1. הכנת פיברובלסטים בעור לתכנות מחדש
- באמצעות מערכת הפשרת תאים אוטומטית או אמבט מים של 37 מעלות צלזיוס, הפשירו את הפיברובלסטים העוריים האנושיים הבוגרים (aHDFs) ופלטו 200,000 לכל בקבוק T75 (ספירה עם מונה תאים אוטומטי) ב-10 מ"ל של תווך פיברובלסטים (ראו טבלה 1) ב-37°C ב-5% CO2.
- בצע שינוי בינוני מלא עם מדיום פיברובלסט למחרת.
- שנה את התווך פיברובלסט כל 3-4 ימים עד שהתאים מגיעים למפגש של 95%.
הערה: בקבוק אחד יכיל כ-1,000,000 תאים.
2. ציפוי לתכנות מחדש (יום −1)
הערה: מומלץ להשתמש בציפוי ג'לטין לניסויים קצרי טווח (עד 30 יום); לחילופין, לניסויים ארוכי טווח מומלץ להתחיל בציפוי פולי-L-אורניתין, פיברונקטין ולמינין (PFL).
- 60 דקות לפני ציפוי aHDFs לתכנות מחדש, לצפות צלחת 24 באר עם 0.1% ג'לטין (250 μL / באר) ולדגור ב 37 ° C.
- שאפו את מדיום הפיברובלסטים על ה-aHDFs. יש לשטוף פעם אחת עם מלח חיץ פוספט (DPBS) של Dulbecco. נתק את התאים עם 0.05% טריפסין (1.5 מ"ל לכל צלוחיות T75) ב 37 ° C למשך 3-5 דקות.
- הוסף מדיום פיברובלסט כדי לנטרל את הטריפסין (3 מ"ל להדחה לכל צלוחיות T75) ולאסוף את התאים המנותקים בצינור של 15 מ"ל על ידי שטיפת התאים בבקבוק פעמיים.
- סובב את התאים למטה ב 400 x גרם במשך 5 דקות. להשליך supernatant ולהשהות מחדש את גלולת התא ב 1 מ"ל של תווך פיברובלסט.
- ספור את התאים באמצעות מונה תאים אוטומטי (כדי להבטיח המרה באיכות טובה, בדוק כי כדאיות התא היא מעל 90% עם צביעה כחולה טריפאן).
- לקבלת צלחת שלמה של 24 בארות, הכינו תרחיף של 1,320,000 תאים ב-13.2 מ"ל של תווך פיברובלסטים כדי להשיג השעיה של 100,000 תאים/מ"ל של תווך (או 55,000 תאים/באר ב-550 מיקרוליטר של תווך פיברובלסטים כפול מספר הבארות הדרושות).
- שואפים את הג'לטין מהצלחת ושוטפים פעמיים עם DPBS. הוסף 500 μL של תרחיף התא לכל באר ודגור לילה ב 37 ° C ב 5% CO2.
3. התמרה ויראלית (יום 0)
הערה: עבודה עם חלקיקים לנטי-ויראליים דורשת ציוד מקטגוריה 2 ושימוש בסוכן כדי לנטרל את הנגיף. מומלץ מאוד גם ללבוש זוגות כפולים של כפפות.
- התחממו 13.2 מ"ל של פיברובלסט בינוני עד 37 מעלות צלזיוס.
- הפשרה וקטור לנטיויראלי המכיל את גורמי השעתוק achaete-scute family bHLH transcription factor 1 (Ascl1) ו-Brn2 עם שני RNA קצרים (shRNA) המכוונים לגורם שעתוק השתקת RE1 (REST) בטמפרטורת החדר.
- הוסף את הנפח הדרוש של lentivirus כדי להדביק את aHDFs בריבוי של זיהום (MOI) של 20 למדיום ללא כל משפרי טרנסדוקציה.

- החלף את התווך בצלחת 24 בארות בתווך פיברובלסט המכיל את הווקטור הלנטיויראלי (500 מיקרוליטר / באר) ודגור למשך הלילה ב 37 ° C ב 5% CO2.
- למחרת, להחליף את המדיום בבארות עם מדיום פיברובלסט טרי ללא וקטור lentiviral.
הערה: המדיום נחשב מדבק במשך 7 ימים וככזה, יש להשתמש בהליכי הגנה וטיפול נאותים במהלך השבוע הראשון לאחר התמרה ויראלית.
4. תחזוקת התאים הממירים
הערה: ברגע שההמרה מתחילה, התאים רגישים להרמה; דאגו להטות את הצלחת כלפי מעלה והשתמשו בפיפט של 1,000 מיקרוליטר בעת הסרת המדיה כדי למנוע ניתוק תאים.
- ביום השלישי, הסר את מדיום הפיברובלסטים והוסף 500 μL של מדיום המרה עצבי מוקדם (ראה טבלה 1).
- פעמיים עד שלוש בשבוע, להוציא 225 μL של מדיום ישן מן הבאר ולהוסיף 250 μL של מדיום המרה עצבי מוקדם טרי.
- ביום ה-18, הסר את כל התווך מכל באר והחלף ב-500 מיקרוליטר של מדיום המרה עצבי מאוחר (ראה טבלה 1).
- המשיכו לשנות מחצית מהתווך כפי שצוין לעיל עם מדיום המרה עצבי מאוחר כל 2-3 ימים עד ליום ה-25 או נקודת הסיום של הניסוי (איור 1A).
טבלה 1. הרכב המדיות השונות בהן נעשה שימוש. תיאור מלא של הרכב המדיה הדרוש בפרוטוקול זה כולל מדיום פיברובלסט, מדיום המרה עצבי מוקדם, מדיום המרה עצבי מאוחר.
| ריכוז מלאי | ריכוז עבודה |
| Fibroblast medium |
| מדיום בסיסי | לא ישים | לא ישים |
| פניצילין/סטרפטומיצין | 10,000 U/מ"ל | 100 מ"ג/מ"ל |
| פ.ב.ס. | לא ישים | 10% |
| Early neuronal conversion medium (ENM) | |
| מדיום דיפרנציאציה עצבית | לא ישים | לא ישים |
| פניצילין/סטרפטומיצין | 10,000 U/מ"ל | 100 מ"ג/מ"ל |
| CHIR99021 | 10 מ"מ | 2 מיקרומטר |
| SB-431542 | 20 מ"מ | 10 מיקרומטר |
| נוגין | 100 מיקרוגרם/מ"ל | 0.5 מיקרוגרם/מ"ל |
| LDN-1931189 | 10 מ"מ | 0.5 מיקרומטר |
| VPA | 1 מטר | 1 מ"מ |
| LM-22A4 | 20 מ"מ | 2 מיקרומטר |
| GDNF | 20 מיקרוגרם/מ"ל | 2 נ"ג/מ"ל |
| NT3 | 10 מיקרוגרם/מ"ל | 10 נ"ג/מיקרוליטר |
| db-cAMP | 50 מ"מ | 0.5 מ"מ |
| Late Neunal Conversion medium (LNM) | |
| מדיום דיפרנציאציה עצבית | לא ישים | לא ישים |
| פניצילין/סטרפטומיצין | 10,000 U/מ"ל | 100 מ"ג/מ"ל |
| LM-22A4 | 20 מ"מ | 2 מיקרומטר |
| GDNF | 20 מיקרוגרם/מ"ל | 2 נ"ג/מ"ל |
| NT3 | 10 מיקרוגרם/מ"ל | 10 נ"ג/מיקרוליטר |
| db-cAMP | 50 מ"מ | 0.5 מ"מ |