הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

באתרו מדף רוחבי Rectus abdominis Myocutaneous: מודל עכברוש של הפגיעה reperfusion איסכמיה Myocutaneous

13.1K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/50473

⸱

8 ביוני 2013

במאמר זה

סיכום

העברת רקמה חינם הוא מועסק באופן נרחב בניתוח שחזור כדי לשחזר את הצורה ותפקוד בעקבות כריתה וטראומה אונקולוגי. Preconditioning רקמה זו לפני הניתוח עשויה לשפר את התוצאה. מאמר זה מתאר באתר דש רוחבי Rectus abdominis myocutaneous (חשמלי) בחולדות כאמצעי לבדיקת אסטרטגיות נפשיות מראש.

תקציר

העברת רקמה חינם היא את תקן הזהב של ניתוח שחזור כדי לתקן פגמים מורכבים לא מקובל אפשרויות מקומיות או אלה רקמות מורכבים הדורשים. פגיעת reperfusion איסכמיה (IRI) היא סיבה ידועה של כישלון חלקי דש חופשי ואין לה טיפול יעיל. הקמת מודל מעבדתה של פגיעה זו יכולה להוכיח יקרה הן מבחינה כלכלית כמשמשים יונקים גדולים יותר כמקובל ובמומחיות הנדרשים על ידי הקושי הטכני של נהלים אלה בדרך כלל דורש העסקת מיקרוסקופית מנוסה. פרסום וסרטון זה מדגימים את השימוש היעיל במודל של IRI בחולדות שאינו דורשות מומחיות microsurgical. הליך זה הוא באתרו של מודל myocutaneous abdominis רוחבי (חשמלי) דש שבו מלחציים atraumatic מנוצלים כדי לשחזר את פציעת איסכמיה reperfusion קשורה לניתוח זה. סורק ההדמיה דופלר לייזר (LDI) הוא מועסק על מנת להעריך זלוף הדש ועיבוד התמונה Softwaמחדש, תמונת J להעריך הישרדות עור אזור אחוז כמדד תוצאה העיקרית של פציעה.

מבוא

המטרה של פרוטוקול זה היא להדגים מודל אמין לשחזור של פציעת איסכמיה reperfusion נצפה בהעברת רקמה חינם כדי לאפשר אסטרטגיות התערבותית להיחקר.

העברת רקמה חינם מוגדרת כניתוק כלי הדם של בלוק מבודד של רקמה אחרי השתלה עצמית של רקמה שעם השקה של כלי transected של דש לכלי ילידים באתר הנמען. ההליך ידוע כFTT ורקמות שהועברו מכונות דש החופשי.

העברת רקמה החופשית היא הגישה הסטנדרטית זהב לתיקון ליקויים מורכבים, שבו אפשרויות מרוכבים מקומיות אינן מתאימות או לא זמינות. 1-4 פגיעת reperfusion איסכמיה (IRI) היא בלתי נמנעת בהעברת רקמה החופשית, תורמת לדש כישלון 5,6 ואין לו טיפול יעיל. טבע הבחירה של ניתוחי דש חופשיים מאפשר לממשל של pharmacologiסוכני קאל לתנאי נגד IRI.

תוצאות IRI בזרימה לקויה באמצעות זרימת הדם על ידי הפעלת האנדותל ותפקוד מטבולי, 7 גדלו חדירות נימים ובצקת לאחר ביניים 7, זרם של תאים דלקתיים, 8 שחרור של מתווכים דלקתיים, מיני חמצן מגיבים 9 ומשלימים בתצהיר. 10 תהליך מורכב זה של היפוקסיה ופגיעת reperfusion לאחר סופו של דבר מובילה למוות של תאים. מודל של myocutaneous IRI מאפשר את האפקטיביות של אסטרטגיות נפשית מראש על תוצאות קליניות להיות מוערכים. העבודה האחרונה יש תוקף את השימוש במודלים של בעלי החיים לימודי IRI כתחליף IRI אדם על ידי השוואת השינויים המולקולריים שנצפו בבני אדם ובעלי חיים הנתונים קיימים. 10,11

