מאמר שיטה

הערכת שינויים בנדיפות כללית הרדמה רגישות של עכברים לאחר התערבות תרופתי מקומית או מערכתית

DOI:

10.3791/51079

16 באוקטובר 2013

במאמר זה

סיכום

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אובדן של רפלקס ליישר שימש עוד פונדקאית התנהגותיות סטנדרטית לחוסר הכרה, המכונה גם היפנוזה, בחיות מעבדה. שינויים ברגישות לחומר הרדמה נדיפים הנגרמים על ידי התערבויות תרופתיים יכולים להיות מזוהים עם מערכת מבוקרת בקפידה תפוקה גבוהה הערכה, אשר עשוי להיות מותאמת לאספקה ​​של כל טיפולי בשאיפה.

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

נקודת סיום רצויה אחד מהרדמה הכללית הוא המצב של חוסר הכרה, הידוע גם בהיפנוזה. הגדרת המצב ההיפנוטי בבעלי חיים היא פחות ברורה מאשר בחולים אנושיים. הפונדקאי התנהגותי בשימוש נרחב להיפנוזה במכרסמים הוא אובדן ליישר רפלקס (LORR), או הנקודה שבה החיה כבר לא מגיבה לאינסטינקט המולד שלהם, כדי למנוע את הפגיעות של כיבה על גב. אנחנו פיתחנו מערכת להערכת LORR ב24 עכברים בו זמנית תוך שליטה בזהירות לבלבול פוטנציאלי, כוללים תנודות טמפרטורה ושונים תזרים גז. תאים אלה יאפשר הערכה אמינה של רגישות הרדמה כפי שהיא נמדדת על ידי חביון להשבה של רפלקס ליישר (RORR) בעקבות חשיפת הרדמה קבועה. לחלופין, באמצעות עלייה בשלבים (או ירידה) בריכוז חומר הרדמה, התאים גם לאפשר קביעת הרגישות של אוכלוסייה לאינדוקציה (או הופעתה), כפי שנמדדו על ידיEC 50 ומדרון גבעה. לבסוף, תאי הסביבה המבוקר המתוארים כאן ניתן להתאים למגוון רחב של שימושים אלטרנטיביים, כוללים משלוח בשאיפה של תרופות אחרות, מחקרי רעלים, וניטור בזמן אמת בו זמנית של סימנים חיוניים.

מבוא

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הרדמה כללית מוגדרות על ידי היכולת שלהם לגרום למצב הפיך בהיפנוזה במגוון רחב של מינים, ובכל זאת הסבר איך כיתה מגוונת כגון תרופות כל יכולה לעורר נקודת סיום ביחיד נותרת חמקמקה. מספר התיאוריות שהציג לאורך השנים, החל מהמתאם מאייר-אוברטון בין עוצמת הרדמה ומסיסות שומנים בדם, אשר הציע שיבושי קרום כלליים כבסיס ל1,2 היפנוזה. ראיות חדשות יותר מצביעות על כך שמטרות חלבון משפיעים על איתות עצבית לתרום להשפעות הרדמה. עכברים הוכיחו להיות מודל חיוני לחקר התיאוריות אלה בגלל ההומולוגיה בין עכברי והיענות הרדמה אנושית. למרות שעכבר לא יכול להישאל על המודעות הסובייקטיבית שלה תחת הרדמה כללית, רפלקסים פרימיטיביים מסוימים לשמש מדדים פונדקאיות כשימושיים של היפנוזה מכרסם. בימים הראשונים שלאחר לידה, עכברים לפתח שו"ת ליישר רפלקסיביתonse שמונע מהם שיוצבו באופן פסיבי במצב שכיבה 3. המינון של הרדמה שבה עכבר מאבד את רפלקס ליישרה וקושרת היטב עם מינונים היפנוטיים אדם 4.

