הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

תרבות של רקמות מבודדות פלייט מקיר לקיר וייצור בינוני אוויר כדי להעריך את התכונות פונקציונליות של איתותים שפורסם פלייט מקיר לקיר

7.7K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/50884

⸱

11 בפברואר 2014

 ,  ,  , 

במאמר זה

סיכום

צלחת הרצפה היא מבנה חיוני של תאי העצב מתפתח בעמוד השדרה, ומספקים אותות diffusible לאבות ומבדל. אנו מתארים שיטה להפקה בינונית מותנים בקומת צלחת, כדי להחיל אותו על רקמת חוט השדרה טרי, ועל מנת להעריך את ההשלכות על חלבונים של עניין על ידי ביוכימיה.

תקציר

במהלך פיתוח, אבות ונוירונים לאחר mitotic לקבל אותות משטחים סמוכים המסדירים את גורלם. רצפת הצלחת היא קבוצה של תאים המצפה את תעלת גליה ependymal בעמדת הגחון. רצפת הצלחת מבטאת morphogens מפתח תורם לדפוסים של שושלות תאים בחוט השדרה. בשלבי התפתחותיים מאוחרים יותר, בקומת הצלחת מסדירה את הניווט של אקסונים בחוט השדרה, הפועל כמחסום כדי למנוע את מעבר של אקסונים ipsilateral וחציית קו האמצע שליטה על ידי אקסונים commissural 1. פונקציות אלה מושגות באמצעות הפרשת אותות הנחיה שונות. חלק מרמזים אלה לפעול כמשיכה ודוחים לאקסונים גדל בעוד שאחרים להסדיר קולטנים הדרכה ואיתות במורד הזרם כדי לווסת את הרגישות של האקסונים לאותות הנחיה המקומיים 2,3. כאן אנו מתארים שיטה המאפשרת לחקור את תכונותיהם של אותות הנגזרים מהרצפה צלחת במגוון deveהקשרי lopmental, המבוססים על הייצור של מדיום לקיר-פלייט מותנה (סנטימטר FP) 4-6. לאחר מכן, אנו מדגימים את השימוש בסנטימטר FP זה בהקשר של הדרכה האקסון. ראשית, בחוט השדרה מבודד מעובר של העכבר בE12.5 ורצפת הצלחת גזור החוצה וטיפחה במטריצת הפלזמה תרומבין (איור 1). שני ימים שני לאחר מכן, רקמות commissural הם גזורים החוצה מעוברי E12.5, triturated ונחשפו לסנטימטר FP. שלישית, הרקמה מעובדות לניתוח כתם מערבי של סמני commissural.

מבוא

רצפת הצלחת היא מרכז דפוסים ידוע של חוט השדרה המתפתח, ממלא תפקידי מפתח במפרט של אבות ושושלות תאי postmitotic ושליטה ניווט האקסון 7,8. הליך הניסוי שתואר כאן כדי לייצר סנטימטר FP מאפשר לחוקרים להעריך את המאפיינים הפונקציונליים של אותות המופק מצלחת רצפה בהקשרים שונים של תהליכים התפתחותיים, מדפוסי תא והישרדות לתא וההגירה האקסון.

כדי להדגים את השימוש בסנטימטר FP כגון, רקמות חוט השדרה הגבי מכילות נוירונים commissural הם גזורים, dilacerated ומגורה עם סנטימטר FP. הרקמות אז יכולות להיות מעובד לניתוח כתם מערבי. זה מאפשר לחקור את התקנות של מכונות האקסון הדרכה על ידי אותות שוחררו מהרצפה צלחת. שיטת הטיפול של רקמה טרי dilacerated מחזיקה את היתרון הגדול של שימור microenvironment של תאים בתוך הדואר רקמות. לכן ההשלכות של הטיפול על ידי סנטימטר FP או כל סוגים של טיפול מוערכים באופן פיסיולוגי יותר מאשר בתא ותנאים בתרבית רקמה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