העכברוש הרוחבי Rectus abdominis myocutaneous (חשמלי) הדש תואר לראשונה בשנת 1987 בגרמניה 12 ובשינה 199313 באנגלית. דגם זה זכה לפופולריות רחבה 13-25 כמודל זול, חזק לחקור אסטרטגיות שונות כדי להפחית IRI קשור עם העברת רקמה החופשית. 14,17-22 רוב המחקרים אלה נועדו כדשי חשמלית unipedicled מבוססים על עמוק, נחותים, . 15-18,20-22 השוואת pedicle רום בטן כלי דם של הנתונים ממחקרים אלה היא מסובך על ידי השימוש באיים שונים בגודל עורית (10.5-30 ס"מ 2) ואורכים שונים של מעקב לאחר ניתוח (2 - 10 ימים). נמק הממוצע הכולל אחוז אזור הדש בזרוע השליטה של ​​מחקרים אלה הוא 69 ± 6.2% (ממוצע ± SEM). יצוין, כי ששת העיתונים האלה כל להעסיק את שריר Rectus abdominis כנישא pedicle כלי דם, אך לא לחשוף, ולחלק microanastomose או הצמידו את הכלים. Zhang et al. -23 תארו דש אמיתי, ללא תשלום חולדה חשמלי המבוסס על כלי הבטן העליונים מעולים שבו fהקפות הועלו, כלי מחולקים והעביר את דש myocutaneous וmicroanastomosed לכלי המפשעה. טכניקה קשה זה נדרשה microanastomosis של 0.45-0.5 כלי קליבר מ"מ. רק חמישה עשר בוצעו ושל 67% אלה שרדו. -23 במודל שתואר על ידי Zhang et al. -23 הוא מודל מצוין לדש החשמלי החופשי האדם כפי שהוא באמת משקף את הפציעה שנגרם במהלך FTT. הדגמים שפורסמו האחרים של דש חשמלי עכברוש יותר משקפים במדויק את הפציעות שנגרמו במהלך חשמלית pedicled אנושית אך אינו משקפים IRI כדש אלה אינם עוברים בתקופת איסכמי אחרי reperfusion כpedicle כלי דם הוא לא הידק או מחולק ו microanastomosis ביצע. הפרוטוקול והסרטון הזה מתארים מודל חדש של העברת רקמה החופשית באמצעות חשמלית החולדה שבי IRI משוכפל באמצעות microclamps. זה בצורה נאמנה יותר משכפל IRI מקודמי חשמלית pedicle אבל קל יותר מבחינה טכנית מאשר performing microanastomosis. Microclamps כבר מועסק באופן נרחב על ידי חוקרי השתלה לשחזר IRI קשור השתלת איברים מוצקה; 26-33 לעומת זאת, זו הפעם הראשונה שבה תאר בדש החשמלי החולדה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל הניתוח מתבצע בהתאם להנחיות שנקבעו על ידי משרד הפנים של הממלכה המאוחדת ואוניברסיטת מחלקת השירותים הווטרינריים של אדינבורו.

1. הגדרת הליך כירורגי הערות

  1. שינוי לסקראבס נקי כירורגיות, שמלה, כובע ומסיכת פילינג. יש לנקות את כל המשטחים של חדר הניתוח כולל ציוד עם כלורהקסידין 2% בשנת 70% אלכוהול איזופרופיל.
  2. לפני הניתוח, חיטוי כל הציוד כירורגי ומכשירים שישמשו בהליך. חבילות סטריליים לפעולה צריכה לכלול: 3 וילונות, גזה, applicators קצה כותנה, יריעות סיליקון ואת מכשירי הניתוח, ראה טבלה של חומרים מסוימים וכלים כירורגיים ואיור 1. לשקול את העכברוש ולמדוד את הנפח המתאים של עצירות (0.04 מ"ג / ק"ג) להינתן תת עורי שעה 1 לפני השלמת ההליך. פריסה; 3 x 1 מזרקים מ"ל לממשל נוזל תת עורי במהלך Surgery, 2 x 6-0 תפרי Vicryl, 1 5-0 תפרים Ethilon x, סמן סטרילי עם סרגל ואזמל להב חד פעמי של 10, 4 - 5 זוגות כפפות סטריליות ויחידת כויה כף יד.
  3. מקום 4 x 10 מ"ל סטרילי, צלוחיות מלוחות 0.9% באמבט מים חימם עד 37 ° C. זה ישמש להחלפת נוזל תת עורי (1 מ"ל / ק"ג / שעה) ולשטוף את אזור ניתוח. להגדיר את שמיכת homeothermic, בדיקה רקטלית, מנורת חום, מיקרוסקופ הפעלת אסדה והרדמה. הפעל את לייזר ואת התוכנה שלה, הגדרת אסדת הרדמה אחרת והנח כרית מתחת למזרן חום השחור שבו בעלי החיים יהיו להניח במהלך הסריקה.
  4. השתמש זכרי חולדות, לואיס במשקל 250-300 גרם. חולדות הבית למשך 7 ימים עם אוכל ומים כהרצון עם מחזורי האור כהה 12 שעות לפני כל ניתוח מתבצעת.