ההערכה של אובדן רפלקס ליישר (LORR) הפכה לסטנדרטית במעבדה בשימוש נרחבת לבדיקת רגישות הרדמה בעכברים, כמו גם מגוון רחב של מינים אחרים, כולל עכברים, שפן ניסיונות, ארנבת, החמוס, כבשים וכלב 5-8. המינון של חומר הרדמה שניתנה בי LORR יתרחש לחברים של מינים הוא עקבי מאוד, אבל זה יכול להיות מוזז באופן משמעותי על ידי גורמים סביבתיים. לדוגמא, חולדות שנשללה שינה רגישות יותר לשני חומרי הרדמה נדיפים ווריד 9 וחולדות עם יכולת אירובית גבוהה פחות רגישים לisoflurane 10. היפותרמיה גם הוכח להקטין את המינון של חומרי הרדמה רבות הנדרשות להיפנוזה במגוון גדול של מיני 11-14. על מנתכדי לזהות את מינון חומר ההרדמה שבי LORR מתרחש בקבוצה של חיות ניסוי מהימן, זה קריטי, כי סביבת ההערכה להיות מבוקרת בקפידה כדי למזער את הלחץ, לשמור על euthermia, ולספק כמויות שווה של תרופה לכל הנושאים. באופן לא מפתיע, גורמים גנטיים ידועים גם לשנות את רגישות ההרדמה 15-18. כתוצאה מכך, שיקול זהיר יש לתת גם לשליטה על רקע גנטי 19.

פיתחנו מנגנון שמבטיח אספקת חומר הרדמה גזים זהה לכל אחד מ24 עכברים תוך שמירה על סביבת C 37 o קבועה. העיצוב הגלילי השקוף של תאי החשיפה שלנו מאפשר להערכת LORR המהיר ושילוב קל של מדידות פיסיולוגיות telemetric. מערכת זו הוכח כדי למדוד במדויק isoflurane, halothane, ואינדוקצית sevoflurane 50 EC וזמן הופעתה בwild-type עכברים 20. יש לנו גם בשימושבמערכת זו כדי לצפות שינויים ברגישות לחומר הרדמה בעכברים עם מוטציות גנטיות ונגעי ההיפותלמוס ממוקדים 21-23. כאן אנו מתארים שתי דרכים שבהן רגישות הרדמה ניתן להעריך לאחר התערבות תרופתית באמצעות מנגנון הסביבה המבוקר שלנו. phenotyping מצב היציב של אינדוקציה הרדמה נדיפים ורגישות הופעה דורש 8-10 שעות וכתוצאה מכך הוא מותאם ביותר ללימודים שבתנאי ניסוי לא משתנים, כמו בהתערבויות תרופתיים כרוניות או ארוכות טווח. עם זאת, לטיפולים, משחק קצר תופעות שיתפזרו באופן משמעותי לאורך זמן אנחנו גם להציג הליך פשוט כדי להעריך את השינויים בליישר רפלקס הבא microinjections stereotactically הממוקד או טיפולים תרופתיים תוך ורידי המשפיעים הופעת הרדמה באופן משמעותי. בדיקות אלה מייצגות קבוצה קטנה של היישומים הפוטנציאליים עבור מערכת של הסביבה מבוקרת זו, אשר יכולה להיות מותאמת לכל מספר של Subjects של מגוון מינים כדי לקבל כל סוג של טיפול בשאיפה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ההליכים כרוכים בבעלי חיים המפורטים במסמך זה אושרו על ידי האוניברסיטה והעדה מוסדי הטיפול בבעלי חיים ושימוש של פנסילבניה.

1. סקירה כללית של מנגנון הבדיקה

  1. מנגנון הבדיקה מורכב מ24 תאים גליליים אקריליק ברורים 10 סנטימטר אורך ו 5 ס"מ קוטר (נפח כולל של 200 מיליליטר). גודל זה הוא מתאים לעכבר בוגר 25 גרם טיפוסי. יש לשכות יציאות בכל קצה לכניסת גז וחשמל. הסוף לשקע הוא נשלף, כך שעשויים להיות טעונים בעלי חיים בקלות אל תוך החדר. פתחי יציאת גז חתומים בזהירות עם סרט טפלון, בעוד אטמי הגומי O-טבעת משמשים לאטום את הסוף להסרה של התאים גליליים.
  2. כל תא הוא רכוב על מדף שיושב בתוך אמבט מים. המתלה מצוידת, כך שהחלק התחתון בלבד של התאים (מתחת לפתחי כניסת הגז) הוא שקוע. ליציבות, הקצה האחורי של החדר נשען על תמיכה, כך שכל chambאה יושב בצורה אופקית. זה מבטיח מגע אפילו של כל החדר עם האמבטיה.
  3. צינורות פוליאתילן מתחבר מיכל חמצן למאדת הרדמה, ולאחר מכן עוברים דרך L / מד זרימת דקות 10. הצינור מתפצל ל25 נגדים בקוטר קטן באורך שווה, כדי להבטיח זרימה שווה מועברת לכל אחד מהתאים 24 ומנתח סוכן.
  4. קווי אבק לצאת מכל חדר בקצה השני של כניסת הגז. זה מקדם את הזרימה חד כיווני שמונעת נשימה חוזרת של נשף פחמן דו חמצני. קווי הוואקום לשלב בסעפת כדי להתחבר לקו יניקה בתוך הבית. שסתום קופץ מלאורך קו הוואקום העיקרי מבטיח תנאי לחץ אטמוספרי בתוך כל תא.
  5. האמבטיה מלאה במספיק מים כדי ליצור קשר עם החלק התחתון של כל תא באופן מלא. המים מופצים דרך האמבטיה ומתוחזק בC 37 o מתמדת על ידי משאבה.

