הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

Dissection והתרבות של גנגליון צ'יק Statoacoustic Explants ואת חוט השדרה ג'ל קולגן עבור מבחני תוצאה Neurite

12K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/3600

⸱

20 בדצמבר 2011

 , 

במאמר זה

סיכום

אנו מדגימים כיצד לנתח ותרבות חומוס הגנגליון E4 statoacoustic ו E6 explants חוט השדרה. Explants הם תרבותי תחת בסרום ללא תנאים ג'ל קולגן 3D עבור 24 שעות. ההיענות Neurite נבדק עם המדיום גורם הגדילה, שיושלם עם חלבון מצופים חרוזים.

תקציר

איברי חושים של האוזן הפנימית עוף מעוצבבים על ידי תהליכים של הפריפריה הגנגליון (SAG) נוירונים statoacoustic. עצבוב איבר חושי תלוי בשילוב רמזים של האקסון הדרכה 1 וגורמים הישרדות 2 הממוקמים לאורך מסלול של האקסונים לגדול ו / או מטרות בתוך החושית שלהם איברים. לדוגמה, הפרעה תפקודית עם מסלול הדרכה קלאסי האקסון איתות, semaphorin-neuropilin, שנוצר misrouting של אקסונים otic 3. כמו כן, גורמי גדילה אחדים לידי ביטוי את יעדי חושית של האוזן הפנימית, לרבות Neurotrophin-3 (NT-3) ו neurotrophic נגזר המוח פקטור (BDNF), הופעלו חיות טרנסגניות, שוב מובילה misrouting של אקסונים SAG 4. אלו מולקולות לקדם אותו בשתי הישרדות neurite תולדה של נוירונים SAG חומוס במבחנה 5,6.

כאן, אנו לתאר ולהדגים את שיטת במבחנה אנחנו כרגע uלשיר על מנת לבחון את ההיענות של neurites חומוס SAG חלבונים מסיסים, כולל morphogens ידוע כגון Wnts, כמו גם גורמי גדילה חשובים לקידום neurite SAG תולדה והישרדות נוירון. באמצעות מערכת זו המודל, אנו מקווים להסיק מסקנות לגבי ההשפעות כי ligands המופרש יכול להפעיל על ההישרדות SAG נוירון ו תולדה neurite.

Explants SAG הם גזור ביום עובריים 4 (E4) תרבותי תלת ממדי ג'ל סרום קולגן תחת ללא תנאי למשך 24 שעות. ראשית, ההיענות neurite הוא נבדק על ידי explants culturing עם בינוני בתוספת חלבון. לאחר מכן, כדי לשאול אם מקורות נקודת ligands מופרש יכולה להיות השפעה על כיווני תולדה neurite, explants הם שיתוף תרבותי עם חלבון מצופים חרוזים assayed על היכולת של חרוז כדי לקדם או לעכב מקומית תוצאה. אנו כוללים גם הפגנה של דיסקציה (שינה פרוטוקול 7) והתרבות של E6 explants חוט השדרה. אנומשתמשים באופן שגרתי explants חוט השדרה על מנת לאשר bioactivity של חלבונים חלבון ספוג חרוזים, ולוודא מינים תגובתיות צולבת עם רקמה חומוס, בתנאים תרבות כמו explants SAG. אלה מבחני חוץ גופית הם נוח במהירות ההקרנה של מולקולות מפעילים trophic (הישרדות) או טרופי (כיווני) ההשפעות על נוירונים SAG, במיוחד לפני ביצוע מחקרי in vivo. יתר על כן, שיטה זו מאפשרת בדיקה של מולקולות בודדות תחת בסרום ללא תנאים, עם הישרדות נוירון גבוהה 8.

פרוטוקול

מתכונים

צ'יק האצבעות

7.2 גרם NaCl
0.23 גר ' CaCl 2 + 2H 2 O
0.37 גר ' KCl
0.115 גרם Na 2 HPO 4
900 מ"ל מים (תרבות כיתה רקמות)

הערה: התאמת ה-pH ל -7.4. תביאו נפח סופי 1000 מ"ל עם מים.