2. הרדמה והכנת עור

  1. מניחים את החולדה בחדר האינדוקציה של אסדת ההרדמה ולנהל 4% isoflurane עם 1L/min O 2 עבור2-3 דקות כדי לגרום להרדמה. הסר את העכברוש הרדים מהאולם ולמקם אותו פרקדן על, המזרן המחומם הנקי. לשמור isoflurane 1.5% בשימוש בחרטומו. החל סוכן lacrilube או דומה כדי למנוע חיקה קרנית במהלך ההליך. לבצע בדיקת קמצוץ רגל כרית על מנת להבטיח את החיה היא כראוי הרדים לפני שימשיך. חזור על בדיקה שעברה את זה לפני כל צעד מרכזי בהליך ולהתאים את ריכוז חומר ההרדמה שהאיפה בהתאם.
  2. בשיתוף פעולה הדוק לגלח קדמי בטן באמצעות מכונת גילוח חשמלי, כך שעל פני השטח כולו בבטן חשוף. החל קרם שיער מתוך למשך תקופת המומלצת על ידי הספק. הסר את הקרם ולשטוף ביסודיות את העור עם תמיסת מלח סטרילית מחוממת כדי להסיר את כל העקבות של השמנת. החל כלורהקסידין 2% בשנת 70% אלכוהול רפואי על העור ולאפשר לו להתייבש לפני שימשיך. זו הכנת העור הסטנדרטית ביחידה שלנו מבוססת על ראיות נוכחי לזיהום באתר ניתוח. ד 34 בבקשהiscuss עם מחלקת הווטרינרית שלך מה הוא נוהל מקובל ביחידה שלך לפני בחירתו של פרוטוקול הכנת עור.
  3. מקום 2 וילונות משני צדי החולדה ודואגים לשמור אותם סטרילי. לבש כפפות סטריליות ובעזרת עוזרו לפתוח את ערכות סטריליות. הנח את כל הכלים על וילון אחד ואת התפרים, גזה, צמר גפן, applicators יריעות סיליקון ובטוש סטרילי עם שליט מצד השני.
  4. זהה את קו האמצע באמצעות xiphisternum והזנב כנקודות התייחסות. סמן את קו האמצע. למדוד 0.8 ס"מ מתחת xiphisternum ולסמן את הנקודה הזו. צייר קו מאונך לקו האמצע מנקודה זו. לוקח את קו האמצע כמרכז של סימן הדש מתוך 1 ס"מ ו -2 ס"מ לצד השמאל וימין של קו האמצע. לצייר קווים אנכיים מקבילים לקו האמצע מהנקודות. מדוד 4 ס"מ מתחת לקו האופקי המקורי ולצייר אחר במקביל אליו. בעקבות הוראות אלה דש 4 X 4 ס"מ מחולק ל 4 רצועות שווה שמפורש(ראה איור 2).

3. לייזר דופלר הדמיה

  1. הזז את העכבר בזהירות לחרטומו של האסדה השנייה ההרדמה בסורק LDI. המשך הרדמה ב1.5% isoflurane, 1L/min O 2. הפעל את לייזר ובצע את הוראות היצרן כדי להתחיל בסריקה. לאחר שמירת הקובץ הסרוק להחזיר את החולדה בחזרה למתקן הראשון ולהכניס מחדש את הבדיקה רקטלית של שמיכת homeothermic באמצעות פרפין לבן ורך כחומר סיכה.