2. בדוק את מערכת לפני החשיפה

  1. Cלעזאזל שהטמפרטורה של אמבט המים היא 37 C o לאורך האמבטיה.
  2. זרימת חמצן בשיעור של 5 ליטר / דקה (200 מיליליטר / דקה לכל תא + מנתח סוכן). להטביע כל תא מתחת למים ולחפש בועות או כניסה של מים לתוך התא, אשר שניהם מעידים על הדלפות. לאטום כל הדלפות לפני תחילת הניסוי.
  3. לכל חדר, להתחבר 500 מד זרימת מיליליטר / דקה בתור אחרי קאמרי לוודא כי תזרים מאוזנים על פני כל אחד מ25 קווי הגז. הדבר מבטיח כי תזרים קלט 5 ליטר / דקה יחולק באופן שווה, כך שכל תא מקבל 200 זרימת מיליליטר / דקה. כל תא אינו מקבל את הזרימה הצפויה צריך להיות הזרימה שלה וצינורות יצוא בדקו עבור חסימות.
  4. כייל את מנתח הסוכן כדי להבטיח קריאה של isoflurane 0.00% כאשר 100% חמצן זורם.

3. משדר טמפרטורת שתל

  1. שבוע לפני הרגלה, להרדים כל עכבר עם isoflurane 2%.
  2. לחטא את אזור צוואר הגב עם בטאדין.
  3. להזריק תת עורי משדר טמפרטורה בין השכמות באמצעות מחט מזרק סטרילי, ארוזה מראש.
  4. לפקח על אתר ההזרקה יומי לזיהום והגירה של המשדר.

4. להרגיל בעלי חיים לתאי בדיקה

  1. ארבעה ימים לפני ההערכה הראשונה, למקם את כל העכברים לתאים בודדים במשך שעה 2 עם 100% חמצן זורם.
  2. חזור על שלב 4.1 יומי לארבעה ימים שקדמו להערכה, כדי למנוע תופעות של הבלבול של לחץ בשל סביבה חדשה.

5. לבצע התערבות תרופתי שאתה רוצה לבדוק להשפעות על ההרדמה רגישות

  1. התערבות זו עשויה להיות הזרקת stereotaxic לחלק מסוים של המוח 24, הזרקה תוך ורידית או intraperitoneal 25, או מסירה של תרופה לאזור ספציפי במוח באמצעות צינורית 26.
  2. מכיוון שהליכים אלה עצמם עשויים לשנות את רגישות חומר הרדמה בהשוואה לבעלי חיים תמימים, קבוצת ביקורת ראויה צריכה לעבור את אותו תהליך עם זריקות רכב.
  3. ודא שיש לו את ההתערבות תרופתי משך הפעולה ארוך כראוי אם אתם מתכננים לעשות בשלבים הגדלת ו / או הקטנת קביעת רגישות הרדמה כפי שמוצג בשלב 6 שלהלן, אחרת, דלג לשלב 7.

