EGF + FGF2 והזינו מדי שבוע (או לפי הצורך כדי להבטיח pH יציב) כפי שפורט קודם לכן.
      1. נתקו בעדינות את אגרגטי hAstro עם תמיסת ניתוק כאשר מופיעים מרכזים כהים והוציאו כדורים המתחברים באופן ספונטני. שברו כדורים בעדינות פעם בשבוע כדי לשמור על בריאות הכדור ולהימנע מליבות נמקיות.
        הערה: אין לחרוג מ-5 דקות טיפול בתמיסת ניתוק.
      2. לאחר 4-6 חודשים של הרחבה, יש לאשר את זהות התא ולהקפיא באמצעי שימור בהקפאה (בהתאם להוראות היצרן) או בתנאי אחסון חלופיים לשימור ארוך טווח בחנקן נוזלי או להשתמש מיד לניסויים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
איור 1: תיאור הדרגתי של התמיינות והיווצרות של ספירות עצביות תלת-ממדיות הנגזרות מ-hPSCs. (א) ציר הזמן של שלבי מפתח בפרוטוקול. (B) אוכלוסיות טהורות של תאים עצביים יכולות להיווצר מתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hPSCs). ליצירת אבות אסטרוציטים (קופסה ירוקה מנוקדת), ראה שלב 2.1. (C) נוירונים מושרים (iNeurons; ראה סעיף 2.2) הנוצרים מתאי גזע גזעיים טרנסגניים באמצעות ביטוי יתר מושרה של נוירוגני...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
6 צלחת בארפישר סיינטיפיק08-772-1B
15 מ"ל צינורות חרוטייםאולימפוס פלסטיק28-101
אקוטאזהסיגמאA6964-100MLפתרון ניתוק
צלחת AggreWellטכנולוגיות תאי גזע34850
תמיסת שטיפה נגד היצמדותטכנולוגיות תאי גזע7010מניעת הידבקות תאים לצלחות מיקרו-באר
אנטי/אנטיתרמופישר15240062
B27תרמופישר17504044מוסף מדיה
BrainPhys מדיום עצביטכנולוגיות תאי גזע5790חלופה נוירופיזיולוגית בינונית בסיסית
קריוסטר CS10טכנולוגיות תאי גזע7930אמצעי שימור בהקפאה עם 10% DMSO
DMEM/F12תרמופישר10565-042עם תוסף GlutaMAX
DMH-1טכנולוגיות תאי גזע73634סכנה: רעיל בבליעה. ריכוז עבודה: 2 uM
דוקסיציקלין הידרוכלוריד (Dox)סיגמאD3072-1 מ"לסכנה: רעיל לנשים בהריון. ריכוז עבודה: 2 ug / mL
גורם גדילה אפידרמיס (EGF)פפרוטקAF-100-15ריכוז עבודה: 10 ng/mL
גורם גדילה פיברובלסט-2 (FGF)פפרוטק100-18 ב'ריכוז עבודה: 10 ng/mL
Hemacytometer או מונה תאים אוטומטילייף טכנולוגיותAMQAX1000
מטריצת קרום מטריג'לקורנינג354230פתרון ציפוי ECM. ריכוז עבודה: 80 מ"ג / מ"ל. הכינו על קרח וודאו שהפיפטה, הצינורות והמדיה מקוררים מראש.
פתרון הרכבה
N2תרמופישר17502048מוסף מדיה
מלח חוצץ פוספט (PBS)טכנולוגיות תאי גזעCA008-300
ReLeSRטכנולוגיות תאי גזע5872ניתוק ומגיב עובר
מעכב רו-קינאז Y27632- (Y)טוקריס1254ריכוז עבודה: 10 uM
SB431542טכנולוגיות תאי גזע72234ריכוז עבודה: 2 uM
בקבוק תרבות T25אולימפוס פלסטיק25-207מכסים מאווררים
T75 תרבות בקבוקאולימפוס פלסטיק25-209מכסים מאווררים

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Human Pluripotent Stem CellsAstrosphere FormationNeural DifferentiationRho kinase InhibitorECM coated PlateDetachment SolutionSpheroid AggregationAstrocyte ProgenitorsGrowth Factor MediumProgenitor Maturation

Related Articles