10X PBS

40 גרם NaCl
1 גרם KCl
7 גרם Na 2 HPO 4
1.2 גרם KH 2 PO 4
450 מ"ל DEPC מים

הערה: התאמת ה-pH ל -7.4. תביאו הסופי נפח 500 מ"ל מים. ריכוז עבודה (1X) נעשית על ידי דילול המניות חלק 1 10X עם 9 חלקים של מים רקמות תרבות כיתה, כגון זה שהושג עם מערכת הקרנה Millipore UV כדי לייצר מים עם מוליכות MΩ 18 ס"מ.

SAG בינוני explant מחזיק

  • DMEM/F12 עם L-גלוטמין, 10 Hepes mM
  • אינסולין 10%, העברת, סלניום (1 ​​ITS)
  • 1% עט סטרפטוקוקוס

Explant בינוני תרבות

  • SAG בינוני explant מחזיק
  • 10 ng / ml Neurotrophin-3 (NT-3)
  • 10 ng / ml גורם neurotrophic ריסי (CNTF)

חוט השדרה לנתיחה ובינוניים מחזיק

  • L-15
  • 10% עגל בסרום עוברי
  • 1% עט סטרפטוקוקוס

לדגור על הביצים 37-38 ° C. לעקר לנתח בכלים צלחת Sylgard לנתח באתנול 70%. הביתור צלחות וכלים יכול להיות גם UV לעקר לילה.

> 1. הכנה ביד

  1. המקום חרוזים microtube עם 1 מ"ל סטרילי PBS, לערבב, ולחכות החרוזים להתיישב אל החלק התחתון של הצינור.
  2. שטפו את החרוזים כמה פעמים על ידי הסרת supernatant לאחר חרוזים יש מיושב resuspend ב PBS.
  3. דגירה את החרוזים מטוהרים חלבון (בדילול מלא PBS) או PBS לבד (Control) במשך שעה 1 בטמפרטורת החדר.
  4. יש לשטוף את החרוזים PBS ולאחסן בצלחת 24-היטב עם 1ml PBS עד ממוקם קולגן.

2. הגנגליון Statoacoustic לנתיחה

  1. ב E4 להסיר את העובר מן הביצה ומניחים אותו בצלחת חומוס עם פתרון של Ringer להסרת קרומים עובריים.
  2. מניחים את העובר בצלחת פטרי Sylgard © מרופדת מלא HBSS קר עמדת העובר על צידו עם שלפוחית ​​otic פונה כלפי מעלה. פין העובר על צלחת באמצעות סיכות לנתח.
  3. באמצעות שתי סיכות לנתח, לעשות חתך אופקי דרך העור הגחון מידשקיות התעלה, כ איפה זה פוגש את צינור שבלול. ביצוע חתך אנכי הקדמי ואת האחורי לשקוע. שימוש במלקחיים או סיכה להרים לנתח ולהסיר את קפל העור גובל שלושה חתכים.

    הערה: SAG ממוקם בקצה anteroventral של otocyst, בערך באמצע הדרך בין כיס הגבי המופיעה בקלות עם תאורה בסיס brightfield, ואת צינור שבלול הגחון אשר פרויקטים ventromedially והוא מוסתר על ידי הקשתות בלוע. מתארך כל כך דביק שבלול מימד dorsoventral שלה יהיה להגדיל בהדרגה על E4 בין המבורגר, המילטון בשלבים 23-25 ​​ספטמבר.

  4. משוך את otocyst בכיוון האחורי כדי להפריד אותו SAG. לעקור הרקמה שמסביב SAG עם סיכות לנתיחה ובזהירות להסיר את SAG מן העובר באמצעות מלקחיים # 55. הסר חתיכות גדולות של רקמה mesenchymal וצרורות עצבים מבצבצת SAG.
  5. בעזרת קצה רחב הפה pipet, העברת explant ל24 גם צלחת עם explant 0.5 מ"ל SAG מחזיק בינוני. שמור explants על הקרח או בטמפרטורת החדר עד 4 שעות.