יום 1

1. Dissection של פלייט בחוט השדרה מקיר לקיר (FP) מE12.5 עוברי עכברים

הערה: כל ההליך מחייב השימוש בתנאים סטריליים. עדיף לבצע את הנתיחה מתחת למכסת מנוע לנתיחה, כדי למנוע זיהום. פני השטח של מכסה המנוע יש לנקות עם אתנול. כל מכשירי הנתיחה חייבים להיות מעוקרים והמשיכו בצלחת פטרי סטרילית. הנוזלים (מדיום, מדיום לנתיחה) חייבים להיות כל הזמן סגור ולשים באמבט קרח. כל עובר צריך להיות שנאסף בירידה טרי בודדת. זה חשוב לשימור רקמות. הנתיחה מתבצעת עם דומון # 5 מלקחיים. כדי להעביר את העוברים בין מנות, אחיזת חבל הטבור או הראש ללא כל נזק למוח האחורי. זה קריטי שלא לפגוע בחוט השדרה על מנת להשלים את הנתיחה בהצלחה. הכן קר בופר פוספט (PBS), תמיסת מלח מאוזנת של האנק הקר (HBSS) -גלוקוז 6.5% ובינוניים neurobasal טמפרטורת חדר.

1.1 נתיחת חוט השדרה

מטופלים בעלי חיים על פי הנחיות הטיפול בבעלי החיים של המרכז הלאומי de la משוכלל ונדיר Scientifique הבאים הנחיות אירופאיות. השיטה של ​​המתת חסד היא נקע בצוואר הרחם, היא מורכבת מהפעלה לחץ על הצוואר ונקע את עמוד השדרה מהמוח. שיטה זו מומלצת למודלים של בעלי החיים עכבר, והוא יכול להתבצע באופן מהיר ויעיל.

  1. להרדים עכבר בהריון בE12.5 של הריון (E0.5 = שטיחים ליום ראשון הבאים). הנח את צד הגחון העכבר כלפי מעלה.
  2. משרים את הבטן עם 70% אתנול. לצבוט את העור של הבטן עם מלקחיים Adson ולחתוך דרך העור ושכבות הצפק עם מספריים כירורגיות. עושה חתך ולהשתמש בו כדי לחתוך משני צידי העכבר כדי לחשוף את חלל הבטן.
  3. מחרוזת של עוברים נמצאת בצד אחד של העכבר. לתפוס צופר אחד אוטהrus ברקמה בין שני עוברים ולנתח את זה מתחיל מהחלק החיצוני. העבר את הרחם בשלמותה בצלחת פטרי 100 מ"מ עם PBS הקר על קרח.
  4. חלץ את העוברים מרקמות חוץ עובריים. אחוז ברקמת השליה (באדום כהה) עם שני זוגות מלקחיים ולמשוך בעדינות לקרוע את הרקמות ולהסיר את העוברים מהשק ברחם.

הערה: לשימור טוב יותר, לאסוף את העוברים מהשק ברחם שלהם האחד אחד.

  1. בשלבים הבאים נעשים תחת זכוכית מגדלת משקפת ומכסה מנוע לנתיחה. הנח עובר אחד בירידה של גלוקוז HBSS-6.5% הקרים.
  2. בעזרת מלקחיים, לערוף את העובר.

הערה: חותכים בין הלסת והמוח האחורי התחתונות, החלק האחורי של המוח האחורי הוא חשוב לשלבים הבאים.

  1. הנח את הגחון העובר למטה עם החלק הקדמי מול הנסיין.
  2. לצבוט את העורשל העובר עם זוג אחד של מלקחיים ועם הזוג האחר למשוך את העור.

הערה: בשלב זה יש צורך לחזור עד לעור הוסר לחלוטין מהחלק הקדמי של העובר.

