$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. תיוג אריתרוציטים עם fluorescein Isothiocyanate האיזומר אני (FITC)
כל פרוטוקולי הניסוי השתמשנו אושרו על ידי ועדת בעלי חיים טיפול קיו הספר לרפואה של אוניברסיטת.
- להרדים כמה עכברים התורמות, וכן לאחר ביצוע החתך celiotomy לסגת הדם כולו נחות הווריד הנבוב עם המזרק 1 מ"ל, המכיל כמות קטנה של הפרין. העכבר היה מורדמים מיד בזריקה pentobarbital נתרן (100 מ"ג / ק"ג IP).
- לשטוף את הדם הזה פעמיים עם PBS (pH 7.4) על ידי צנטריפוגה 5 דקות ב 400 גרם של הרוטור נדנוד הדלי.
- להמיס 10 מ"ג FITC ב 5 מ"ל של 100 מ"מ Na 2 HPO 4 ולסנן אותו עם קרום שיש 0.22-מיקרומטר הנקבוביות.
- במבחנה לערבב 1 מ"ל של תמיסת FITC עם 0.15 מ"ל של גלוקוז 3 מ"מ, 0.25 מ"מ 180 מ"ל לאא 2 PO 4, ו - 1.5 מ"ל של 100 מ"מ Na 2 HPO 4. הוסף 0.2 מ"ל של Rגלולה לפני הספירה, והקש צינור לערבוב.
- לשמור על צינור עבור 2 שעות 4 ° C ולאחר מכן לשטוף את RBCs מוכתמים ב PBS פעמיים.
- שימו כמות קטנה של השעיה RBC על הדשא שקופיות ונראה אם RBCs נראים בריאים (כלומר, צורתם וגודלם תקינות) וכי עוצמת הקרינה היא מספקת.
- להשעות 0.1 מ"ל של RBCs ב 0.9 מ"ל של PBS ב-pH 7.4, ולשמור את ההשעיה על 4 מעלות צלזיוס עד ההזרקה.
2. הכנת דיי חמצן רגיש
- ממיסים 500 מ"ג של BSA ב 10 מ"ל של PBS ב-pH 7.4.
- הוסף 30 מ"ג של Pd (II)-Meso-TETRA (4-carboxyphenyl) porphine (PD-TCPP) לפתרון BSA ומערבבים למשך הלילה.
- (אופציונלי) חלץ BSA הנכנס PD-TCPP באמצעות כוח המשיכה זרימת כרומטוגרפיה או עמודה ספין להפריד אותו ללא PD-TCPP.
- בצנטריפוגה פתרון להסיר שלא נמס PD-TCPP, ולסנן supernatant עם מסנן ממברנה שיש 0.22-מיקרומטר הנקבוביות.
- חנות 1-מ"ל aliquots ב צינורות ב -20 ° C. למנוע הופעה חוזרת של ההקפאה, ההפשרה מחזורים.
3. בעלי חיים הכנה
- להסתכלות מיקרוסקופית של microcirculation להכין צלחת פלסטיק עם חור 20 מ"מ בקוטר, ואת קלטת זכוכית של 30 מ"מ מרובע כיסוי מרובע מעל החור.
- להרדים העכבר, להסיר את הפרווה, ועל הכנה העור. מכניסים קטטר בזנב לשווא הזרקת התרופה בעזרת מחט 30 G מחובר פוליאתילן של 10 ס"מ (PE 10) קטטר מלא heparinized PBS.
- לאחר החתך החציוני, להאריך lobule העיקרי של הכבד על צלחת פלסטיק, למקם את העכבר שעינת חזה.
- להכין פתקים קטנים עם גלישת המטבח (3 מ"מ x 8 מ"מ) אריח אותם מסביב לקצה של האונה בכבד לעכב העברת הכבד עם הנשימה ולשמור עליו מפני התייבשות.
- שימו לב microcirculation הכבד תחת מיקרוסקופ (עם אור מסור), ולוודא כי בזרימת lood אין קיפאון בתחום התצוגה של לפחות 15 דקות.
- לאט לאט להזריק 0.2 מ"ל של RBCs שכותרתו fluorescently עבור תצפית זרימת הדם או 0.2 מ"ל של תמיסת PD-TCPP למדידת 2 PO. זו כמות RBCs FITC שכותרתו יביא בחשבון 1/50 של כל RBCs במחזור באזור דמיינו.
4. זרימת הדם ויזואליזציה
- לרגש FITC ידי בהקרנה אותו באור מנורה כספית שעבר דרך פילטר bandpass (450-490 nm) 1.
- להקליט את התמונה ניאון עם מצלמה CCD.
5. ת.ד. 2 מדידה
PD-TCPP זרחני הוא חלש יחסית, יש לזהות עם גלאי רגישות גבוהה. כל הניסויים צריך להתבצע בחדר חשוך.
- פסגות הקליטה של PD-TCPP נמצאים 410 ננומטר ו 532 ננומטר, אז השני הרמוני 532 ננומטר אורך גל מומלץ עירור. אורך גל זה יכול להיווצר על ידי Nd: YAG לייזר פולס 2.
- להאכיל את הקורה מ Nd: YAG לייזר ליציאת המתאים מיקרוסקופ הפוכה, ולהתאים את המקום קרן לתפקיד מרכזי במישור המוקד. רזולוציה מרחבית תלוי בגודל לייזר במקום, אשר משתנה על ידי העברת קרן דרך חריר.