3. חוט השדרה לנתיחה

  1. הסר את העובר E6 מן הביצה ומניחים בצלחת חומוס המכיל פתרון של Ringer. הסר את הראש ואת הקרומים העובריים.
  2. מניחים את הגוף Sylgard © מאכל המכיל לנתח לנתיחה קר חוט השדרה בינוני. מיקום הסיכה העובר "את הגחון" ואת הזנב מול הנסיין. המקום סיכות לנתח דרך כל איבר עד סוף הקדמי.
  3. שימוש במלקחיים ו / או לנתח סיכות, בזהירות להסיר עור ורקמות, נע לכיוון הגחון, עד פני השטח הגבי של חוט השדרה גלוי.
  4. חותכים את קו האמצע הגבי של חוט השדרה עם סיכה לנתח, ב האחורי לכיוון הקדמי, לאורך כל אורכו של חוט השדרה. זה יוצר "ספר פתוח", כמו את הצדדים הימני והשמאלי של חוט השדרה נפרדת.
  5. הסרת הרקמה שמסביב, רוחבית, על מנת לבודד את חוט השדרה ולחשוף את הגרעינים השורש הגבי (DRG). הסר את DRG ואת קרומי המוח על ידי שפשוף סיכה לנתח או מלקחיים בין DRG חוט השדרה.
  6. הסר את חוט השדרה מן הגוף על ידי מחזיק את קצה הזנב ביותר של חוט השדרה עם מלקחיים והרמת למעלה מן הנסיין. הסר DRG הנותרים קרומי המוח.
  7. החזק קצה אחד של חוט השדרה עם מלקחיים (או להצמיד אותו בצלחת) ולהשתמש מספריים Vannas לחתוך לאורך קו האמצע הגחון, כדי לחצות את חוט השדרה.
  8. החזק קצה אחד של explant עם מלקחיים כדי לשתק את רקמות להשתמש במספריים Vannas לחתוך explants קטנות (100-500 אממ אורך) לאורכו של הרקמה. צלחת בקומה יכול להיות מוכר עיבוי ברורה של רקמות לאורך קצה אחד explant.
  9. השתמש קצה הפה רחב pipet להעביר explants לצלחת גם 24 עם בינוני לנתיחה מ"ל 0.5 קר. שמור explants על קרח כדי לשמור על הכדאיות רקמות, ואו עד 4 שעות.

4. Explant תרבות עם חלבונים מטוהרים לבחון היענות neurite

  1. הכן 1.5 מ"ג / מ"ל ​​פתרון קולגן צינור חרוטי 15 מ"ל, על הקרח, על פי הוראות היצרן.
  2. בדוק את הפתרון קולגן יש pH של 7-7.4 באמצעות נייר אינדיקטור pH. התאם את ה-pH ע"י הוספת NaOH ב 1 כרכים μl.
  3. העברת explants לצלחת 24 גם באמצעות פה רחב pipet טיפ לשאוב נוזל עודף. Explants מרובים יכול להיות מתורבת אחד טוב, אבל צריך להיות ממוקם לפחות 500 מיקרומטר אחד מהשני.
  4. הוסף 0.5 מ"ל של קולגן אל הבאר המכילה את explant. מקם את explant על פני השטח התחתון של הבאר. הקפידו להגדיר כל תרבות לחלוטין לפני שתמשיך גם כי קולגן הבא יתחיל לפלמר בטמפרטורת החדר.
  5. מניחים את הצלחת התרבות על 37 ° C שקופיות חם 30-45 דקות עד לפלמר קולגן. כאשר הקולגן יש polymerized זה יהיה דומה ג'ל.
  6. הוסף 0.5 מ"ל תרבות explant חם בינוני בתוספת או חלבונים מטוהרים (בדילול מלא PBS) או PBS (Control) ו לדגור על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2. השפעות על תוצאה neurite צריך להיות גלוי על ידי 24 שעות.