  1. הפעל את הצד קדמי עובר בצד השמאל. עם אחד מלקחיים "להצמיד" את העובר בחלק הקדמי. עם המלקחיים האחרים לתפוס את העור ולמשוך לכיוון הצד מקורי של העובר. חוט השדרה הוא אז נגיש.
  2. השתמש בצד אחד של המלקחיים לחתוך את קרומי המוח שעדיין עוטף את חוט השדרה. חוט השדרה הוא פתוח עכשיו.
  3. הפעל את הצד קדמי עובר בצד הימין.
  4. לנתק את הרקמה מחוט השדרה מתחיל מהצד של צוואר הרחם של העובר. החלק את המלקחיים תחת חוט השדרה (המלקחיים צריכים לתת דין ונסגרו כדי למנוע נזק בחוט השדרה). המלקחיים צריכים להיות גלוי מתחת לחוט השדרה. תנועות סבובי קטנות מתחת לחוט השדרה יש בם כדי לנתק אתרקמה הסובבת וגרעינים הגבי שורש (DRG).

הערה: רקמה שמסביב מצורף השארת להוסיף משקל לחוט השדרה, ובכך להגדיל את ההסתברות של לשבור אותו בשלב הבא.

  1. מניחים את חוט השדרה המבודד בירידה טרי של גלוקוז HBSS-6.5% הקרים.
  2. מניחים את חוט השדרה במצב שטוח, קרומי המוח בצד העליון וקדמי מן הנסיין.
  3. "להצמיד" את חוט השדרה באמצעות המוח האחורי שנותר עם מלקחיים, ועם המלקחיים שני לתפוס את קרומי המוח. לקלף את קרומי המוח מתחילים מהצד מקורי של חוט השדרה.

הערה: התנועה צריכה להיות איטית ומתמדת, כדי למנוע כל שבירה של חוט השדרה. תנועות רטט יכולות להקל על הניתוק של קרומי המוח.

1.2 נתיחת FP

  1. לצבוט את המוח האחורי עם מלקחיים.
  2. FP הוא טרה המרכזיתחלק nsparent של הרקמה. באמצעות אזמל לחתוך את צלחת הרצפה.

הערה: כדי לחתוך את שני הצדדים באותה האיכות, להתחיל מהצד מקורי ולחלופין לחתוך את צד ימין וצד השמאל של צלחת הרצפה.

  1. לשמר את FP גזור במדיום Neurobasal בטמפרטורת חדר.

2. FP תרבות

שימו לב: יש לבצע את כל השלבים בתנאים סטריליים במנדף בתרבית רקמה. השתמש בינוני טריים ותוספי מזון וחומרים כימיים מופשרים טרי. הכן את coverslips סטרילי זכוכית, neurobasal החם + B27, פלזמה, וHBSS-תרומבין.

2.1 תרבות FP

  1. הנח כמה coverslips סטרילי בצלחת פטרי 100 מ"מ ופיפטה 20 פלזמה μl במרכזו של כל coverslip.
  2. העבר 03:58 FP בכל טיפת פלזמה ולהוסיף 20 μl HBSS-תרומבין לצד הירידה בפלזמה ומערבבים בזהירות. שמור את coverslipsעבור מינימום של עשר דקות בטמפרטורת חדר כדי לאפשר קרישה של הפלזמה.

הערה: העברת שני FPS במקרה של נתיחה מלאה ויותר במקרה של נתיחה חלקית. מערבבים לאט עם קצה פיפטה ולהימנע ממגע עם explants FP.

קריש הפלזמה חזר בו כמה מיקרומטר כסימן לקרישה. הקרישה אסור הפסיקה בטרם עת, כדי למנוע ניתוק של קריש הפלזמה.

  1. העבר את כל coverslip בצלחת 24 היטב ולהוסיף 500 μl של Neurobasal + B27. דגירה 48 שעות על 37 ° C.

יום 3

3. קצירה בינונית FP אוויר (סנטימטר FP)

הערה: קצירה צריכה להתבצע בתנאים סטריליים במנדף בתרבית רקמה. אם את supernatant מזוהם או אם צלחות רצפה צפות (כלומר הם עלולים למות במהלך פרי התרבותOD) אז לא למסוק סנטימטר FP מזה היטב.

קצירת סנטימטר 3.1 FP

  1. למסוק בזהירות בינונית מכל טוב.