. 4 בדש חשמלי באתרו - דגם של Myocutaneous IRI

  1. ידי מחדש שיחים ולשים על כפפות סטריליות טריות. לגזור עיגול בקוטר 5 ס"מ במרכזו של וילון סטרילי שנותר והמקום הזה על הבטן חשופה כדי ליצור שדה סטרילי עטוף.
  2. עושה חתך לאורך הקצה המסומן לרוחב השמאל (איור 3 א 'וב'). להשיג hemostasis. לעשות חתכים דומים למטה את הקווים האופקייםבצד השמאל של קו האמצע. להשיג hemostasis.
  3. שמעליה שומן נדן Rectus הנחותים שמאל צריך להיות גלוי. בעזרת מלקחיים ומספריים איריס קטנה בזהירות מקבל מתחת שומן זה. יש להיזהר שלא לפגוע במחורר הקרובים באמצעות נדן Rectus השמאל, הקדמי. המטוס נפתח על ידי נתיחה כזו הוא שמייד מעל fascia הדופן הבטן הקדמי. תמשיך לנתח במטוס הזה סביב שולי התחום. בשקע האיליקאלי השמאלי טמון הכסל הגדול, שטחי גרש כלי-אלה יכולים להיות קשורים או צרובים. ואז להאריך את הנתיחה מדיאלית בזהירות ורק ככל השוליים לרוחב של שריר Rectus השמאל. יש שינוי בצבע ברור בשלב זה מורוד ללבן קרוב (איור 3 ג). להשקות בזהירות את האזור עם תמיסת מלח סטרילית ולבדוק שhemostasis הושג לפני הנחת גזה לחה על האזור.
  4. חזור על התהליך בצד הנגדי אבל הפעם להאריך to Linea alba (אמצע קו). תשמור על עצמך כדי לזהות ולצרוב את כל מחורר musculocutaneous הנובע במרכזה של שריר Rectus abdominis ימינה (איור 3D). אם זה לא נעשה כראוי הוא עלול לגרום לשטף דם לאחר ניתוח ותוצאות מזויפות. כמו כן להשיג hemostasis, להשקות ומניח גזה לחה על הדש המורם.
  5. לחזור לשוליים הנחותים של rectus השמאלי הקדמי (איור 3E ו-F). לצרוב את המחוררים הנחותים ביותר שנראו. להמשיך לחתוך חלון קטן (0.6 ס"מ X 0.6 ס"מ בערך) בנדן Rectus הקדמי באמצעות microscissors והצביע מעוקלים מלקחיים Graeffe. בוטה לנתח לאט השוליים לרוחב של השריר עד לשריר מידללת אבל לפני הנדן האחורי פרוץ. ואז לסובב את המלקחיים ובוטים לנתח מדיאלית עד הבטן של השריר היא על גבי קצה המעוגל של המלקחיים ואת הטיפים הם בחינם בשוליים המדיאלי. להאכיל משוערly 6 ס"מ של 5-0 Ethilon לתוך מלתעותיו של המלקחיים ולקשור את נדן Rectus הנחותים. עם השלמת שלב זה את דש myocutaneous מבודד בכלי אחד דומיננטי ב- כלי הבטן העליונים מעולים העמוקים. מכסים בגזה לחה.
  6. חותכים את יריעות סיליקון לתוך אליפסות עם פינות חלקות, (איור 3G). אלה צריכים להיות גדולים מספיק כדי לכסות את רוב השטח החשוף מתחת לחלקי fasciocutaneous של הדש. עם זאת, יש לנקוט בזהירות על מנת להבטיח שקצה העור יכול להיות סגור בלי כל מתח והעקומה המדיאלי של סגלגל עשויים להיות לזווג בחזרה כדי למנוע את זה ייפגע ב זרימה דרך המחוררים הנותרים. אלה לאחר מכן נתפרו במקום עם 6-0 Vicryl (איור 3H). לכסות עם גזה לחה.
  7. השימוש פשוט הפריע לו "יתד מתוך '5-0 Ethilon תפרי דש כדי להפחית את החום ואיבוד מים (איור 3I). מכסים בגזה לחה.
  8. להאריך את פצע superiorly משמאלxiphisternum (איור 3I). לתפור את זה לרביע השמאלי העליון כדי לשפר את השדה של הנוף.
  9. לחתוך את כל שומן שמעליה כדי לחשוף את הנדן מעולה, השמאל, הקדמי Rectus. לחתוך חלון (0.6 ס"מ X 0.6 ס"מ) קטן בנדן זה (איור 3J). להאריך את פצע מדיאלית עד שינוי במסלול סיבי שריר מהמצב אנכי לאלכסוני ועקביות מצפופה של סיבים רופפים הוא ראה.
  10. הכנס את המלקחיים המעוקלים בזהירות בין שני השרירים הללו ולפתוח את מטוס על ידי נתיחה בוטה. לחתוך בזהירות רק עד משטח מעולה של המלקחיים המעוקלים האלה חיתוך דרך הבטן של שריר abdominis Rectus השמאל כדי לחשוף, עורק הבסיסי העמוק מעולה ברום הבטן ווריד (איור 3K).
  11. שימוש במייקרו ומכשירי חשמל גבוה במיקרוסקופ, מפריד בזהירות את העורק ווריד ולפשוט את כל שומן שמסביב.
  12. החל מלחציים Acland atraumatic לrtery ווריד (B-1, סוג "V") ולהתחיל את שעון העצר לספור את תקופת איסכמי 30 דקות. להשקות pedicle מהודק ולכסות עם גזה. אנחנו לא מעסיקים מרחיבי כלי כגון verapamil או pabavarine אבל צריכה התכווצות כלי להיות בעיה, תרופות אלה צריכים להילקח בחשבון.
  13. לנהל את עצירות (0.04 מ"ג / ק"ג) ומי מלח מחומם, סטרילי (1 מ"ל / ק"ג / שעה).
  14. החל בפינה השמאלית העליונה, לתפור את הדש במקום עם 6-0 תפרי subcuticular Vicryl עצירה וקשירה ליד xiphisternum.
  15. כאשר זמן איסכמי 30 דקות נגמר, להסיר בזהירות את התפסים ולהשקות את הגבעול עם מי מלח מחומם. בדקו שזרימה כבר הוקמה מחדש. שים לב שזמן איסכמי זה נקבע על ידי רשות משרד הפנים בבריטניה. חוקרים העוסקים ברשויות האחרות ייתכן שיוכלו להאריך את הזמן הזה. הארכת זמן איסכמי צפויה להוביל לתוצאה קלינית גרועה יותר.
  16. לתפור את קצות החתך של Rectus חזרה למקום עם 6-0 Vicryl.יש להיזהר שלא יחול יותר מדי מתח כמו זה יכול להוביל למסתלסל מהכלים.
  17. השלם את התפירה תת עורית דואגת לקבור את כל קשרים מתחת לעור (איור 3K).
  18. נקה את אזור הפצע ולאפשר לו להתייבש. לצייר מחדש את האזורים בדש.
  19. Re-לסרוק את החיה כדי לקבל תמונה לאחר ניתוח.
  20. להירשם מחדש lacrilube לעיניים של בעלי החיים ומקום בחממה מחוממת (37 מעלות צלזיוס) במשך שעה 1 להתאושש לפני ההחזרה ליחידת בעלי.