6. להעריך הרדמה רגישות באמצעות קביעה בשלבים EC 50 לאינדוקציה וצמיחה

  1. מניחים כל בעלי חיים לתאי אדם עם 100% חמצן זורם.
  2. קבע את ריכוז isoflurane ל* 0.4% ל15 דקות. במהלך 2 דקות האחרונות של תקופה זו, להעריך את רפלקס ליישר של כל בעלי חיים על ידי בעדינות מגלגל את החדר עד שהעכבר ממוקם על הגב שלה. רפלקס ליישר נחשב שלם אם ורק אם העכבר הוא מסוגל לשחזר את כלמכפותיו על הרצפה של החדר בתוך 2 דקות.
    1. * שים לב שisoflurane 0.4% הוא מינון subhypnotic בעכברי C57BL/6J. אם כל עכברים לאבד את רפלקס ליישרם בשלב הראשון, במינון הראשוני היה גדול מדי ויש להפחית בימים שלאחר מכן.
  3. הקלט את המדינה ליישר רפלקס לכל עכבר ולסרוק כל עכבר לנתוני טמפרטורה. שיא תבנית מוצג בטבלה 1.
  4. להגדיל את ריכוז isoflurane ידי ~ 0.05% במשך 15 דקות וחזור על שלב 7.2. תמשיך לעשות את זה עד שכל בעלי החיים שאיבדו רפלקס ליישרם.
  5. אופציונאלי: לחזור על אותה הפרוצדורה להפחתת מינוני isoflurane צעד חכם עד שכל בעלי החיים יש חזרה רפלקס ליישרם (ראה שלב 6.3).
  6. כדי לסיים את הניסוי, כבה את isoflurane ולשטוף את המערכת כולה עם 100% חמצן במשך 15 דקות. זה יעזור כדי למנוע היפוקסיה כעכברים להתאושש לפני שחזרו לכלובים בביתם ויגן על experimenter מכל חשיפת הרדמה.
  7. אופציונאלי: אם מספר בעלי החיים או מספר ריכוזי הרדמה מוגבל בשל אילוצי משאבים או זמן, המדרון עשויה היל יש הערכות-במיוחד פרמטר עקומה בכושר הערכת מעריכים, באופן כוזב נמוכה שגיאה. במקרים כאלה, ייתכן שיהיה צורך לחזור על מדידת רגישות ההרדמה מתואר בשלבים 6.1-6.6 בעד שני ימי ניסיון נוספים להשיג פרמטר של מדרון הגבעה האמיתי והערכת השגיאה המקבילה שלה באופן מלא.

7. להעריך את השינויים לטווח קצר בהרדמת רגישות עם זמן להופעה

  1. מניחים כל בעלי חיים לתאי אדם עם 100% חמצן זורם.
  2. קבע את ריכוז isoflurane ל.1.2%, אשר תואם את האינדוקציה ED 99 לעכברי C57BL/6J פראי מסוג 20. לשמור על 30-60 דקות בהתאם למשך הצפוי של פעולה של ההתערבות חריפה.
  3. לאשר LORR בכל בעלי החיים על ידי בעדינות מגלגל את כל חדר עד שעכברים מונחים על גבם.
  4. כבה את isoflurane וזרימת חמצן 100%. מדוד את הזמן עד שכל חיה חוזר לרפלקס ליישרה. זה מוגדר על ידי מיקום של כל ארבע כפות הרגליים על הרצפה של החדר ואושר על ידי נוכחותם של שלוש בדיקות ברציפות עם רפלקס ליישר ללא פגע.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

איור 1 מדגים את התועלת של assay LORR צעד החכם לקביעת השפעות ארוך טווח של התערבות תרופתית. חומצת Ibotenic (רשות השידור) היא אגוניסט של glutamatergic קולטן N-methyl-D-asparate (NMDA) המשמש לעתים קרובות כexcitotoxin לגרום לנגעים עצביים קבועים. כאן אנו הזרקנו 10 NL של 1% בילטרלי רשות השידור לאזור ventrolateral preoptic (VLPO) של עכברי C57BL/6J שבוע לפני הבדיקה. רוב הנוירונים בגרעין זה מפגין שיעורים נמוכים של ירי בערויות ובמיוחד להגביר את פעילותם בזמן השינה שאינה מהירה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למרות הערכה של LORR בעכבר אחת היא משימה פשוטה לכאורה, זה בכל זאת חיוני כדי לשמור על תנאים פיסיולוגיים זהים בין נושאים על מנת לאסוף נתונים מהימנים מקבוצה של בעלי חיים. , מנגנון LORR קיבולת גבוהה המוסדר היטב שהוצג כאן מציע דרך לתקנן ניסויים ולמקסם את היעילות. על ידי ביצוע פעולות בעקרונות הבסיסיים של ויסות חום וזרימת חלוקה שווה, מערכת זו ניתן ליצור מחדש בקלות ומותאמת אישית כדי שתתאים לצרכימים 'הנסיינים בודדים. גודל חדר עשוי להיות מדורגת למינים אחרים, כגון חולדות, וחדרים נוספים ני...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

יש המחברים אין לחשוף.