הערה: אל פיפטה את תערובת הפלזמה תרומבין polymerized או כל שברי FP.

  1. אחסן 100 aliquots μl ב -80 ° C.

יום 4

4. Dissection של חוט השדרה Commissural נוירונים מE12.5 עוברי עכברים

הערה: הכנה זו אינה צריכה להתבצע בתנאים סטריליים. בצע את ההליך המתואר לעיל כדי לאסוף את העוברים. הקר PBS להכין, גלוקוז הקר HBSS-6.5% וneurobasal הקר.

4.1 נתיחת חוט השדרה

  1. בעזרת מלקחיים, לערוף את העובר.

הערה: חותכים בין הלסת והמוח האחורי התחתונות, החלק האחורי של המוח האחורי הוא חשוב עבורהשלבים הבאים.

  1. הנח את הגחון העובר למטה בירידה טרי עם החלק הקדמי מול הנסיין.
  2. לצבוט את העור של העובר עם מלקחיים ובשנייה אחת למשוך את העור.

הערה: בשלב זה יש צורך לחזור עד לעור הוסר לחלוטין מהחלק הקדמי של העובר.

  1. הפעל את הצד קדמי עובר בצד השמאל. עם אחד מלקחיים "להצמיד" את העובר בחלק הקדמי. עם מלקחיים האחרים, לתפוס את העור ולמשוך לכיוון הצד מקורי של העובר, כדי לחשוף את חוט השדרה.
  2. השתמש בצד אחד של המלקחיים לחתוך את קרומי המוח שעדיין עוטף את חוט השדרה. חוט השדרה הוא כעת נחשף ופתוח.
  3. מקם את הצד הקדמי העובר בצד הימין.
  4. לנתק את הרקמה מחוט השדרה מתחיל מהצד של צוואר הרחם של העובר. החלק את המלקחיים תחת חוט השדרה (לשמור המלקחיים סגורים). עבורפטריות לבנות חייבות גלויות מתחת לחוט השדרה. תנועות סבובי קטנות מתחת לחוט השדרה יש בם כדי לנתק את הרקמות הסמוכות וגרעינים הגבי שורש (DRG).
  5. העבר את חוט השדרה המבודד בירידה חדשה של גלוקוז HBSS-6.5% הקרים.
  6. מניחים את חוט השדרה במצב שטוח, קרומי המוח בצד העליון וקדמי מן הנסיין.
  7. "להצמיד" את חוט השדרה באמצעות המוח האחורי שנותר עם מלקחיים, עם המלקחיים שני לתפוס את קרומי המוח. לקלף את קרומי המוח מתחילים מהצד מקורי של חוט השדרה.

4.2 נתיחת Commissural Neuron

  1. לצבוט את המוח האחורי עם מלקחיים.
  2. נוירונים Commissural ממוקמים בחלקו לרוחב ביותר של חוט השדרה (צד הגב). לגזור חלק לרוחב זה עם אזמל דק.

הערה: החלק הגבי של חוט השדרה ניתן להבחין בין חלק הגחון על ידי הבדל של ד התאensity, חלק הגחון להיות אטום יותר.

הערה: כדי לחתוך את שני הצדדים באותה האיכות, להתחיל מהצד מקורי ולחלופין לחתוך אורך קטן של צד ימין ושל צד השמאל.

  1. לשמר את הרקמה גזור במדיום Neurobasal על קרח לשימוש מיידי.

5. טיפול ברקמות Commissural עם סנטימטר FP

הערה: הליך זה אינו דורש תנאים סטריליים. הרקמות צריכה להיות שנאספו ב1.5 מיליליטר צינורות בודדים. יש להשתמש בסנטימטר FP הקפוא רק פעם אחת. הימנע refreezing מרובה. הכן סנטימטר FP חם (37 מעלות צלזיוס).

5.1 טיפולים של נוירונים commissural

  1. Dilacerate רקמת commissural עם מספריים קטנים.

הערה: חותכים את הרקמה הקטנה ככל האפשר, כדי להגביר את הנגישות של התאים.