צעדים קריטיים בתוך הפרוטוקול

עיקרו של ההליך הוא בזיהוי כלי העמוקים, מעולים ברום הבטן. זה מוצג באופן ברור בסרט המלווה. בקיצור, חלון הוא לחתוך בנדן Rectus הקדמי לחשוף את סיבי השריר הבסיסיים שיהיה ריצה longitudinally. על ידי הרחבת הנתיחה השטחית של נדן Rectus הקדמי מדיאלית שינוי במסלול סיבי שריר הוא ציין FROM האורכי לאלכסוניים. הכנס בוטה הסתיימו, מלקחיים, Graeffe מעוקלים (או דומה) בצומת של שתי צרורות של סיבי שריר אלה. בוטה לנתח רוחבי. לקצץ, באמצעות מספריים מיקרו, על פני השטח העליון של המלקחיים המעוקלים שנערכו במטוס הזה בין צרורות סיבי השריר. על הסרת Graeffe מלקחי עורק העמוק, מעולה ברום הבטן ווריד יקויימו בנקודת האמצע של גוף שריר Rectus abdominis. לפשוט שמעליה שומן כלי באמצעות מכשירי מיקרו ולהחיל את מהדק.

מנות fasciocutaneous של הדש החשמלי החולדה הן דקים מספיק כדי לאפשר את הדש לקחת כשתל עור בעובי מלא. כדי למנוע זאת ועל מנת להבטיח כי מדובר במודל אמיתי של IRI דק, גיליון סיליקון גמיש ממוקם מתחת לחלקי fasciocutaneous של הדש. 35 צעד זה אומץ על ידי חוקרים אחרים התחייבות דגמים חשמלית חולדה. 17,21,25

חולדות ללעוס throuקשרים GH כדי לוודא שכל התפרים הם subcuticular וכל קשריו קבורים. בביצוע המוקפד של התפירה autocannabilism הדשים כפי שדווח על ידי חוקרים אחרים יכולים להימנע. 24

הממשל הבא של עצירות להפחית הרדמה תחזוקה ל -1% Isoflurane (1L/min O 2).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

מודלים של עכברים הם חסכוני יותר מדגמי בעלי חיים גדולים יותר, 36 מחלה עמידה נמצאים בטבע ועלולים להיות מניפולציות גנטית. בעלי חיים עור רופפים, כגון מכרסמים, שחשבו שיש הסדר שונה של אספקת דם עורית בהשוואה לבעלי חיים קבועים עור כגון בני אדם וחזירים. בבעלי חיים עור רופפים, עור מסופק בעיקר על ידי כלי דם עורית ישירים העוברים דרך השומן תת עורי לעור שמעליה (איור 4) לעומת זאת, בעלי חיים פשוטים עור קבוע נובעים אספקת דם עורית דרך כלי שכמובן דרך את השרירים הבסיסיים ל...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

שינויים ופתרון בעיות

הפרוטוקול המובא כאן מתרבה IRI ראה בהעברה החופשית ברקמת מערכת ניסיונית המאפשר הבנה נוספת של תהליך זה ומספק אמצעים כדי לחקור אמצעי טיוב IRI ושיפור מצבם. זה בקלות יכול היה להיות שונה כדי לייצר פציעה חמורה יותר אם זה היה מבוסס על הלא דומיננטי, עמוק, נחות ברום הבטן גבעול או אם זמן איסכמי היה מוגבר.