תודות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי R01 GM088156 וT32 HL007713-18. ברצוננו להודות ביל Pennie ומייקל קרמן מאוניברסיטת פנסילבניה מחקר חנות מכשור על עזרתם בהרכבת מנגנון רפלקס ליישר שלנו.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
שם חברת המגיבמספר קטלוגיהערות
חמצןאיירגזOX300
איזופלורןבאטלר שייןניתן להחליף כל חומר הרדמה נדיף מעניין
החומרמספר קטלוגמספר הערות
מד זרימת מסה- 10 SLPMאומגה הנדסהFMA-A2309
מד זרימת מסה- 500 SCCMOmega EngineeringFMA-A2305
מנתח חומרי הרדמה/מחוון גזAM BickfordFI-21 Riken
משאבת מים לחימוםפישר סיינטיפיק13-874-175
משדרי טמפרטורהBMDSIPTT-300
קורא טמפרטורת RFBMDSDAS-6007
שם

מקורות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Meyer, H. H. Zur theorie der alkoholnarkose. I. Mittheilung. Welche Eigenschaft der An#228;sthetica bedingt ihre narkotische Wirkung? Naunyn Schmiedebergs Arch. Exp. Pathol. Pharmakol. 42, 109-137 Forthcoming.
  2. Overton, C. E. Studien über die Narkose: Zugleich ein Beitrag zur allgemeinen Pharmakologie. , Fischer. Jena. (1901).
  3. Bignall, K. E. Ontogeny of levels of neural organization: the righting reflex as a model. Exp. Neurol. 3 (3), 566-573 (1974).
  4. Franks, N. P. General anaesthesia: from molecular targets to neuronal pathways of sleep and arousal. Nat. Rev. Neurosci. 9 (5), 370-386 (2008).
  5. Smith, W. Responses of laboratory animals to some injectable anaesthetics. Lab. Anim. 27 (1), 30-39 (1993).
  6. Schernthaner, A., Lendl, C., Busch, R., Henke, J. Clinical evaluation of three medetomidine--midazolam--ketamine combinations for neutering of ferrets (Mustela putorius furo)]. Berliner und Münchener tierärztliche Wochenschrift. 121 (1-2), 1-10 (2008).
  7. Mohammad, F. K., Zangana, I. K., Abdul-Latif, A. R. Medetomidine sedation in sheep. Zentralblatt für Veterinärmedizin. Reihe A. 40 (5), 328-331 (1993).
  8. Nicholls, E. A., Louie, G. L., Prokocimer, P. G., Maze, M. Halothane anesthetic requirements are not affected by aminophylline treatment in rats and dogs. Anesthesiology. 65 (6), 637-641 (1986).
  9. Tung, A., Szafran, M. J., Bluhm, B., Mendelson, W. B. Sleep Deprivation Potentiates the Onset and Duration of Loss of Righting Reflex Induced by Propofol and Isoflurane. Anesthesiology. 97 (4), 906-911 (2002).
  10. Pal, D., et al. Determination of Minimum Alveolar Concentration for Isoflurane and Sevoflurane in a Rodent Model of Human Metabolic Syndrome. Anesth. 2 (2), 297-302 (2012).
  11. Eger, E. I., Saidman 2nd,, J, L., Brandstater, B. Temperature dependence of halothane and cyclopropane anesthesia in dogs: correlation with some theories of anesthetic action. Anesthesiology. 26 (6), 764-770 (1965).
  12. Vitez, T. S., White, P. F., Eger, E. I. 2nd Effects of hypothermia on halothane MAC and isoflurane MAC in the rat. Anesthesiology. 41 (1), 80-81 (1974).
  13. Antognini, J. F. Hypothermia eliminates isoflurane requirements at 20 degrees C. Anesthesiology. 78 (6), 1152-1156 (1993).
  14. McKenzie, J. D., et al. Effects of temperature on the anaesthetic potency of halothane, enflurane and ethanol in Daphnia magna (Cladocera: Crustacea). Comp. Biochem. Physiol. C. 101 (1), 15-19 (1992).
  15. Icaza, E. E., et al. Isoflurane-Induced Changes in Righting Response and Breathing are Modulated by RGS Proteins. Anesth. Analg. 109 (5), 1500-1505 (2009).
