כל ההליכים הנוגעים לדגימות בעלי חיים נבדקו ואושרו על ידי הוועדה המתאימה לבדיקה אתית של בעלי חיים.
1. הכנת חומרה ותוכנה להקלטות רב ערוציות
- הגדר מערכת איסוף נתונים של 16 ערוצים בהתאם להוראות היצרן.
הערה: ניתן להשתמש במספר מגברים ומערכות איסוף נתונים הזמינים מסחרית כדי לאסוף הקלטות רב-ערוציות. בניסויים המתוארים כאן, אותות אנלוגיים מועברים באמצעות לוח ייחוס אלקטרודות לשני מגברים, שם הם מוגברים (2000x) ומסוננים (0.1-10kHz). כניסות אנלוגיות למערכת איסוף הנתונים עוברות דיגיטציה בקצב של 40kHz.
- הדקו את מתאם שלב הראש המתאים בן 16 הערוצים למיקרומניפולטור במיקרוסקופ. כוון את המתאם כך שיציאות המחבר הנשיות פונות כלפי מטה.
- התאם את זווית הפעולה של מיקרומניפולטור זה כך שהוא מכוון כלפי מטה לכיוון תא ההקלטה בזווית של כ -70° ביחס לאופקי.
- חבר את קלט במת הראש לבדיקה בגודל 16 x 1 עבור אלקטרופיזיולוגיה חוץ גופית באמצעות מתאם שלב הראש המעוגן למיקרומניפולטור.
- חבר את מחבר פלט במת הראש למערכת איסוף הנתונים.
- התקן תוכנה מתאימה לרכישת נתונים. הגדר 15 ערוצי קלט כך שיתאימו לאותות קלט מ- 15 אנשי הקשר הרב-ערוציים הראשונים. הגדר את הערוץ הנותר לקבלת קלט מהאלקטרודה התוך-תאית.
הערה: בעת איסוף וניתוח נתונים, יש להקפיד לשקול מפות אלקטרודות ומתאם כדי לוודא שהאות המתאים מתאים למגע האלקטרודה שממנו הוא נאסף.
2. תצורה של פרוטוקולים לגירוי אור
- הגדירו מערכת אספקה קלה והתקינו את התוכנה הנלווית.
- פתח את התוכנה. בחר תצורת חיווט חומרה שבה מקור טריגר (דיגיטלי/TTL (Transistor-Transistor Logic) Out) מספק אות Trigger In למערכת העברת האור, ומערכת העברת האור מספקת אות Trigger Out לנורית LED (דיודה פולטת אור) של 470 ננומטר.
- הרכבה של עדשה אובייקטיבית בעוצמה גבוהה. באמצעות מצלמה דיגיטלית, כייל יעדים בעלי עוצמה גבוהה באמצעות מערכת העברת האור.
- צור רצף פרופילים חדש של פרופילי גירוי אור.
- צרו תבנית בחירה. בניסויים המתוארים כאן, מעגל בקוטר 150 מיקרומטר מאפשר הפעלה ספציפית לשכבה של הדקי אקסונים.
- כדי לבנות רצף פרופילים, העתק והדבק פרופיל זה עבור כל אחד ממספר גירסאות הניסיון.
- צור רשימת צורות גל המכילה צורות גל בכל עוצמת אור, משך פולס או מספר פולס
.
- הקצאה אקראית של צורות גל לכל פרופיל. כל פרופיל עם צורת הגל שהוקצתה לו מתאים לפעימת טריגר אחת מתוך קלט TTL דיגיטלי או ניסוי אחד.
- שמור את רצף הפרופיל.
- בתוכנת רכישת הנתונים, צור פרוטוקול חדש.
- הגדר את מספר גירסאות הניסיון כך שיהיה שווה למספר הפרופילים ברצף הפרופילים שנוצר.
- בחר קלט אות כך שיתאים לאלה שהוגדרו בשלב 1.6. הגדר פרוטוקול המספק פלט TTL דיגיטלי יחיד, המקליט מ- 16 ערוצי קלט אלה למשך פרק זמן מתאים לפני ואחרי ההדק הדיגיטלי.
3. הצבת בדיקה רב ערוצית בפרוסת רקמת מוח ex vivo
- מחורר eACSF מבעבע (נוזל מוחי מלאכותי ניסיוני) (לא בשקיות אטומות) ב 3-6 מ"ל / דקה.
