מאמר שיטה

שיטה לאלקטרוכימי שיטתי ואלקטרו הערכה של אלקטרודות הקלטה עצביות

DOI:

10.3791/51084

⸱

3 במרץ 2014

 ,  ,  , 
1School of Psychological Science, La Trobe University, 2Intelligent Polymer Research Institute, University of Wollongong, 3ARC Centre of Excellence for Electromaterials Science, 4Health Innovations Research Institute, College of Science, Engineering, and Health, RMIT University

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ציפוי האלקטרודה שונה משפיע על ביצועי הקלטה עצביים דרך שינויים במאפיינים אלקטרוכימיים, כימיים ומכאניים. השוואה של אלקטרודות במבחנה היא פשוטה יחסית, עם זאת השוואה של תגובת in vivo היא מסובכת בדרך כלל על ידי שינויים במרחק אלקטרודה / נוירון ובין בעלי החיים. מאמר זה מספק שיטה חזקה כדי להשוות אלקטרודות הקלטה עצביות.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

חומרים ועיצובים לשתלים עצביים חדשים הם בדרך כלל נבדקו בנפרד, עם הפגנה של ביצועים, אך ללא התייחסות למאפייני שתל אחרים. זה מונע בחירה רציונלית של שתל מסוים כאופטימלי עבור יישום מסוים והפיתוח של חומרים חדשים המבוססים על הפרמטרים של ביצועים הקריטיים ביותר. מאמר זה עוסק בפיתוח פרוטוקול במבחנה בבדיקת vivo של אלקטרודות הקלטה עצביות. פרמטרים מומלצים לבדיקות אלקטרו ואלקטרו מתועדים עם השלבים העיקריים ובעיות פוטנציאליות שנדונו. שיטה זו מבטלת או מצמצמת את ההשפעה של הרבה שגיאות שיטתיות הווה בin vivo פרדיגמות בדיקות פשוטות יותר, וריאציות במיוחד במרחק אלקטרודה / נוירון ובין מודלים של בעלי החיים. התוצאה היא מתאם חזק בין קריטי במבחנה בתגובות vivo, כגון עכבה וsiיחס gnal לרעש. פרוטוקול זה יכול בקלות להיות מותאם לבדיקת חומרי האלקטרודה אחרים ועיצובים. ניתן להרחיב במבחנה הטכניקות לכל שיטה הרסנית אחרת כדי לקבוע מדדי ביצוע חשובים נוסף. העקרונות המשמשים לגישה הניתוחית במסלול השמיעה יכולים גם להיות שונה כדי אזורים עצביים אחרים או רקמה.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

שתלים עצביים נמצאים בשימוש יותר ויותר למחקר, שליטה תותבות וטיפול בהפרעות כגון מחלת פרקינסון, אפילפסיה, ו1,2 אובדן חושים. מדידה ו / או שליטה הן כימית והרכב חשמלי של המוח היא הבסיס לכל שתלים העצביים. עם זאת, חשוב לנהל את טיפול רק כאשר הרקמה העצבית נמצאת במצב החריג כדי להפחית את תופעות הלוואי 3. לדוגמא, לגירוי מוחי עמוק לטיפול באפילפסיה צריך לחול רק פולס חשמלי למוח במהלך התקף. תופעות לוואי מסוימים עשויות להיות דיסטוניה, אובדן הזיכרון, בלבול, תפקוד הקוגניטיבי לקוי, הזיות מושרה, דיכאון או אנטי הדיכאון 3,4. במכשירים רבים, מערכת לולאה סגורה לכן יש צורך להקליט את הפעילות חשמלית וכדי לעורר גירוי כאשר מדינה נורמלית הוא זוהה. אלקטרודות הקלטה משמשות גם כדי לשלוט בפרומכשירי sthetic. זה קריטי כדי להקליט את הפעילות העצבית היעד עם היחס הגבוה ביותר אפשרי אות לרעש כדי להשיג מפעילה מדויק ביותר ובקרה של התקן. יחס אות לרעש גדול הוא גם רצוי מאוד עבור יישומי מחקר, כפי שניתן לקבל נתונים אמינים יותר, וכתוצאה מנבדקים נדרשו פחות. זה גם יאפשר הבנה טובה יותר של המנגנונים ומסלולים מעורבים בגירוי והקלטה עצביים.