- כדי לזהות את זרחני, חבר ארוכת לעבור סינון (> 620 ננומטר) ועל צינור מכפיל (PMT) לנמל השני של המיקרוסקופ. PMT צריך להיות רגיש באורכי גל אדומים, במיוחד סביב 700 ננומטר.
- לדגום את האות זרחני (500 נקודות שנדגמו ב kHz 200) ולחשב את זמן קבוע של ריקבון על ידי התאמת פונקציה מעריכית כדי ריקבון.
- לצורך כיול להכין 2 סט של דגימות של פתרון PD-TCPP עם מ"מ כספית ת.ד. 150 2 ו 0 מ"מ כספית. הוסף נתרן dithionite 1% בהיקף לטעום לייצר היעדר חמצן. שמור את ה-pH של הדגימות על 7.4 ו טמפרהture על 37 מעלות צלזיוס במהלך כיול.
- תקן שטרן-Volmer קבוע k ש וחמצן ללא ריקבון זמן הארה τ 0 במשוואה (1) 3. במקרה שלנו, עם PD-TCPP פתרונות ב 37 ° C ו-pH של 7.4, k q הוא 374 מ"מ כספית -1 s -1 ו - 0 τ הוא 0.74 אלפיות שנייה. פרמטרים אלה תלויים ציוד המדידה (כלומר, לייזר, גלאי, מכשירים אופטיים אחרים) ואת שיטת עיבוד אותות, כך נדרש כיול בכל מערכת המדידה 4.
τ 0 / τ = 1 + k ש • τ 0 • ת.ד. 2 (1) - הגדר את העכבר על הצלחת על הבמה מיקרוסקופ, לבחון microcirculation הכבד, ולהתאים את המיקום של microvessel היעד עד כדי נקודה לייזר.
6. הפטיטיס דגם
- עכברים מהיר עם גישה חופשית למים בלילה.
- הכן20 מ"ג לכל פתרון מ"ל של פרצטמול (APAP) ב DMSO.
- מזריקים אותו intraperitonealy ב 1 ml/100 גרם BW (כלומר, 200 מ"ג / ק"ג BW). לאחר ההזרקה, עכבר אפשר לתת גישה חופשית למזון ומים 5.
- 24 שעות לאחר ההזרקה, להרדים את העכבר תחשוף את הכבד על ידי ביצוע חתך החציוני. אם הפטיטיס מושגת, נמק באזור pericentral יהיה גלוי בקלות בעין בלתי מזוינת.
7. נציג תוצאות
תמונות דוגמה של microcirculation הכבד מוצגים איור 1, שם (א) היא תמונה משודר אור ו (ב) היא תמונה פלואורסצנטי. אריתרוציטים FITC שכותרתו אישיות הם נצפו בסרט וידאו, venules פורטל, sinusoids ו venules המרכזיים מוכרים על ידי כיווני זרימת הדם.
כפי שניתן לראות בתרשים 2, במקום הלייזר בהקרנה ורדיד המרכזי דרך העדשה המטרה היה 100 x approximately 10 מיקרומטר קוטר. Intravascular ת.ד. 2 ב microcirculation כבד נמדד C57BL זכר / 6 עכברים, איור 3 (א) מציג את היחסים בין PO 2 ו בקוטר כלי שיט venules פורטל מרכזי. שיפוע 2 ת.ד. מהפורטל כדי venules מרכזיים עולה כי שחרור חמצן RBCs ביעילות בעת שעבר דרך sinusoids. כפי שמוצג באיור 3 (ב), היה הממוצע ת.ד. 2 59.8 מ"מ כספית על כלי הפורטל, 48.2 מ"מ כספית ב sinusoids, ו 38.9 מ"מ כספית ב venules מרכזיים.
כאשר הפקנו צהבת חריפה על ידי הזרקת APAP intraperitonealy, intravascular ת.ד. 2 היה גבוה באופן משמעותי כל חלק של microcirculation הכבד: p <0.05 בוורידים פורטל ו-p <0.01 ב sinusoids וורידים מרכזיים (איור 3 (ג)).

באיור 1. נמוכה הגדלה אניהמגים מראה microcirculation הכבד עם האור (א) העברת ו (ב) פלואורסצנטי.

איור 2. תמונה של המקום לייזר בהקרנה ורדיד המרכזי ממוקד למדידת 2 PO.

3. איור 2 ת.ד. שיפוע ב microcirculation הכבד של עכברים שליטה בריאים של עכברים עם פגיעה הנגרמת פרצטמול בכבד. (א) מראה ת.ד. 2 לעומת קוטר כלי עבור הפורטל venules (PV) ומרכז venules (CV), ו (ב) מציג את שיפוע חמצן PV כדי קורות חיים דרך sinusoids (ים). ההבדל בין 2 ת.ד. PV ואת קורות החיים משקף את צריכת החמצן של hepatocytes או תאים parenchymal אחרים. (ג) עולה כי בתנאים צהבת הנגרמת על ידי הממשל APAP, ת.ד. 2 היה גבוה באופן משמעותי PV, S, ו קורות חיים ת.ד. 2שיפוע קטן, המציין כי צריכת החמצן הכבד נפגע.