כל הנהלים הנוגעים למודלים של בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.
1. הכנת ihOEG (Ts12 ו-Ts14) לבדיקה
הערה: שלב זה חייב להיעשות 24 שעות לפני נתיחת RGN והתרבות המשותפת.
- יש לטפל בכיסויי Ø בקוטר 12 מ"מ עם פולי-ל-ליזין (PLL) בגודל 10 מיקרוגרם/מ"ל למשך שעה < ל->
הערה: את הכיסויים ניתן להשאיר למשך הלילה בתמיסת PLL.
- שטפו את הכיסויים במי מלח חיץ פוספט (PBS) שלוש פעמים.
- נתקו תאי ihOEG Ts12 ו-Ts14 מצלחת תרבית התאים p60.
- הוסף 4 מ"ל של DMEM/F12 (בינוני בסיסי)-FBS (נסיוב בקר עוברי) מדיום לצינור חרוטי 15 מ"ל. חם ב 37 °C (77 °F) באמבט מים נקיים.
- הסר את המדיום מן הצלחות ולשטוף את התאים עם 1 מ"ל של 1x PBS (פוספט-buffered מלוחים)-EDTA (אתילן diamine tetraacetic חומצה) פעם אחת.
- הוסף 1 מ"ל של טריפסין-EDTA לתאי OEG ודגור במשך 3-5 דקות ב 37 ° C, 5% CO2.
- לאסוף תאים עם פיפטה p1000 ולהעביר אותם למדיום מוכן בשלב 2.1.
- צנטריפוגה למשך 5 דקות ב 200 x גרם.
- לשאוף את supernatant.
- הוסף 1 מ"ל של מדיום ME10 והשהה מחדש את הכדור.
- ספור את מספר התא בהמוציטומטר.
- זרעו 80,000 תאי Ts14 או 100,000 תאי Ts12 / היטב על הכיסויים בצלחות 24 בארות ב 500 מיקרוליטר של מדיום ME10.
- תאי תרבית ב 37 ° C ב 5% CO2 במשך 24 שעות.
2. דיסקציה של רקמת הרשתית
הערה: חולדות Wistar זכרים בני חודשיים משמשים כמקור RGN. שתי רשתיות (חולדה אחת) ל-20 בארות של צלחת של 24 בארות. חומר כירורגי אוטוקלאבי לפני השימוש. ערכת דיסוציאציה Papain נרכשת באופן מסחרי (Table of Materials). בצע את הוראות הספק להגדרה מחדש. לבנות מחדש D, L-2-amino-5-phosphonovaleric חומצה (APV) במלאי 5 mM ולהכין את aliquots.
- ביום הבדיקה, הכינו את המדיה הבאה.
- הכינו צלחת תרבית תאים p60 עם 5 מ"ל EBSS קר (תמיסת מלח מאוזנת של ארל) (בקבוקון 1 של ערכת דיסוציאציה פפאין).
- הכינו צלחת תרבית תאים p60 עם בקבוקון 2 (פפאין) משוחזר של ערכת דיסוציאציה פפאין בתוספת 50 μL של APV. לאחר מכן, הוסף 250 μL של בקבוקון משוחזר 3 (DNase בתוספת 5 μL של APV).
- בצינור סטרילי, מערבבים 2.7 מ"ל של בקבוקון 1 עם 300 μL של בקבוקון 4 (מעכב פרוטאז אלבומין-ovomucoid). הוסף 150 μL של בקבוקון 3 (DNase) ועוד 30 μL של APV.
- הכן 20 מ"ל של Neurobasal-B27 בינוני (NB-B27).
- להקריב חולדה על ידי חנק עם CO2.
- הסר את הראש על ידי עריפת ראש עם גיליוטינה; מניחים אותו בצלחת פטרי 100 מ"מ ורסס את הראש עם אתנול 70% לפני הנחתו על מכסה מנוע זרימה למינרית.
- חותכים את השפם של החולדה עם מספריים כדי שלא יפריעו למניפולציה של העין.
- אחוז את עצב הראייה עם מלקחיים כדי למשוך את גלגל העין מספיק כדי להיות מסוגל לעשות חתך על פני העין עם אזמל.
- הסירו את העדשה ואת הזגוגית והוציאו את הרשתית (רקמה כתומה) בעוד שכבות העין הנותרות (כולל שכבת אפיתל הפיגמנט) נשארות בפנים.
- הניחו את הרשתית בצלחת תרבית תאים p60 שהוכנה בשלב 2.1.1.
- מעבירים את הרשתית לצלחת תרבית התאים p60 שהוכנה בשלב 2.1.2 וחותכים אותה עם האזמל לחתיכות קטנות בגודל משוער < 1 מ"מ.
- מעבירים לצינור פלסטיק 15 מ"ל.
- לדגור על הרקמה במשך 30 דקות, באינקובטור לח ב 37 ° C תחת 5% CO2, עם תסיסה כל 10 דקות.
- נתק גושי תאים על ידי פיפטציה למעלה ולמטה עם פיפטה פסטר זכוכית.
- צנטריפוגה את מתלה התא ב 200 x גרם במשך 5 דקות.
- השליכו את הסופרנטנט. כדי להשבית פפאין, להשעות מחדש את גלולת התא בתמיסה שהוכנה בשלב 2.1.3 (1.5 מ"ל עבור 2 עיניים).
- בזהירות צינור זה תא השעיה לתוך 5 מ"ל של בקבוקון reconstituted 4.
- צנטריפוגה ב 200 x גרם במשך 5 דקות.
- תוך כדי צנטריפוגה, הסר לחלוטין את מדיום ME-10 מלוח תא הבאר OEG 24 (שהוכן קודם לכן בשלב 1) והחלף אותו ב- 500 μL של מדיום NB-B27 לכל באר.
- השליכו את הסופרנאטנט והשהו מחדש את התאים ב-2 מ"ל של תווך NB-B27.
- צלחת 100 μL של תרחיף תאי רשתית, לכל באר של צלחת m24, על PLL מטופל או OEG monolayers-coverslips.
- שמור על תרביות בטמפרטורה של 37°C עם 5% CO2 למשך 96 שעות ב-NB-B27 בינוני.