לאחר שתל עצבי הושם לתוך המוח, תגובה חיסונית מופעלת על 5,6. במהלך זמן התגובה מחולק בדרך כלל לשלבים אקוטיים וכרוניים, כל אחת בהיקף של תהליכים ביולוגיים שונים 7. התגובה החיסונית יכולה להיות השפעה דרמטית על הביצועים של השתל, כגון בידוד של אלקטרודות מהנוירונים היעד ידי אנקפסולציה בצלקת או השפלה כימית גליה של חומרי שתל 8.זה יכול להפחית את יחס אות לרעש של האלקטרודה הקלטה ותפוקת החשמל של האלקטרודה מגרה, ולהוביל לאלקטרודה כישלון 9. בחירה קפדנית של עיצוב שתל וחומרים נחוץ כדי למנוע כישלון לאורך חיי השתל.

רבים חומרים שונים ועיצובים שתל פותחו לאחרונה כדי לשפר את יחס אות לרעש ויציבות שתל להקלטה עצבית. חומרי אלקטרודה כללו פלטינה, אירידיום, טונגסטן, תחמוצת אירידיום, תחמוצת טנטלום, גרפן, צינורות פחמן, מסוממים פולימרים מוליכים, ולאחרונה הידרוג. חומרי מצע שנבדקו כוללים גם סיליקון, תחמוצת סיליקון, סיליקון ניטריד, משי, טפלון, polyimide, וסיליקון. שינויי אלקטרודה שונים גם נחקרו, תוך שימוש בציפויים כגון laminin, neurotrophins, או monolayers עצמי התאספו וטיפולים באמצעות אלקטרוכימיים, פלזמה ושיטות אופטיות. עיצוב שתלים יכול להיות 1 -, 2 - או 3 ממדים עם אלקטרודות בדרך כלל בקצה של חללית בידוד או בשולי שוק חודר אלקטרודות או במערך 2 ממדים לשתלי משטח קליפת המוח. ללא קשר לעיצוב האלקטרודה או חומר, הספרות קודמת יש בדרך כלל הוכיחה את הביצועים של השתל החדש ללא התייחסות למבני שתל אחרים. זה מונע הערכה שיטתית של הנכסים שלהם.

פרוטוקול זה מספק שיטה להשוואה בין חומרי אלקטרודה שונים באמצעות מגוון של שיטות אנליטיות ואלקטרו. הוא מבוסס על מאמר שפורסם לאחרונה אשר לעומת 4 מסוממים שונה ביצוע ציפוי פולימר (polypyrrole (PPy) ופולי-3 ,4-ethylenedioxythiophene (PEDOT) מסומם עם סולפט (SO 4) או sulfonate para-טולואן (נק ')) ו -4 ציפוי שונה בעוביי 10. מאמר זה מצא חומר אחד, PEDOT-נק 'עם זמן בתצהיר 45 שניות,היה לי ספירת היחס וספייק הגבוהה ביותר אות לרעש עם רעש הרקע הקטן ביותר וכי הפרמטרים אלה היו תלויים בעכבת אלקטרודה. PEDOT-נק 'מוצג גם biostability החריף מעולה לעומת הפולימרים מסוממים ניהול האחרים ואלקטרודות אירידיום חשופות. הפרוטוקול מאפשר הפרמטרים הקריטיים שליטה יחס אות לרעש ויציבות שייקבע ומשמש כדי לשפר את הביצועים של האלקטרודות הקלטה עצביות נוסף.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הפרוטוקול אושר על ידי אוניברסיטת La Trobe (09-28P) וועדות אוניברסיטת RMIT בעלי החיים אתיקה (1315).