  16. Drexler, B., Antkowiak, B., Engin, E., Rudolph, U. Identification and characterization of anesthetic targets by mouse molecular genetics approaches. Can. 2 (2), 178-190 (2011).
  17. Wafford, K. A., et al. Differentiating the role of gamma-aminobutyric acid type A (GABAA) receptor subtypes. Biochem. 32 (Pt3), 553-556 (2004).
  18. Lakhlani, P. P., et al. Substitution of a mutant α2a-adrenergic receptor via "hit and run" gene targeting reveals the role of this subtype in sedative, analgesic, and anesthetic-sparing responses in. Proc. Natl. Acad. Sci. 94 (18), 9950-9955 (1997).
  19. Sonner, J. M., Gong, D., Eger, E. I. Naturally Occurring Variability in Anesthetic Potency Among Inbred Mouse Strains. Anesth. 91 (3), 720-726 (2000).
  20. Sun, Y., et al. High throughput modular chambers for rapid evaluation of anesthetic sensitivity. BMC Anesthesiol. 6 (1), 13(2006).
  21. Hu, F. Y., et al. Hypnotic Hypersensitivity to Volatile Anesthetics and Dexmedetomidine in Dopamine β-Hydroxylase Knockout Mice. Anesthesiology. , (2012).
  22. Kelz, M. B., et al. An essential role for orexins in emergence from general anesthesia. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105 (4), 1309-1314 (2008).
  23. Moore, J. T., et al. Direct Activation of Sleep-Promoting VLPO Neurons by Volatile Anesthetics Contributes to Anesthetic Hypnosis. Curr. 22 (21), 2008-2016 (2012).
  24. Kirby, E. D., Jensen, K., Goosens, K. A., Kaufer, D. Stereotaxic Surgery for Excitotoxic Lesion of Specific Brain Areas in the Adult Rat. J. Vis. Exp. (65), e4079(2012).
  25. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats. J. Vis. Exp. (67), e2771(2012).
  26. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880(2008).
  27. Szymusiak, R., Alam, N., Steininger, T. L., McGinty, D. Sleep-waking discharge patterns of ventrolateral preoptic/anterior hypothalamic neurons in rats. Brain Res. (1-2), 178-188 (1998).
  28. Nelson, L. E., et al. The sedative component of anesthesia is mediated by GABAA receptors in an endogenous sleep pathway. Nat. Neurosci. 5 (10), 979-984 (2002).
  29. Li, K. Y., Guan, Y., Krnjević, K., Ye, J. H. Propofol Facilitates Glutamatergic Transmission to Neurons of the Ventrolateral Preoptic Nucleus. Anesthesiology. 111 (6), 1271-1278 (2009).
  30. Friedman, E. B., et al. A Conserved Behavioral State Barrier Impedes Transitions between Anesthetic-Induced Unconsciousness and Wakefulness: Evidence for Neural Inertia. PLoS ONE. 5 (7), e11903(2010).
  31. Lu, J., Greco, M. A., Shiromani, P., Saper, C. B. Effect of lesions of the ventrolateral preoptic nucleus on NREM and REM sleep. J. Neurosci. 20 (10), 3830-3842 (2000).
  32. Sun, X., Whitefield, S., Rusak, B., Semba, K. Electrophysiological analysis of suprachiasmatic nucleus projections to the ventrolateral preoptic area in the rat. Eur. J. Neurosci. 14 (8), 1257-1274 (2001).
  33. Ma, J., Shen, B., Stewart, L. S., Herrick, I. A., Leung, L. S. The septohippocampal system participates in general anesthesia. J. Neurosci. 22 (2), RC200(2002).
  34. Leung, L. S., Ma, J., Shen, B., Nachim, I., Luo, T. Medial septal lesion enhances general anesthesia response. Exp. Neurol. , (2013).
  35. Solt, K., et al. Methylphenidate Actively Induces Emergence from General Anesthesia. Anesthesiology. 115 (4), 791-803 (2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

מאמרים קשורים