מגבלות של טכניקה

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

אין לנו גילויים.

תודות

עבודה זו מומנה על ידי המועצה למחקר הרפואי מענק G1000299.

המחבר המקביל רוצה להודות גארי Borthwick, אוניברסיטת אדינבורו, על סיוע במהלך הניתוח.

המחברים מבקשים להודות עצה מהלן דאגלס ואיאן מקאיי ומאפשרים לנו להתבונן ברום בטנם נחות העמוק (Diep) הליך דש (יחידת Canniesburn כירורגיה פלסטית, גלזגו רויאל המרפאה, 84 רחוב טירה, גלזגו G4 0SF, בריטניה).

המחברים גם רוצים להודות ללאקי גארי באוניברסיטת אדינבורו על עזרתו בהפקת הסרטון לכתבה זו.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
הדמיית דופלר לייזר Moor LD12http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8
מערכת שמיכה הומותרמית מלאה עם בדיקה גמישה. קטן. 230 VAC, 50 הרץ507221Fwww.harvardapparatus.com
Graeffe מלקחיים 0.8 מ"מ קצוות מעוקלים11052-102, http://www.finescience.de
Acland clamps00398 VB-1 ’ V’ מהדקי דפוס המשמשים הן על העורק והן על הווריד. http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
Clamp מוליךCAF-4http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
Gemini 726067www.harvardapparatus.com
מרחיבי מיקרו-כלי 11 ס"מ 0.3 מ"מ קצות 00124D-5a.2http://www.merciansurgical.com
מיקרו תכשיטים מלקחיים 11 ס"מ זוויתי 00109JFA-5bhttp://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers מלקחיים 11 ס"מ ישר 00108JF-5http://www.merciansurgical.com
Acland מהדקים בודדים B-1V (זוג)396http://www.merciansurgical.com
מיקרו מספריים ידיות עגולות 15 ס"מ ישר67http://www.merciansurgical.com
מספריים לאיריס 11.5 ס"מ קימורים EASY-CUTEA7613-11http://www.merciansurgical.com
Mayo מספריים 14 ס"מ להבים ישרים EASY-CUTEA7652-14http://www.merciansurgical.com
Derf מחזיקי מחטים 12 ס"מ TC703DE12http://www.merciansurgical.com
Ethilon 5-0W1618http://www.farlamedical.co.uk/
Vicryl rapide 6-0W9913http://www.millermedicalsupplies.com/
Instrapac - מלקחיים עם שיניים של אדסון (עדין במיוחד)7973http://www.millermedicalsupplies.com/
מחזיקי מחטים של Castroviejo12565-14http://s-and-t.ne
Heat Lamphttp://www.chicken-house.co.uk
יריעות סיליקון 0.3 מ"מ שקופותhttp://www.silex.co.uk/
Image J softwarehttp://rsbweb.nih.gov/ij/
Zeiss OPMI picohttp://www.zeiss.co.uk/
הפעלה מיקרוסקופ
טכנולוגי מתקן איזופלואורןhttp://www.vet-tech.co.uk/
אסדתhttp://www.vet-tech.co.uk/
סורק פתרון איזופלואורן פתרון טכנולוגי וטרינרי