1. בדיקת אלקטרודה הכנה וראשונית במבחנה

  1. הכן את הפתרונות בתצהיר ציפוי האלקטרודה, למשל 10 מ"מ 3,4-ethylenedioxythiophene (EDOT) ו0.1 sulfonate para-טולואן M נתרן (Na 2 נק ') כדי ליצור poly-3 ,4-ethylenedioxythiophene-נק' (PEDOT-נק ').
  2. חבר את מערך אלקטרודות לpotentiostat.
  3. הנח בזהירות את מערך אלקטרודות לפתרון בתצהיר ומהדק למקומו.
  4. הנח אלקטרודה נגדית רשת פלטינה ואלקטרודה השוואתית Ag / AgCl לפתרון בתצהיר ולהתחבר לpotentiostat.
  5. באמצעות potentiostat, הפקדת הציפויים על גבי אלקטרודות הרצויות. תנאי הפקדת (פוטנציאליים, והשעה נוכחית) משתנים בהתאם לציפוי הרצוי. עבור ציפויי PEDOT-נק ', שורר מיושםntial של V 1 ל15, 30, 45, או 60 שניות כבר בשימוש. ארבע אלקטרודות על המערך צריכה להיות מצופים בציפוי בתצורה מדורגת (איור 1).
  6. הסר את מערך אלקטרודות מהפתרון בתצהיר ולשטוף בעדינות עם מים deionized.
  7. חזור על תהליך הציפוי עם חומרים אחרים בהתאם לצורך.
  8. הכן את הפתרון במבחנה בדיקה (פוספט 0.3 M di-נתרן (Na 2 HPO 4) במי deionized).
  9. חבר את מערך אלקטרודות לpotentiostat.
  10. הנח בזהירות את מערך אלקטרודות לפתרון הבדיקות ומהדקים למקומו.
  11. הנח אלקטרודה נגדית רשת פלטינה ואלקטרודה השוואתית Ag / AgCl לפתרון הבדיקות ולהתחבר לpotentiostat.
  12. באמצעות potentiostat, לבצע ספקטרוסקופיה עכבה אלקטרוכימיים רציפה (EIS) (פוטנציאל לקזז 0 V, משרעת 10 mV, הרץ 10-100,000 טווח תדרים) וvoltammetry המחזורית (מחזור 1, טווח פוטנציאל 0.8 ל-0.8 V, קצב סריקת 100 mV / sec) בכל האלקטרודות. אלקטרודות שלא נבדקו נשמרות בפוטנציאל במעגל פתוח וזמן שקט של 1 שניות משמש בין כל בדיקה. כל 32 אלקטרודות נמצאות בקשר עם הפתרון לפגישת בדיקות המלאה של 1 שעה.
  13. הסר את מערך אלקטרודות מפתרון הבדיקות ולשטוף בעדינות עם מים deionized.
  14. לבצע כל ניתוח אחר רצוי כגון מיקרוסקופיה אופטית.
  15. בדיקות חנות במכל מגן יבש כדי למנוע נזק והשפלה של משטחי האלקטרודה.

2. השתלת האלקטרודה

  1. לשקול את החולדה.
  2. הזרק urethane (20% w / v במים מזוקקים, 1.3 גרם / ip קילוגרם) עבור ההרדמה nonrecovery.
  3. ודא תחילת הרדמה על ידי בדיקת רפלקס נסיגת קמצוץ הבוהן. אם ההרדמה לא מספיק, מנות משלימות של urethane צריכה להינתן (IP 0.3 גר '/ קילוגרם).
  4. החל סיכה העין, ולאחר מכן לגלח את ראשimal.
  5. מניחים את החיה במצב נוטה על צלחת homeothermic והכנס בדיקה רקטלית (37.5 מעלות צלזיוס).
  6. הנח אוזן בר אחד לעמדתו הסופית הצפויה כ בתוך המסגרת stereotaxic, ולאחר מכן להתאים את בעלי החיים כדי למקם את האוזן בר בmeatus אקוסטית החיצוני.
  7. יישר את בר האוזן השני לתוך meatus אקוסטית החיצוני הנגדי. Shift בעלי החיים בברים האוזן כדי להתיישר עם בעל השן.
  8. בעזרת מלקחיים עכברוש שיניים, לפתוח את הלסת של החיה, להתחבר החותכות העליונות מעל בעל השן ומהדק את האף במקום.
  9. יצירת חתך בעור של הראש, כ 1 מ"מ בצד הימין של קו האמצע וממקורי 10 מ"מ ל10 הזנב מ"מ של למבדה.
  10. לחזור בו העור ושריר רוחבי מהחתך כדי לחשוף את הקודקודית ועצמות interparietal שימוש 20% פתרון מי חמצן ופד גזה, לשפשף את פני השטח של העצם החשוף.
  11. לקדוח חור כ3 מ"מ 2 בעצמות interparietal קרובות למבדה וקו האמצע ככל האפשר וניתקתי את תקע העצם. שימוש בתמיסת מלח סטרילית, שטוף את החור כדי להסיר כל אבק עצם או שברים שעלולות לפגוע באלקטרודה.
  12. באמצעות מספריים קהה קהים, לנתח מתחת לעורף וליצור חלל. לעטוף את חוט Ag / AgCl בצמר גפן, להרוות אותו עם מלח ולאחר מכן להכניס את האלקטרודה ההתייחסות לתוך החלל.
  13. עושה חתך במאטר הדורה במישור הסגיטלי באמצעות קצה מחט.
  14. צרף את מערך אלקטרודות למניפולטור האלקטרודה ולהתאים את עמדתה על הפתיחה עם זווית rostro-הזנב 19 °. באופן ידני להכניס את האלקטרודה כ -2 מ"מ לתוך המוח לכיוון colliculus הנחותים.
  15. צרף את הרמקול לאוזן בר החלולה השמאל.
  16. להבטיח את המגבר דולק. לאחר מכן ודא הרדמה חיה לפני איטום תא ההקלטה.