    הערה: השתמשנו באותו פרוטוקול כדי explants SAG תרבות עד 42 שעות.

5. Explant שיתוף תרבות עם חלבון מצופים חרוזים לבדוק תוצאה neurite כיוונית

  1. בגין בצעדים תרבות explant 4.1-4.4.
  2. שימוש pipet, העברת 1-5 חרוזים מן PBS אל היטב המכיל את פתרון קולגן explant.
  3. שימוש במלקחיים למצב חרוזים 5-50 מיקרומטר מקצה explant.
  4. מניחים את הצלחת על 37 ° C שקופיות חם 30-45 דקות עד לפלמר קולגן. הרקמה או חרוז עשוי להפוך העקורים כפי הקולגן polymerizes. בדוק את תרבויות מחדש לתפקיד רקמות וחרוזים במשך 5 דקות הראשונות.
  5. הוסף 0.5 מ 'אני SAG מדיה זה טוב דגירה למשך 24 שעות.

6. ויזואליזציה של תוצאה neurite ידי אימונוהיסטוכימיה

  1. יש לשטוף תרבויות PBS ולתקן שעה 1 בטמפרטורת החדר paraformaldehyde 4% ב-PBS.
  2. שחרר את הג'לים מחומות בארות על ידי התחקות מסביב לקצה של הג'לים עם סיום מעוגל של מרית טפלון מיקרו. בצע את immunostain עם ג'לים של בארות. יש לשטוף מספר פעמים PBS.
  3. דגירה בפתרון 0.5 מ"ל חסימה (10% נסיוב עגל, 0.1% טריטון X-100, אזיד הנתרן 0.1% ב PBS) לילה ב 4 ° C.
  4. דגירה של נוגדנים 0.5 העיקרי מ"ל (אנטי-β טובולין נוגדן מדולל 1:500 בחסימת פתרון) לילה ב 4 ° C.
  5. יש לשטוף מספר פעמים PBS. דגירה של נוגדנים 0.5 מ"ל משני (אלקסה פלואוריד 488 עיזים אנטי עכבר נוגדנים IgG 2b מדולל 1:500) לילה ב 4 ° C. מתוך שלב זה קדימה, לשמור על צלחות בחושך או לעטוף בנייר כסף, בשל הרגישות של אורמשני נוגדנים.
  6. יש לשטוף מספר פעמים PBS ולאחסן ב 4 ° C ב PBS עד שבוע אחד.

7. נציג תוצאות

figure-protocol-1
באיור 1. תוצאות נציג neurite קידום השפעות מטוהרים NT-3 ו NT-3-מצופה חרוזים על explants E4 חומוס SAG. SAG תא עצב גופים neurites היו immunostained עם טובולין β-הדמיה עם מטרה 10x על מיקרוסקופ confocal. לאחר 24 שעות במבחנה, explants SAG מוצג תולדה neurite יותר בנוכחות של 100 ng / ml מטוהרים אדם NT-3 הוסיף המדיום הסלולרי תרבות (1B), בהשוואה לקבוצת הביקורת (1A). נוירונים SAG היו שיתוף תרבותי עם חרוזים ספוג in100 ng / ml NT-3 להוכיח כי מקור הצבע של NT-3 יכול מקומי לקדם תוצאה neurite. Explants מוצג ארוכים תולדה neurite צפופה בצד שלexplant מול חרוז לעומת הצד הנגדי (1D) ו לעומת שליטה תרבויות עם חרוזים ספוגה PBS (1C). סרגל קנה מידה = 200 מיקרומטר.