מקורות

  1. Wang, X., et al. Free anterolateral thigh adipofascial flap for hemifacial atrophy. Ann. Plast. Surg. 55 (6), 617-622 (2005).
  2. Eckardt, A., Fokas, K. Microsurgical reconstruction in the head and neck region: An 18-year experience with 500 consecutive cases. J. Cranio. Maxill. Surg. 31 (4), 197-201 (2003).
  3. Yazar, S., et al. Safety and reliability of microsurgical free tissue transfers in paediatric head and neck reconstruction - a report of 72 cases. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (7), 767-771 (2008).
  4. Blondeel, P. N., Landuyt, K. H. V., Monstrey, S. J. Surgical-technical aspects of the free diep flap for breast reconstruction. Operat. Tech. Plast. Reconstr. Surg. 6 (1), 27-37 (1999).
  5. Siemonow, M., Arslan, E. Ischaemia/reperfusion injury: A review in relation to free tissue transfers. Microsurgery. 24, 468-475 (2004).
  6. Wang, W. Z. Investigation of reperfusion injury and ischaemic preconditioning in microsurgery. Microsurgery. 29, 72-79 (2009).
  7. Rucker, M., et al. Reduction of inflammatory response in composite flap transfer by local stress conditioning-induced heat-shock protein 32. Surgery. 129 (3), 292-301 (2001).
  8. Cetinkale, O., et al. Involvement of neutrophils in ischemia-reperfusion injury of inguinal island skin flaps in rats. Plast. Reconstr. Surg. 102 (1), 153-160 (1998).
  9. Korthuis, R. J., Granger, D. N., Townsley, M. I., Taylor, A. E. The role of oxygen-derived free radicals in ischemia-induced increases in canine skeletal muscle vascular permeability. Circ. Res. 57 (4), 599-609 (1985).
  10. Eisenhardt, S. U., et al. Monitoring molecular changes induced by ischemia/reperfusion in human free muscle flap tissue samples. Ann. Plast. Surg. 68 (2), 202-208 (2012).
  11. Dragu, A., et al. Gene expression analysis of ischaemia and reperfusion in human microsurgical free muscle tissue transfer. J. Cell. Mol. Med. 15 (4), 983-993 (2011).
  12. Tilgner, A., Herrberger, U. [myocutaneous flap models in the rat. Anatomy, histology and preparation technic of the myocutaneous rectus abdominis flap]. Z. Versuchstierkd. 29 (5-6), 231-236 (1987).
  13. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The rat rectus abdominis myocutaneous flap: A true myocutaneous flap model. Ann. Plast. Surg. 31 (4), 352-357 (1993).
  14. Clugston, P. A., Perry, L. C., Fisher, J., Maxwell, G. P. A rat transverse rectus abdominis musculocutaneous flap model: Effects of pharmacological manipulation. Ann. Plast. Surg. 34 (2), 154-161 (1995).
  15. Ozgentas, H. E., Shenaq, S., Spira, M. Development of a tram flap model in the rat and study of vascular dominance. Plast. Reconstr. Surg. 94 (7), 1012-1017 (1994).
  16. Doncatto, L. F., da Silva, J. B., da Silva, V. D., Martins, P. D. Cutaneous viability in a rat pedicled tram flap model. Plast. Reconstr. Surg. 119 (5), 1425-1430 (2007).
  17. Lineaweaver, W. C., et al. Vascular endothelium growth factor, surgical delay, and skin flap survival. Ann. Surg. 239 (6), 866-873 (2004).
  18. Rezende, F. C., et al. Electroporation of vascular endothelial growth factor gene in a unipedicle transverse rectus abdominis myocutaneous flap reduces necrosis. Ann. Plast. Surg. 64 (2), 242-246 (2010).
  19. Zacchigna, S., et al. Improved survival of ischemic cutaneous and musculocutaneous flaps after vascular endothelial growth factor gene transfer using adeno-associated virus vectors. Am. J. Pathol. 167 (4), 981-991 (2005).
  20. Zhang, F., et al. Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat tram flap model. Ann. Plast. Surg. 46, 314-319 (2010).
  21. Hijjawi, J., et al. Platelet-derived growth factor β, but not fibroblast growth factor 2, plasmid DNA improves survival of ischemic myocutaneous flaps. Arch. Surg. 139 (2), 142-147 (2004).
  22. Wong, M. S., et al. Basic fibroblast growth factor expression following surgical delay of rat transverse rectus abdominis myocutaneous flaps. Plast. Reconstr. Surg. 113 (7), 2030-2036 (2004).
  23. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14 (6), 420-423 (1993).
  24. Hallock, G. G., Rice, D. C. Comparison of tram and diep flap physiology in a rat model. Plast Reconstr Surg. 114 (5), 1179-1184 (2004).
  25. Qiao, Q., et al. Patterns of flap loss related to arterial and venous insufficiency in the rat pedicled tram flap. Annals of Plastic Surgery. 43 (2), 171(1999).
  26. Persy, V. P., Verhulst, A., Ysebaert, D. K., De Greef, K. E., De Broe, M. E. Reduced postischemic macrophage infiltration and interstitial fibrosis in osteopontin knockout mice. Kidney Int. 63 (2), 543-553 (2003).
  27. Li, Y., et al. Overexpression of cgmp-dependent protein kinase i (pkg-i) attenuates ischemia-reperfusion-induced kidney injury. Am. J. Physiol. Ren. Physiol. 302 (5), 561-570 (2012).
  28. Hunter, J. P., et al. Effects of hydrogen sulphide in an experimental model of renal ischaemia-reperfusion injury. Brit. J. Surg. 99 (12), 1665-1671 (2012).