3.בבדיקת vivo

  1. לספק פרצי רעש לבנים, (רעש גאוס להפיץ, 1-44 kHz; זמן עליית נפילה 10 אלפיות שני) ולנטר את הפעילות בכל אלקטרודה. השיעור המרבי שבו פורץ צריך להיות מועברים הוא פרץ אחד כל 200 אלפיות שניים.
  2. שימוש בדיסק הקשיח הזעיר הממונע, כנס באיטיות את מערך אלקטרודות עד פעילות מונעת אקוסטית נרשמת על 3 אלקטרודות הדיסטלי ביותר בכל שוק (המספר והמיקום של פעילות הקלטת אלקטרודות עשויים להשתנות עם מיקום האלקטרודה או עיצוב אלקטרודה).
  3. לבצע את פרוטוקול גירוי אקוסטי באמצעות 300 חזרות של 50 פרצי רעש לבן אלפיות (רעש גאוס להפיץ, 1-44 kHz; 10 זמן עליית נפילה אלפיות שני) עם שיעור החזרה שניות 1 ב70 dB, ולהקליט את פעילות multiunit בכל אלקטרודה ( 24.4 דגימת קילוהרץ קצב).
  4. לאט לאט להכניס את מערך אלקטרודות 200 μ מ 'נוסף אל תוך המעגל המשולב למצב את כל אלקטרודה בערך באותה העמדה כמו האלקטרודה דיסטלי יותר מהדואר עמדת רישום ראשוני.
  5. חזור על גירוי אקוסטי ופרוטוקול הקלטה עצבי.
  6. המשך החדרת מערך אלקטרודות ב200 μ צעדים מ 'וביצוע גירוי אקוסטי ופרוטוקול הקלטה עצבי עד שכל האלקטרודות רשמו את פעילות מונעת אקוסטית מלפחות 3 עמדות (בדרך כלל 8-12 עמדות אלקטרודה כוללת).
  7. לחזור בו מערך אלקטרודות ב200 μ צעדים מ 'ולהמשיך בביצוע גירוי אקוסטי ופרוטוקול הקלטה עצבי עד עמדת מערך אלקטרודות הראשונית מושגת.
  8. לחזור בו מערך אלקטרודות בקפידה באופן ידני.
  9. הזרק מנת יתר של pentobarbitone נתרן (Lethobarb; 200 מ"ג / קילוגרם ip) להרדימו.
  10. לשטוף בעדינות את מערך האלקטרודה עם מים מזוקקים. לאחר מכן בדיקות חנות במכל מגן יבש כדי למנוע נזק והשפלה של משטחי האלקטרודה.