  1. הפץ למדי הרקמה בין הטיפול שונה הניסיוני שליטת תנאים וטיפול סנטימטר FP.
  2. צנטריפוגה שברי הרקמה בXG 800 דקות 1 ב 4 ° C.
  3. בדוק את המחיצות בין צינורות.

הערה: אם יש צורך להפיץ מחדש ו צנטריפוגות שוב עד שברים מופצים באופן שווה.

  1. הסר את supernatant.
  2. הוסף את טיפולי סנטימטר ושליטה FP החמים לרקמות.

הערה: הנפח חייב להיות מותאם לכמות של גלולה וצריך להיות לפחות פי שניים מהנפח של גלולה.

  1. לדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות.

הערה: נער בעדינות בכל דקות 10-15

  1. צנטריפוגה ב XG 800 דקות 1 ולהסיר את הטיפול.
  2. מוסיף את מאגר תמוגה

הערה: הנפח חייב להיות מותאם להר של גלולה וצריך להיות לפחות פי שניים מהנפח של גלולה.

  1. פיפטה מעלה ומטה כדי resuspend את הכדור.

שים לב: גם מערבולת יכולה לשמש.

  1. דגירה 15 דקות על קרח.
  2. צנטריפוגה ב XG 14,000 במשך 15 דקות ב 4 ° C.
  3. שמור את supernatant ולמדוד את כמות החלבון עם assay ברדפורד 9.
  4. הוספת 6x Laemmli הצפת.
  5. לדגור על C ° 95 במשך 5 דקות כדי לפגל תכולת החלבון.

הערה: ניתן להשתמש בדוגמאות באופן מיידי או שניתן לאחסן ב -80 ° C.

  1. להעריך את ההשפעות של הטיפול על ידי כתם מערבי 10.

הערה: לפחות 50 מיקרוגרם של חלבונים בסך הכל צריכים להיות טעונים לנתיב אחד.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

טופלו רקמות Commissural ידי סנטימטר FP והדגימות עובדו לניתוח של רמות הקולטן בכתם מערבי. יישום של סנטימטר FP הוצג כדי להגדיל את הרמות של הקולטן הדרכה, PlexinA1, אשר מתווך את הרגישות של האקסונים commissural לSemaphorin3B דוחה קו האמצע לאחר החצייה (איור 2). זה גילה כי אותות שפורסמו על ידי FP לווסת את רמות PlexinA1 4,6.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

הייצור של מדיום מותנה בקומת צלחת מספק דרך יעילה וקלה להערכת המאפיינים הביולוגיים של אותות שוחררו צלחת רצפה.

מטריקס הפלזמה תרומבין מספק מצב מצוין להישרדות רקמות. עם זאת, סביבה מועשרת זה עשויה להיות מגבלה עבור סוגים מסוימים של ניסויים. לפיכך, רקמת צלחת רצפה יכולה גם להיות מעובד במטריצת agarose. האיכות של המדיום המותנה צלחת רצפה ניתן להעריך על ידי זיהוי של אותות ידועים בקומת צלחת שוחררו, כגון GDNF (איור 2),<...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