figure-protocol-2
באיור 2. תוצאות נציג neurite קידום השפעות מטוהרים Wnt5a ו Wnt5a מצופים חרוזים על חוט השדרה E6 חומוס. Explants חוט השדרה היו immunostained עם טובולין β-הדמיה באמצעות מיקרוסקופ confocal. לאחר 24 שעות של גידול בנוכחות מטוהרים עכבר Wnt5a (400ng/ml), תולדה neurite מ explants חומוס חוט השדרה הוגדל (2B) בהשוואה לקבוצת הביקורת תרבותי ללא Wnt5a (2A). חרוזים ספוגה 500 ng / ml Wnt5a, הניח 300-500 מיקרומטר מקצה explants חוט השדרה, קידם גם תולדה neurite (2D) לעומת שליטה תרבויות (2C). בדומה שיתוף תרבות התוצאות פורסמו בעבר עם Wnt5a-להביע תאים 8. סרגל קנה מידה = 200מיקרומטר.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

אנו מציגים שיטה לנתח ותרבות SAG E4 ו E6 explants חוט השדרה, מן חומוס, תחת בסרום ללא תנאים. הליך זה משמש כיום במעבדה שלנו כדי לחקור את ההשפעות של ligands שונים המופרשים על ההישרדות SAG נוירון ו תולדה neurite. היבטים רומן של פרוטוקול זה כולל את השימוש במערכת בסרום חופשי עבור explants culturing ושימוש חרוזים ספוגה גורמי גדילה כדי ללמוד על השפעות תולדה neurite SAG. שיטה חרוז דומה לשלנו תוארה על חוט השדרה חומוס 10. באופן מסורתי, חרוזים שימשו במחקרים קלאסי עם הדרכה גורמים האק...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

תודות

עבודה זו מומנה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות גרנט RO1DC002756 ואת המחקר Purdue קרן. אנו מודים דוריס וו צ'אנג ויזה לייעוץ עם ניסויים רודני McPhail לעזרה עם דמויות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מגיב חברה מספר קטלוגי הערה
ציוד

Dissection מיקרוסקופ

אנו משתמשים stereomicroscope M80 לייקה עם brightfield בסיס תאורה
Slide חם

CS & E.

קולגן פילמור
עוף ביצה החממה

37 ° C / 5% CO 2 humidified תא תרבות חממה

חומרים Dissection

Sylgard &העתק: מצופה צלחת פטרי

24 גם תרבית תאים בצלחת

קורנינג

3526
# 5 דומון מלקחיים

המדע כלים פיין

11252-30
# 55 דומון מלקחיים

המדע כלים פיין

11295-51
נירוסטה סיכות פלדה לנתח

המדע כלים פיין

26002-10 העובר מצמיד, דיסקציה בסדר
מוריה כף מחוררת

המדע כלים פיין

10370-17 העובר הקציר / העברה
200 μl רחב pipet הפה טיפים

דוט מדעי Inc

118-96R Explant להעביר

E4 עוף וביצים E6

& Nbsp;
צ'יק Ringer של פתרון

העובר קציר
HBSS

סיגמא

H8264 SAG לנתיחה
L15 בינוני

סיגמא

L5520 חוט השדרה לנתיחה בינוני
עגל עוברית בסרום

אטלנטה הביולוגיים

S11150 חוט השדרה לנתיחה בינוני
Vannas מספריים

העולם מכשירים Precision

501778 חוט השדרה לנתיחה
 

קולגן הכנה

Rat-tail סוג קולגן אני

BD Biosciences

354249 Explant תרבות
10X PBS (סטרילי)

כדי Neutralize קולגן
1N NaOH (סטרילי)

כדי לנטרל קולגן
מים מזוקקים (סטרילי)

כדי לנטרל קולגן
אינדיקטור pH ניירות (6.0-8.1)