4. לאחר ההשתלה בvitro בדיקה

  1. לשטוף בעדינות את מערך האלקטרודה עם מים מזוקקים כדי להסיר כל זיהום.
  2. חבר את מערך אלקטרודות לpotentiostat.
  3. הנח בזהירות את מערך אלקטרודות לפתרון הבדיקות ומהדקים למקומו.
  4. הנח אלקטרודה נגדית רשת פלטינה ואלקטרודה השוואתית Ag / AgCl לפתרון הבדיקות ולהתחבר לpotentiostat.
  5. באמצעות potentiostat, לבצע ספקטרוסקופיה עכבה אלקטרוכימיים רציפה (EIS) (פוטנציאל לקזז 0 V, משרעת 10 mV, טווח תדרים 10-100,000 הרץ) וvoltammetry המחזורית (מחזור 1, טווח פוטנציאל 0.8 ל-0.8 V, קצב סריקה 100 mV / sec ) על כל האלקטרודות. אלקטרודות שלא נבדקו נשמרות בפוטנציאל במעגל פתוח וזמן שקט של 1 שניות משמש בין כל בדיקה. כל 32 אלקטרודות נמצאות בקשר עם הפתרון לפגישת בדיקות המלאה של 1 שעה.
  6. הסר את מערך אלקטרודות מפתרון הבדיקות ולשטוף בעדינות עם מים deionized.
  7. Pתחרה מערך אלקטרודה לתוך תמיסת ניקוי אנזימטי ל24 שעות.
  8. הסר את מערך אלקטרודות מהפתרון ולשטוף עם מים מזוקקים.
  9. חבר את מערך אלקטרודות לpotentiostat.
  10. הנח בזהירות את מערך אלקטרודות לפתרון הבדיקות ומהדקים למקומו.
  11. הנח אלקטרודה נגדית רשת פלטינה ואלקטרודה השוואתית Ag / AgCl לפתרון הבדיקות ולהתחבר לpotentiostat.
  12. באמצעות potentiostat, לבצע ספקטרוסקופיה עכבה אלקטרוכימיים רציפה (EIS) (פוטנציאל לקזז 0 V, משרעת 10 mV, טווח תדרים 10-100,000 הרץ) וvoltammetry המחזורית (מחזור 1, טווח פוטנציאל 0.8 ל-0.8 V, קצב סריקה 100 mV / sec ) על כל האלקטרודות. אלקטרודות שלא נבדקו נשמרות בפוטנציאל במעגל פתוח וזמן שקט של 1 שניות משמש בין כל בדיקה. כל 32 אלקטרודות נמצאות בקשר עם הפתרון לפגישת בדיקות המלאה של 1 שעה.
  13. הסר את מערך אלקטרודות מפתרון הבדיקות ולשטוף בעדינות עם מים deionized.
  14. בדיקות חנות במכל מגן יבש כדי למנוע נזק והשפלה של משטחי האלקטרודה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מערך אלקטרודות טיפוסי המשמש לפרוטוקול ניסוי זה מוצג באיור 1. ישנן 32 אלקטרודות אירידיום ב -4 באנקס עם 413 μ מ '2 באזור גיאומטרי נומינלי ומגרש μ מ' 200. כל אלקטרודה שנייה על המערך כבר מצופה באחת מארבעה ציפוי האלקטרודה שונה, שכותרתו 1-4. חומרי הציפוי כבר נבחרו בקפידה על התכונות כימיות, מכאניות ואלקטרו. כפי שהוזכר קודם לכן 10, פעמים בתצהיר מוגברות תגדיל את שטח האלקטרודה ועובי ציפוי, ואילו גדולים יותר להחיל נוכחית או פוט...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה מספק שיטה להשוואה בין ציפוי האלקטרודה הקלטה עצבי בתוך חיה אחת. עיצוב אלקטרודה המשמש הוא אידיאלי להשתלה לתוך colliculus נחותים עכברוש (IC), עם ממדים של קנה מידה דומה. וריאציות של אלקטרודה זו כגון מקום רב יותר בין שאנקס ימנעו כל אנקס להיות בחולדה IC באותו הזמן, בעוד שאנקס יותר ומגרש גדול יותר בין האלקטרודות להגביר את הסיכון ששוק הטיפים יבואו במגע עם בסיס הגולגולת במהלך כניסה. המגרש האלקטרודה קטן יותר מגדיל את הסיכון לציפוי מהאחד אלקטרודה פנייה האלקטרודה סמוכה. אזור האלקט...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
יש המחברים אין לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
המחברים מודים לתמיכה של המועצה למחקר האוסטרלי באמצעות המרכז למצוינות לElectromaterials מדע.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מנחת הניתן לתכנותTDTPA5שולט במשרעת האות האקוסטי על פני תדרים
דרייבר רמקול אלקטרוסטטיTDTED1מניע את הרמקולים האלקטרוסטטיים (EC1)
רמקול אלקטרוסטטי מצומדTDTEC1מספק צליל לבעל החיים
תחנת בסיס עיבודTDTRZ2מתעד פעילות עצבית ממערך אלקטרודות (באמצעות מגבר PZ2)
מגבר מקדיםTDTPZ2-256מגבר קדם עכבה גבוהה 256 ערוצים
מעבד רב תכליתיTDTRX6משמש ליצירת גירויים אקוסטיים
אלקטרודה רב-ערוציתNeuroNexus TechnologiesA4 וזמנים; 8– 5 מ"מ-200-200-413מערך אלקטרודות 4 שוק 32 ערוצים
פוטנציוסטטCH מכשיריםCHI660Bמפקיד ציפויי אלקטרודות ומבצע וולטמטריה מחזורית ו-EIS (בשימוש עם CHI684)
MultiplexerCH InstrumentsCHI684עובר בין אלקטרודות על הפוטנציוסטט
דיסודיום פוספטFluka71644משמש בתמיסת הבדיקה
3,4- Ethylenedioxythiophene (EDOT)Sigma Aldrich483028חומר ציפוי אלקטרודה
פרה-טולואן סולפונאט (Na2pTS)Sigma Aldrich152536חומר ציפוי אלקטרודה
UrethaneSigma AldrichU2500המשמש להרדמת החיה
אלקטרודה כסף/כסף כלורידInstrumentsCHI111משמש לבדיקת האלקטרודה in vitro
Platinum ApplianceCHInstruments MW4130משמש לבדיקת האלקטרודה in vitro
Motorized microdriveSutter InstrumentsDR1000כדי לשלוט במיקום מערך האלקטרודות במהלך הניתוח
מנקה אנזימטיאופטיקה רפואית מתקדמתUltrazymeמנקה את החלבון ממערך האלקטרודות לאחר ההשתלה
מארז אקוסטיTMC Ametek83-501מבודד את החיה מרעש אקוסטי וחשמלי
מסגרת סטריאוטקסיתDavid Kopf Instruments1430מאבטח וממקם את החיה
בקר טמפרטורהWorld Precision InstrumentsATC1000שולט בטמפרטורת החיה
מקדחת עצםKaVo DentalK5Plusמשמש לביצוע כריתת הקרניקטומיה
AspiratorFlaemSuction proמשמש לביצוע כריתת הקרניקטומיה
CH