יש המחברים אין לחשוף

תודות

אנו מודים לקרין Kindbeiter, מיוריאל Bozon, ופלורי ריינו לעזרתם. העבודה נתמכת על ידי CNRS, תכנית ANR יודה וLabex DevWeCan.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
<חזק>ריאגנטים נדרשים
>PBSInvitrogen14190-094
HBSS, Ca2+/Mg2+- freeInvitrogen14170-088
גלוקוזסיגמאG-7021
NeurobasalInvitrogen21103-049
פלזמהסיגמאP-32661 מ"ג/מ"ל (Recreate ב-H2O ומסונן)
תרומביןסיגמאT-464810 מ"ג/מ"ל (Reforming ב-H2O ותסנין)
B27Invitrogen17504-04450x
HEPES (260 גרם/מול)SigmaH-7006
EDTASigmaE-55130.5 M, pH 8
MgCl2Euromedex21891M
גליצרולVWR24388.295
IGEPALSigmaI-3021
טבליות קוקטייל מעכב פרוטאז מלאRoche04 693 116 001
נתרן אורתוואנדאט (Na3VO4)SigmaS-6508
מזוקק H 2O
טבלה 1.ריאגנטים נדרשים.
כלים וחומרים
מספריים כירורגייםכלים מדעיים עדינים14002-12
מלקחיים של אדסוןכלים מדעיים עדינים11027-12
Dumont #5 מלקחיים עדיניםמדעיים עדינים11254-20
MicroknivesFine ScienceTools 10136-14
טבלה 2. כלים וחומרים.
Dissection and FP culture
אתנול 70%
מכסה המנוע
מיקרוסקופ דיסקציה
צלחות פטרי
זכוכית18 מ"מ x 18 מ"מ
מבער גז בונסן
24 בארות
חממת תרבית רקמות (37 ° C, 5% CO2, לחות מבוקרת)
צנטריפוגה
Recipes
מדיית תרבית FP
Neurobasal
B271/50e דילול ממלאי
HBSS-thrombin
HBSS1 מ"ל
תרומבין 10 מ"ג/מ"ל30 μ l
חוצץ ליזה pH 7,4
HEPES (260 גרם/מול) 25 מ"מ
EDTA (pH 8) 5 mM
MgCl2 1 mM
Glycerol 10%
IGEPAL (NP40) 0.10%
קוקטייל מעכב פרוטאז td1x<>
נתרן אורתובנדאט 0.2 M
H2O
Laemmli Buffer
tris 0.5 M, pH 6,8 375 mM
SDS6%
גליצרול
DTT0.6 M
Bromophenol blue
H2O
< קוקטייל מעכב פרוטאז tr> <> < td>60%
כלים

מקורות

  1. Nawabi, H., Castellani, V. Axonal commissures in the central nervous system: how to cross the midline. Cell. Mol. Life Sci. 68, 2539-2553 (2011).
  2. Placzek, M., Briscoe, J. The floor plate: multiple cells, multiple signals. Nat. Rev. Neurosci. 6, 230-240 (2005).
  3. Chedotal, A. Further tales of the midline. Curr. Opin. Neurobiol. 21, 68-75 (1016).
  4. Nawabi, H., et al. A midline switch of receptor processing regulates commissural axon guidance in vertebrates. Genes Dev. 24, 396-410 (2010).
  5. Ruiz de Almodovar, C., et al. VEGF mediates commissural axon chemoattraction through its receptor Flk1. Neuron. 70, 966-978 (2011).
  6. Charoy, C., et al. gdnf activates midline repulsion by Semaphorin3B via NCAM during commissural axon guidance. Neuron. 75, 1051-1066 (2012).
  7. Kiecker, C., Lumsden, A. The role of organizers in patterning the nervous system. Annu. Rev. Neurosci. 35, 347-367 (2012).
  8. Le Dreau, G., Marti, E. Dorsal-ventral patterning of the neural tube: a tale of three signals. Dev. Neurobiol. 72, 1471-1481 (2012).
  9. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72, 248-254 (1976).
  10. Eslami, A., Lujan, J. Western blotting: sample preparation to detection. J. Vis. Exp. , (2010).
  11. Salinas, P. C. The morphogen sonic hedgehog collaborates with netrin-1 to guide axons in the spinal cord. Trends Neurosci. 26, 641-643 (2003).
  12. Bechara, A., et al. FAK-MAPK-dependent adhesion disassembly downstream of L1 contributes to semaphorin3A-induced collapse. EMBO J. 27, 1549-1562 (2008).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

הפקה של מצע מותנהבידוד של חוט השדרהדיסקציה של נוירונים קומיסוריאלייםאנליזת Western Blotמטריצת תרומבין פלסמהמצע Neuro Basalבדיקת הנחיית אקסוניםשיטות בביולוגיה התפתחותיתטכניקות לתרבית תאים