  29. Hamada, T., Fondevila, C., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Metalloproteinase-9 deficiency protects against hepatic ischemia/reperfusion injury. Hepatology. 47 (1), 186-198 (2008).
  30. Duarte, S., Hamada, T., Kuriyama, N., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Timp-1 deficiency leads to lethal partial hepatic ischemia and reperfusion injury. Hepatology. 56 (3), 1074-1085 (2012).
  31. Shen, X. D., et al. Cd154-cd40 t-cell costimulation pathway is required in the mechanism of hepatic ischemia/reperfusion injury, and its blockade facilitates and depends on heme oxygenase-1 mediated cytoprotection. Transplantation. 74 (3), 315-319 (2002).
  32. Liu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress modulates liver inflammatory immune response in the pathogenesis of liver ischemia and reperfusion injury. Transplantation. 94 (3), 211-217 (2012).
  33. Pan, G. Z., et al. Bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate hepatic ischemia/reperfusion injuries via inactivation of the mek/erk signaling pathway in rats. J. Surg. Res. 178 (2), 935-948 (2012).
  34. Darouiche, R. O., et al. Chlorhexidine-alcohol versus povidone-iodine for surgical-site antisepsis. New. Engl. J. Med. 362 (1), 18-26 (2010).
  35. Fukui, A., Inada, Y., Murata, K., Tamai, S. Plasmatic imbibition" in the rabbit flow-through venus flap, using horseradish peroxidase and fluoroscein. J. Reconstr. Mirosurg. 11, 255-264 (1995).
  36. Dunn, R. M., Mancoll, J. Flap models in the rat: A review and and reappraisal. Plast. Reconstr. Surg. 90 (2), 319-328 (1992).
  37. Taylor, G., Minabe, T. The angiosomes of the mammals and other vertebrates. Plast. Reconstr. Surg. 89 (2), 181-215 (1992).
  38. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The versatile deep inferior epigastric (inferior rectus abdominis) flap. Brit. J. Plast. Surg. 37 (3), 330-350 (1984).
  39. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The extended deep inferior epigastric flap: A clinical technique. Plast. Reconstr. Surg. 72 (6), 751-765 (1983).
  40. Tai, Y., Hasegawa, H. A tranverse abdominal flap for reconstruction after radical operations for recurrent breast cancer. Plast. Reconstr. Surg. 53 (1), 52-54 (1974).
  41. Scheflan, M., Dinner, M. I. The transverse abdominal island flap: Part i. Indications, contraindications, results, and complications. Ann. Plast. Surg. 10, 24-35 (1983).
  42. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Pripp, A. H., Tonseth, K. A. Monitoring microcirculatory changes in the deep inferior epigastric artery perforator flap with laser doppler perfusion imaging. Ann. Plast. Surg. 67 (2), 139-142 (2011).
  43. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Tonseth, K. A. Microcirculatory evaluation of deep inferior epigastric artery perforator flaps with laser doppler perfusion imaging in breast reconstruction. J. Plast. Surg. Hand. Surg. 45 (3), 143-147 (2011).
  44. Booi, D. I., Debats, I. B. J. G., Boeckx, W. D., van der Hulsi, R. R. W. J. A study of perfusion of the distal free-tram flap using laser doppler flowmetry. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, 282-288 (2008).
  45. Hallock, G. G. Physiological studies using laser doppler flowmetry to compare blood flow to the zones of the free tram flap. Ann. Plast .Surg. 47 (3), 229-233 (2001).
  46. Collin, T. Image j for microscopy. Biotechniques. Suppl. 43 (1), 25-30 (2007).
  47. Hallock, G., Rice, D. Physiologic superiority of the anatomic dominant pedicle of the tram flap in a rat model. Plast. Reconstr. Surg. 96, 111-118 (1995).
  48. Ozmen, S., Ayhan, S., Demir, Y., Siemionow, M., Atabay, K. Impact of gradual blood flow increase on ischaemia-reperfusion injury in the rat cremaster microcirculation model. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (8), 939-948 (2008).
  49. Rucker, M., Vollmar, B., Roesken, F., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Microvascular transfer-related abrogation of capillary flow motion in critically reperfused composite flaps. Brit. J. Plast Surg. 55 (2), 129-135 (2002).
  50. Rucker, M., Kadirogullari, B., Vollmar, B., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Improvement of nutritive perfusion after free tissue transfer by local heat shock-priming-induced preservation of capillary flowmotion. J. Surg. Res. 123, 102-108 (2005).
  51. Rucker, M., et al. New model for in vivo quantification of microvascular embolization, thrombus formation, and recanalization in composite flaps. J. Surg. Res. 108 (1), 129-137 (2002).
  52. Wang, W. Z., Baynosa, R. C., Zamboni, W. A. Update on ischemia-reperfusion injury for the plastic surgeon. Plast. Reconstr. Surg. 128 (6), 685e-692e (2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

דימות לייזר דופלרניתוח ב-Image Jתפסנים לאטראומטייםהערכת פרפוזיה של פלפמדידת הישרדות עורהליך כירורגי