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Oluigbo, C. O., Rezai, A. R. Addressing Neurological Disorders With Neuromodulation. IEEE Trans. Biomed. Eng. 58, 1907-1917 (2011).
  2. Shivdasani, M. N., Mauger, S. J., Rathbone, G. D., Paolini, A. G. Inferior Colliculus Responses to Multichannel Microstimulation of the Ventral Cochlear Nucleus: Implications for Auditory Brain Stem Implants. J. Neurophysiol. 99, 1-13 (2008).
  3. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep Brain Stimulation. Ann. Rev. Neurosci. 29, 229 (2006).
  4. Weaver, F. M., et al. Bilateral Deep Brain Stimulation vs Best Medical Therapy for Patients With Advanced Parkinson Disease. J. Am. Med. Assoc. 301, 63-73 (2009).
  5. Biran, R., Martin, D. C., Tresco, P. A. Neuronal cell loss accompanies the brain tissue response to chronically implanted silicon microelectrode arrays. Exp. Neurol. 195, 115-126 (2005).
  6. McConnell, G. C., et al. Implanted neural electrodes cause chronic, local inflammation that is correlated with local neurodegeneration. J. Neural Eng. 6, (2009).
  7. Liu, X., et al. Stability of the interface between neural tissue and chronically implanted intracortical microelectrodes. IEEE Trans. Rehab. Eng. 7, 315-326 (1999).
  8. Rousche, P. J., Normann, R. A. Chronic recording capability of the Utah Intracortical Electrode Array in cat sensory cortex. J. Neurosci. Methods. 82, 1-15 (1998).
  9. Williams, J. C., Rennaker, R. L., Kipke, D. R. Long-term neural recording characteristics of wire microelectrode arrays implanted in cerebral cortex. Brain Res. Protoc. 4, 303-313 (1999).
  10. Harris, A. R., et al. Conducting polymer coated neural recording electrodes. J. Neural Eng. 10, (2013).
  11. Bard, A. J., Faulkner, L. R. Electrochemical Methods. , Wiley. (2001).
  12. Ludwig, K. A., Uram, J. D., Yang, J., Martin, D. C., Kipke, D. R. Chronic neural recordings using silicon microelectrode arrays electrochemically deposited with a poly(3,4-ethylenedioxythiophene) (PEDOT) film. J. Neural Eng. 3, 59 (2006).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

In VitroIn Vivo

מאמרים קשורים