- העבירו את פרוסת המוח המכילה אזור מעניין לרשת הרשת בתא זילוח במיקרוסקופ. עוגן עם נבל פלטינה
- סובבו את רשת הרשת כך שקו מגעי האלקטרודות בקצה הדיסטלי של הגשושית הרב-ערוצית יהיה מאונך בקירוב למשטח הפיאלי.
- הנמיכו את הגשושית הרב-ערוצית לכיוון פני השטח של הפרוסה תחת תאורת שדה רחב ובקרה עדינה של המיקרומניפולטור.
- סובב את צריח קוביית המסנן כדי להפעיל את קוביית המסנן המתאימה כדי להמחיש את חלבון הכתב הפלואורסצנטי המתבטא במסופי אקסונים של אפרנטים קליפת המוח. במידת הצורך, סובבו את הפרוסה כדי ליישר את הגשושית בצורה מדויקת יותר עם משטח הפיאל.
- מקם את הגשושית ממש מעל מישור הפרוסה, ~ 200 מיקרומטר פחות ממיקום המטרה הסופי לאורך ציר ה-x, תוך השארת לפחות תעלה אחת מחוץ לגבול אזור הרקמה המוקלטת.
- הכנס לאט את הבדיקה לתוך הפרוסה על ידי הזזת המניפולטור לאורך ציר האורך שלה. כדי למזער את הנזק לרקמה, הקדמו את הבדיקה רק במידה שהקצוות החדים נראים רק מתחת לפני השטח של הרקמה. פעולה זו תמזער את הנזק לרקמה ועדיין תבטיח שמגעי האלקטרודות יהיו במגע עם הרקמה.
4. תיקון הידוק נוירונים ממוקדים וקבלת תצורה של תאים שלמים
- העבר את מקור eACSF לפתרון הבקרה בשקיות.
- זהה תאים המסומנים באופן פלואורסצנטי לרישום מהדק טלאי ממוקד.
- הגבל את דיאפרגמת קשתית הצמצם לקוטר הקטן ביותר. הפעל עדשה אובייקטיבית בעוצמה נמוכה והבא את הרקמה למיקוד.
- מרכז את האור על פני אזור רקמה הסמוך (אך לא חופף) לבדיקה הרב-ערוצית.
- הפעילו את המטרה טבילה במים בעוצמה גבוהה (40x או 60x), תוך שימוש זהיר כדי למנוע מגע בין הגשושית הרב-ערוצית לבין עדשת המטרה.
- סובב את צריח קוביית המסנן כדי להפעיל את ערכת המסננים המתאימה כדי לאפשר הדמיה של תאים המבטאים סמן פלואורסצנטי תלוי Cre.
- זהה תא המסומן באופן פלואורסצנטי כיעד לרישום מהדק טלאי. הרם את עדשת האובייקט כדי ליצור מספיק מקום להורדת פיפטת טלאי.
- טען פיפטת טלאי (ראה טבלה 1) בתמיסה פנימית (טבלה 2) והרכיב פיפטה למחזיק אלקטרודות. באמצעות מזרק 1 מ"ל, להפעיל לחץ חיובי המתאים ~ 0.1mL אוויר.
- הורידו את פיפטת המדבקה לתמיסה. הביאו את קצה הפיפטה למיקוד תחת הנחיה חזותית.
- השג הקלטה של תא שלם מתא היעד באמצעות השלבים שהודגמו קודם לכן33.
- אם אתם מתכננים להעריך שינויים בתכונות הפנימיות של התא (למשל, התנגדות קלט, קצב ירי פוטנציאלי לפעולה בתגובה לצעדים הנוכחיים), בצעו רישומים אלה. אחרת, עבור לפרוטוקול גירוי האקסון להלן.
טבלה 1: הרכב נוזל השדרה המוחי המלאכותי ותמיסה תוך-תאית. ריאגנטים וריכוזים עבור eACSF, ותמיסת פיפטה תוך תאית עבור הקלטות מהדק טלאי מפורטים.
| ניסוי ACSF, eACSF (ב-mM) |
| NaCl | 111 |
| NaHCO3 | 35 |
| HEPES | 20 |
| KCl | 1.8 |
| CaCl2 | 2.1 |
| MgSO4 | 1.4 |
| KH2PO4 | 1.2 |
| גלוקוז | 10 |
| פתרון פנימי |
| קיי-גלוקונאט | 140 |
| NaCl | 10 |
| HEPES | 10 |
| EGTA | 0.1 |
| MgATP | 4 |
| NaGTP | 0.3 |
| pH = 7.2 |