Whatman

2629-990 כדי לבדוק את רמת החומציות קולגן
15 צינורות חרוטי מ"ל

דוט מדעי Inc

818-PG
500 μl רחב pipet הפה טיפים

דוט מדעי Inc

119-R100 כדי קולגן pipet

Explant תרבות

DMEM/F12 בינוני

סיגמא

D8437 Explant בינוני תרבות
ITS 1

סיגמא

I2521 בינוני תוספת
פניצילין, סטרפטומיצין

Invitrogen

15140-122 בינוני תוספת
CNTF (חולדה)

סיגמא

C3835 בינוני תוספת
NT-3 (אדם)

סיגמא

N1905 בינוני תוספת
מטוהרים עכבר Wnt5a

R & D מערכות

WN-645-010
Affi ג'ל כחול חרוזי ג'ל

Bio-Rad

153-7302

אימונוהיסטוכימיה

Paraformaldehyde

סיגמא

P6148 קיבוע
PBS

שטיפות
טריטון X-100

סיגמא

T9284 חסימת פתרון
נתרןאזיד

סיגמא

S8032 חסימת פתרון
עגל בסרום

Invitrogen

16170-078 חסימת פתרון
עכבר IgG2b חד שבטיים אנטי β טובולין 1 + II נוגדן

סיגמא

T8535 תוויות תא גופים neurites
אלקסה פלואוריד 488 אנטי עכבר עז נוגדן IgG2 ב

Invitrogen

A21141 זיהוי הנוגדן טובולין β
טפלון מרית מיקרו

VWR

57949-033 שחרור ג'ל קולגן מ היטב

מקורות

  1. Fekete, D. M., Campero, A. M. Axon guidance in the inner ear. Int. J. Dev. Biol. 51 (6-7), 549-549 (2007).
  2. Fritzsch, B. Development of inner ear afferent connections: forming primary neurons and connecting them to the developing sensory epithelia. Brain Res. Bull. 60 (5-6), 423-423 (2003).
  3. Gu, C. Neuropilin-1 conveys semaphorin and VEGF signaling during neural and cardiovascular development. Dev. Cell. 5 (1), 45-45 (2003).
  4. Tessarollo, L., Coppola, V., Fritzsch, B. NT-3 replacement with brain-derived neurotrophic factor redirects vestibular nerve fibers to the cochlea. J. Neurosci. 24 (10), 2575-2575 (2004).
  5. Avila, M. A. Brain-derived neurotrophic factor and neurotrophin-3 support the survival and neuritogenesis response of developing cochleovestibular ganglion neurons. Dev. Biol. 159 (1), 266-266 (1993).
  6. Bianchi, L. M., Cohan, C. S. Effects of the neurotrophins and CNTF on developing statoacoustic neurons: comparison with an otocyst-derived factor. Dev. Biol. 159 (1), 353-353 (1993).
  7. Juurlink, B. ernhardH. J. Chick Spinal Somatic Motoneurons in Culture. Protocols for Neural Cell Culture.. 59, (2001).
  8. Fantetti, K. N., Zou, Y., Fekete, D. M. Wnts and Wnt inhibitors do not influence axon outgrowth from chicken statoacoustic ganglion neurons. Hear. Res. , (2011).
  9. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88, 49-49 (1951).
  10. Bourikas, D. Sonic hedgehog guides commissural axons along the longitudinal axis of the spinal cord. Nat. Neurosci. 8 (3), 297-297 (2005).
  11. Charron, F., Tessier-Lavigne, M. Novel brain wiring functions for classical morphogens: a role as graded positional cues in axon guidance. Development. 132 (10), 2251-2251 (2005).
  12. Augsburger, A. BMPs as mediators of roof plate repulsion of commissural neurons. Neuron. 24 (1), 127-127 (1999).
  13. Lyuksyutova, A. I. Anterior-posterior guidance of commissural axons by Wnt-frizzled signaling. Science. 302 (5652), 1984-1984 (2003).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

ניתוח עוברי אפלוףחרוזי ציפוי חלבוןמיקרוסקופיה קונפוקליתצביעת בטא-טובוליןתרבית נטולת סרוםבדיקת צמיחה כיוונית